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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Il s’agit d’une méthode efficace pour dépister les suppresseurs ou les facteurs de métastases cancéreuses. Les cellules, transduites avec une bibliothèque d’expressions, sont injectées dans le système vasculaire de la membrane chorioallantoïque du poulet pour former des colonies métastatiques. Les colonies ayant un caractère invasif diminué ou accru sont excisées, élargies, réinjectées pour confirmer leur phénotype et, enfin, analysées à l’aide d’un séquençage à haut débit.

Résumé

Les progrès récents de la recherche sur le cancer ont illustré la nature très complexe des métastases cancéreuses. Il a été constaté que plusieurs gènes ou réseaux de gènes sont impliqués dans la régulation différentielle des gènes en cascade métastatique du cancer et des produits géniques en fonction du type de cancer, des tissus et des caractéristiques individuelles du patient. Ceux-ci représentent des cibles potentiellement importantes pour les thérapies génétiques et les approches de médecine personnalisée. Le développement de plateformes de dépistage rapide est essentiel pour l’identification de ces cibles génétiques.

La membrane chorioallantoïque du poussin (CAM) est une membrane riche en collagène hautement vascularisée située sous la coquille de l’œuf qui permet l’échange de gaz dans l’embryon en développement. En raison de l’emplacement et de la vascularisation du CAM, nous l’avons développé en tant que modèle de métastase cancéreuse humaine intravitale qui permet une xénogreffe robuste des cellules cancéreuses humaines et une imagerie en temps réel des interactions des cellules cancéreuses avec la matrice riche en collagène et le système vasculaire.

À l’aide de ce modèle, une plateforme de dépistage quantitatif a été conçue pour l’identification de nouveaux facteurs ou suppresseurs de métastases cancéreuses. Nous avons transduit un pool de cellules cancéreuses HEp3 de la tête et du cou avec une bibliothèque complète de gènes shRNA du génome humain, puis injecté les cellules, à faible densité, dans le système vasculaire CAM. Les cellules ont proliféré et formé des colonies de cellules monotumorales. Les colonies individuelles qui étaient incapables d’envahir le tissu CAM étaient visibles comme un phénotype de colonie compact et excisées pour l’identification de l’ARNh transducté présent dans les cellules. Les images de colonies individuelles ont été évaluées pour leur caractère envahissant. Plusieurs séries de sélections ont été effectuées pour réduire le taux de faux positifs. Des clones individuels de cellules cancéreuses isolées ou des clones nouvellement modifiés qui expriment des gènes d’intérêt ont été soumis à un test de formation tumorale primaire ou à une analyse de cooptation vasculaire des cellules cancéreuses. En résumé, nous présentons une plateforme de dépistage rapide qui permet l’identification de cibles anti-métastatiques et l’analyse intravitale d’une cascade dynamique et complexe d’événements.

Introduction

Les métastases sont la principale cause de décès des patients atteints de cancer1,2,3. Les cellules cancéreuses métastatiques utilisent des voies de signalisation distinctes, en fonction du type de cancer, tout au long des cinq étapes de la cascade métastatique: invasion locale, intravasation, survie dans la circulation, extravasation et expansion des colonies sur des sites métastatiques éloignés. La compréhension actuelle de ce processus métastatique suggère qu’il existe deux étapes de goulot d’étranglement, l’une est l’invasion directionnelle de la cellule cancéreuse à part....

Protocole

Toutes les expériences ont été réalisées conformément aux règlements et aux lignes directrices du Comité institutionnel de soins et d’utilisation des animaux de l’Université de l’Alberta. Les embryons aviaires ne sont pas considérés comme des animaux vivants par de nombreux instituts de recherche et aucun protocole animal n’est requis. Il est toutefois admis que les embryons aviaires peuvent ressentir de la douleur et, par conséquent, doivent être traités aussi humainement que possible. L’autorité locale de recherche sur les animaux doit être contactée avant le début de tout travail de recherche pour s’assurer que les règlements appropriés sont respectés.

Résultats

L’injection de cellules cancéreuses est considérée comme réussie si la majorité des cellules logées dans les capillaires sont uniques et situées à une différence significative les unes des autres (~0,05-0,1 cm) de sorte que les colonies ne se chevauchent pas après 5-6 jours de période d’incubation (Figure 3A). L’injection n’a pas réussi si une accumulation de cellules cancéreuses peut être observée dans la plupart des capillaires, les e.......

Discussion

Nous décrivons ici un protocole de dépistage intravital basé sur la microscopie à fluorescence rapide qui peut être utilisé pour des applications importantes telles que les criblages génétiques ou candidats médicaments. Les cellules cancéreuses qui ont été transduies avec une bibliothèque génétique d’intérêt ou transfectées avec des constructions d’expression individuelles peuvent être rapidement dépistées et quantifiées quant au phénotype d’intérêt à l’aide de ce modèle CAM de poussin........

Déclarations de divulgation

Rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par la subvention de l’Institut de recherche de la Société canadienne du cancer #702849 à JDL et KS. Le Dr Lewis est titulaire de la Chaire Frank et Carla Sojonky en recherche sur le cancer de la prostate soutenue par l’Alberta Cancer Foundation.

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matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
1 mL disposable syringesBDBD309659
15 mL conical centrifuge tubes.CorningCLS430791-500EA
18 gauge x 1 1/2  BD precision needleBDBD305196we use 1.2mm x 40mm, it is possible to use shorter needles if preferred
2.5% Trypsin solutionmany sources are available
4T1 mouse breast cancerATCCCRL-2539
B16F10 mouse melanoma cell lineATCCCRL-6475
Benchtop centrifuge.many sources are availableAny TC compatible centrifuge that can be used to spin down the cells is suitable
Circular coverslips, 22 mm.Fisher Scientific12-545-101
CollagenaseSigmaC0130-100MG
Confocal microscopeWe use Nikon A1r
cotton swabsmany sources are availablemust be sterilized before use
Culture media appropriate for the cell lines usedmany sources are availableWe grow HT1080, HEp3 and b16 cell lines in DMEM, 10% FBS media
Egg incubatormany sources are availableAn exact model that is necessary depends on the scale of the screen. Available sources are MGF Company Inc., Savannah, GA, or  Lyon Electric Company Inc., Chula Vista, CA
eppendor tubes , 1.5mlSigmaT4816-250EA
Fertilized White Leghorn eggsany local supplyer
fine forcepsmany sources are availablemust be sterilized begfore use
Hemocytometer Millipore-SigmaMDH-4N1-50PK
HT1080 human fibrosarcoma cell lineATCCCCL-121
Image analysis softwareWe use Nikon Elements
Lectin Lens Culinary Agglutinin (LCA) conjugated with Fluorescein or Rhodamine Vector LaboratoriesRL-1042, FL-1041Dilute stock (5mg/ml) 50-100x depending on the microscope sensetivity. Must be a different color from the color of cell line used for screening
MDA-MB-468 human breast cancerATCCHTB-132
PBS (1x)many sources are available
Plastic weighting dishes SimportCA11006-614dimensions are 78x78x25mm; many other sources are available
small surgical scissors many sources are availablemust be sterilized before use
Sodium borosilicate glass capillary tubes, outer diameter 1.0 mm, inner diameter 0.58 mm, 10 cm length Sutter InstrumentBF100-58-10
Square petri dishes (used as lids for the weighting dishes). VWR CA25378-115 dimensions are 100x100x15mm; many other sources are available
Stereo fluorescent microscope We use Zeiss Lumar v12
Tygon R-3603 laboratory tubingCole-ParmerAAC000011/32 in inner diameter, 3/32 in. outer diameter, 1/32 in. wall thickness
U-118 MG human glioblastomaATCCHTB-15
U-87 MG human glioblastomaATCCHTB-14
Vertical pipette puller many sources are availablewe use David Kopf Instruments, Tujunga, CA; Model 720

Références

  1. Hanahan, D., Weinberg, R. A. Hallmarks of cancer: The next generation. Cell. 144 (5), 646-674 (2011).
  2. Van't Veer, L. J., et al. Gene expression profiling predicts clinical outcome of breast cancer. Nature

Réimpressions et Autorisations

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