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Dans cet article

  • Résumé
  • Résumé
  • Introduction
  • Protocole
  • Résultats
  • Discussion
  • Déclarations de divulgation
  • Remerciements
  • matériels
  • Références
  • Réimpressions et Autorisations

Résumé

Ce protocole illustre un système de dimérisation des protéines induit chimiquement pour créer des condensats sur la chromatine.  La formation d’un corps nucléaire de leucémie promyélocytaire (LEMP) sur des télomères avec des dimériseurs chimiques est démontrée. La croissance, la dissolution, la localisation et la composition des gouttelettes sont surveillées par imagerie cellulaire vivante, immunofluorescence (IF) et hybridation in situ par fluorescence (FISH).

Résumé

Les condensats associés à la chromatine sont impliqués dans de nombreux processus nucléaires, mais les mécanismes sous-jacents restent insaisissables. Ce protocole décrit un système de dimérisation des protéines induit chimiquement pour créer des condensats sur les télomères. Le dimériseur chimique se compose de deux ligands liés qui peuvent chacun se lier à une protéine: le ligand Halo à Halo-enzyme et le triméthoprime (TMP) à E. coli dihydrofolate réductase (eDHFR), respectivement. La fusion de l’enzyme Halo à une protéine télomère ancre les dimériseurs aux télomères par liaison covalente ligand-enzyme Halo. La liaison du TMP à l’eDHFR recrute la phase fusionnée de l’eDHFR séparant les protéines en télomères et induit la formation de condensats. Étant donné que l’interaction TMP-eDHFR n’est pas covalente, la condensation peut être inversée en utilisant un excès de TMP libre pour concurrencer le dimériseur pour la liaison eDHFR. Un exemple d’induction de la formation du corps nucléaire de la leucémie promyélocytaire (LEMP) sur les télomères et de détermination de la croissance, de la dissolution, de la localisation et de la composition des condensats est montré. Cette méthode peut être facilement adaptée pour induire des condensats à d’autres endroits génomiques en fusionnant Halo à une protéine qui se lie directement à la chromatine locale ou à dCas9 qui cible le locus génomique avec un ARN guide. En offrant la résolution temporelle requise pour l’imagerie en direct unicellulaire tout en maintenant la séparation de phase dans une population de cellules pour les essais biochimiques, cette méthode convient pour sonder à la fois la formation et la fonction des condensats associés à la chromatine.

Introduction

De nombreuses protéines et acides nucléiques subissent une séparation de phase liquide-liquide (LLPS) et s’auto-assemblent en condensats biomoléculaires pour organiser la biochimie dans les cellules1,2. Le LLPS des protéines de liaison à la chromatine conduit à la formation de condensats associés à des loci génomiques spécifiques et impliqués dans diverses fonctions locales de la chromatine3. Par exemple, LLPS de la protéine HP1 sous-tend la formation de domaines hétérochromatiques pour organiser le génome4,5,LLPS des facteurs d....

Protocole

1. Production de lignées cellulaires transitoires

  1. Culture de cellules acceptrices U2OS sur des couvercles en verre de 22 x 22 mm (pour l’imagerie vivante) ou des couvercles circulaires de 12 mm de diamètre (pour IF ou FISH) recouverts de poly-D-lysine dans une plaque à 6 puits avec milieu de croissance (10% de sérum bovin fœtal et 1% de solution de pénicilline-streptomycine dans DMEM) jusqu’à ce qu’ils atteignent 60-70% de confluence.
  2. Remplacer le milieu de croissance par un milieu de transfection de 1 mL (milieu de croissance sans solution de pénicilline-streptomycine) avant la transfection.
  3. Pour chaque puits de transfec....

Résultats

Des images représentatives de la localisation télomérique de SUMO identifiées par l’ADN télomère FISH et la protéine SUMO IF sont montrées à la figure 2. Les cellules à recrutement SIM enrichissent SUMO1 et SUMO 2/3 sur télomères par rapport aux cellules à recrutement mutant SIM. Cela indique que l’enrichissement SUMO induit par la dimérisation SIM sur les télomères dépend des interactions SUMO-SIM.

Un film en accéléré représentatif de TRF.......

Discussion

Ce protocole a démontré la formation et la dissolution de condensats sur des télomères avec un système de dimérisation chimique. La cinétique de la séparation de phase et du regroupement des télomères induit par la fusion de gouttelettes est surveillée par imagerie en direct. La localisation et la composition des condensats sont déterminées avec l’ADN FISH et la protéine IF.

Ce protocole présente deux étapes critiques. La première consiste à déterminer la concentration en .......

Déclarations de divulgation

Les auteurs n’ont rien à divulguer.

Remerciements

Ce travail a été soutenu par les National Institutes of Health des États-Unis (1K22CA23763201 à H.Z., GM118510 à D.M.C.) et la fondation Charles E. Kaufman à H.Z. Les auteurs tiennent à remercier Jason Tones d’avoir relu le manuscrit.

....

matériels

NameCompanyCatalog NumberComments
0.25% Trypsin, 0.1% EDTA in HBSS w/o Calcium, Magnesium and Sodium BicarbonateCorningMT25053CI
16% Formaldehyde (w/v), Methanol-freeThermo Scientific28906Prepare 1% in 1x PBS
6 Well Culture PlateVWR10861-554
Aluminum FoilFisher Scientific01-213-101
Anti-mCherry antibodyAbcamAb183628
Anti-PML antibodySanta Cruzsc966
Anti-SUMO1 antibodyAbcamAb32058
Anti-SUMO2/3 antibodyCytoskeletonAsm23
Blocking ReagentRoche11096176001
Bovine Serum Albumin (BSA)Fisher ScientificBP9706100
BTX Tube micro 1.5ML VWR89511-258
Circle Cover SlipsThermo Scientific3350
Confocal microscope NikonMQS31000
DAPIFisher ScientificD1306
Dimethyl Sulphoxide Sigma-Aldrich472301
DMEM with L-Glutamine, 4.5g/L Glucose and Sodium PyruvateCorningMT10017CV
EMCCD CameraiXon Life 897
EthanolFisher Scientific4355221
Fetal Bovine Serum, Qualified, USDA-approved RegionsGibcoA4766801
Formamide, DeionizedMilliporeSigma46-101-00ML
Goat anti-Mouse IgG (H+L), Recombinant Secondary Antibody, Alexa Fluor 647InvitrogenA28181
Goat anti-Rabbit IgG (H+L), Recombinant Secondary Antibody, Alexa Fluor 647InvitrogenA32733
High Precision Straight Tapered Ultra Fine Point Tweezers/ForcepsFisher Scientific12-000-122
Laser merge module NikonNIIMHF47180
Leibovitz's L-15 MediumGibco21083027
Lipofectamine 2000 Transfection ReagentInvitrogen11668027
Figure plotting software, MATLABThe MathWorks
Microscope Slide BoxFisher Scientific34487
Nail PolishFisher Scientific50-949-071
Imaging software, NIS-Elements Nikon
Opti-MEM Reduced Serum MediaGibco51985091
ParafilmBemis13-374-12
PBS 10x, pH 7.4Fisher Scientific70-011-044
Penicillin-Streptomycin Solution,100XGibco15140122
Piezo Z-Drive Physik Instrumente (PI)91985
Pipet TipsVWR10017
Plain and Frosted Clipped Corner Microscope SlidesFisher Scientific22-037-246
Poly-D-Lysine solutionSigma-AldrichA-003-E
Sodium AzideFisher ScientificBP922I-500
Spinning diskYokogawaCSU-X1
Square Cover SlipsThermo Scientific3305
TBS 10x solutionFisher ScientificBP2471500
TelC-Alexa488PNA BioF1004
TMPSynthesized by Chenoweth labAvailable upon request
TNHSynthesized by Chenoweth labAvailable upon request
Tris SolutionFisher Scientific92-901-00ML
Triton X-100 10% SolutionMilliporeSigma64-846-350MLPrepare 0.5% in 1x PBS
U2Os cell lineFrom E.V. Makayev lab (Nanyang Technological University, Singapore)HTB-96
VECTASHIELD Antifade Mounting MediumVector LaboratoriesNC9524612

Références

  1. Shin, Y., Brangwynne, C. P. Liquid phase condensation in cell physiology and disease. Science. 357 (6357), (2017).
  2. Banani, S. F., Lee, H. O., Hyman, A. A., Rosen, M. K. Biomolecular condensates: organizers of cellular biochemistry.

Réimpressions et Autorisations

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