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Method Article
Ce protocole démontre comment disséquer Drosophile en préparation pour l'immunohistochimie et / ou l'imagerie de la jonction neuromusculaire.
L'
Avant de commencer
Dissection des larves
Fixation
Fixer chaque animal dans du formol 3,5% en HL3.1 pendant 25 minutes. Laver l'animal à deux reprises en HL3.1 pendant 5 minutes.
Stockage
Retirez les broches et le transfert des larves dans un tube de 1,5 ml contenant du PBS 1X. Si vous prévoyez d'utiliser l'image de la JNM fusionné étiquettes fluorescentes, vous devriez l'image des animaux dans les deux jours. Vous pouvez stocker les larves disséquées pour une semaine au maximum à 4 ° C.
Les résultats représentatifs
Il ya plusieurs éléments clés pour une larve de drosophile bien disséqué. D'abord, il faut prendre des précautions supplémentaires pour ne pas endommager les muscles, surtout les muscles 4, 6 et 7. Ce sont les muscles les plus populaires pour étudier et, si elles sont endommagées jeter le filet de préparation et de disséquer un autre animal. Deuxièmement, on doit s'assurer que l'animal est au maximum étirée de sorte que chaque muscle et JNM peuvent être distinguées.
La technique de dissection démontré dans cette vidéo peut être utilisée pour préparer des larves de drosophile pour une variété de techniques expérimentales. Si les balises protéine fluorescente sont présents, les larves peuvent être montés et imagé immédiatement. Sinon, immunomarquage peuvent être effectuées afin de marquer spécifiques compartiments synaptiques. En outre, l'électrophysiologie peut facilement être effectuée sur des larves disséquées afin d'évaluer le fonctionneme...
HL3 Tampon Dissection: (en mm) 70 NaCl, KCl 5, 0,2 CaCl2, MgCl2 20, 10 NaHCO3, 5 tréhalose, le saccharose 115, et 5 HEPES, pH 7,3.
Sylgard Plate Dissection: Mélanger doucement (pour éviter les bulles) 10h01 dans un bécher. Versez la préparation dans une boîte de Petri (toutes tailles). Autoriser Sylgard pour guérir la nuit dans 37C incubateur.
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