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Le protocole décrit une lésion cérébrale traumatique légère dans un modèle murin. En particulier, un protocole étape par étape pour induire un léger traumatisme crânien fermé de la ligne médiane et la caractérisation du modèle animal est entièrement expliqué.
Des modèles animaux hautement reproductibles de lésions cérébrales traumatiques (TCC), avec des pathologies bien définies, sont nécessaires pour tester les interventions thérapeutiques et comprendre les mécanismes de la façon dont un traumatisme crânien altère la fonction cérébrale. La disponibilité de plusieurs modèles animaux de TCC est nécessaire pour modéliser les différents aspects et sévérités du TCC observés chez les humains. Ce manuscrit décrit l’utilisation d’un traumatisme crânien fermé (CHI) médian pour développer un modèle murin de TCC léger. Le modèle est considéré comme léger parce qu’il ne produit pas de lésions cérébrales structurelles basées sur la neuroimagerie ou la perte neuronale macroscopique. Cependant, un seul impact crée suffisamment de pathologie pour que la déficience cognitive soit mesurable au moins 1 mois après la blessure. Un protocole étape par étape pour induire un CHI chez la souris à l’aide d’un impacteur électromagnétique guidé stéréotaxiquement est défini dans l’article. Les avantages du modèle CHI médian léger comprennent la reproductibilité des changements induits par les blessures avec une faible mortalité. Le modèle a été caractérisé temporellement jusqu’à 1 an après la blessure pour les changements neuroimageurs, neurochimiques, neuropathologiques et comportementaux. Le modèle est complémentaire aux modèles à crâne ouvert d’impact cortical contrôlé utilisant le même dispositif d’impacteur. Ainsi, les laboratoires peuvent modéliser à la fois un TCC diffus léger et un TCC focal modéré à sévère avec le même impacteur.
Les lésions cérébrales traumatiques (TCC) sont causées par une force externe sur le cerveau, souvent associée à des chutes, des blessures sportives, de la violence physique ou des accidents de la route. En 2014, les Centers for Disease Control and Prevention ont déterminé que 2,53 millions d’Américains se sont rendus au service des urgences pour demander de l’aide médicale pour des accidents liés à un TCC1. Étant donné que les TCC légers (TCL) représentent la majorité des cas de TCC, au cours des dernières décennies, plusieurs modèles de TCC ont été adoptés, notamment la perte de poids, les traumatismes crâniens fermés entraînés par piston et l....
Les expériences effectuées ont été approuvées par l’Institutional Animal Care and Use Committee (IACUC) de l’Université du Kentucky, et les lignes directrices ARRIVE et Guide for the Care and Use of Laboratory Animals ont été suivies au cours de l’étude.
1. Installation chirurgicale
REMARQUE: Les souris sont logées en groupes de 4-5 / cage, l’humidité dans la salle de logement est maintenue à 43%-47%, et la température est maintenue à 22-23 ° C. Les souris ont un accès ad libitum à la nourriture et à l’eau et sont exposées à un cycle lumière/obscurité de 12 h / 12 h (7 h / 19 h).
Cet appareil d’impact électromagnétique stéréotaxique est polyvalent. Il est utilisé à la fois pour un impact cortical contrôlé par le crâne ouvert (CCI) ou une chirurgie de traumatisme crânien fermé (CHI). De plus, la gravité de la blessure peut être modulée en modifiant les paramètres de la blessure tels que la vitesse d’impact, le temps de séjour, la profondeur de l’impact, la pointe de l’impacteur et la cible de blessure. On décrit ici une chirurgie CHI utilisant un impacteur à pointe en aci.......
Plusieurs étapes sont nécessaires pour recréer un modèle de blessure cohérent à l’aide du modèle décrit. Tout d’abord, il est essentiel de fixer correctement l’animal dans le cadre stéréotaxique. La tête de l’animal ne doit pas pouvoir bouger latéralement et le crâne doit être complètement plat avec bregma et lambda lisant les mêmes coordonnées. Placer correctement les barres auriculaires est l’aspect le plus difficile de cette chirurgie, et cela ne peut être appris qu’avec de la pratique. S.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail a été soutenu en partie par les National Institutes of Health sous les numéros d’attribution R01NS120882, RF1NS119165 et R01NS103785 et le numéro de récompense AZ190017 du ministère de la Défense. Le contenu relève de la seule responsabilité des auteurs et ne représente pas les opinions officielles des National Institutes of Health ou du ministère de la Défense.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
9 mm Autoclip Applier | Braintree scientific | ACS- APL | Surgery |
9 mm Autoclip Remover | Braintree scientific | ACS- RMV | Surgery |
9 mm Autoclip, Case of 1,000 clips | Braintree scientific | ACS- CS | Surgery (Staples) |
Aperio ImageScope software | Leica BioSystems | NA | IHC |
BladeFLASK Blade Remover | Fisher Scientific | 22-444-275 | Surgery |
Cotton tip applicator | VWR | 89031-270 | Surgery |
Digitial mouse stereotaxic frame | Stoelting | 51730D | Surgery |
Dumont #7 Forceps | Roboz | RS-5047 | Surgery |
Ear bars | Stoelting | 51649 | Surgery |
EthoVision XT 11.0 | Noldus Information Technology | NA | RAWM |
Fiber-Lite | Dolan-Jeffer Industries | UN16103-DG | Surgery |
Fisherbrand Bulb for Small Pipets | Fisher Scientific | 03-448-21 | Head support apparatus |
Gemini Avoidance System | San Diego Instruments | NA | Active avoidance |
Heating Pad | Sunbeam | 732500000U | Surgery prep |
HRP conjugated goat anti-rabbit IgG | Jackson Immuno Research laboratories | 111-065-144 | IHC |
Induction chamber | Kent Scientific | VetFlo-0530XS | Surgery prep |
Isoflurane, USP | Covetrus | NDC: 11695-6777-2 | Surgery |
Mouse gas anesthesia head holder | Stoelting | 51609M | Surgery |
Neuropactor Stereotaxic Impactor | Neuroscience Tools | n/a | Surgery: Formally distributed by Lecia as impact one |
NexGen Mouse 500 | Allentown | n/a | Post-surgery, holding cage |
Parafilm | Bemis | PM992 | Head support apparatus |
Peanut - Professional Hair Clipper | Whal | 8655-200 | Surgery prep |
Povidone-Iodine Solution USP, 10% (w/v), 1% (w/v) available Iodine, for laboratory | Ricca | 3955-16 | Surgery |
Puralube Vet Oinment,petrolatum ophthalmic ointment, Sterile ocular lubricant | Dechra | 17033-211-38 | Surgery |
Rabbit anti-GFAP | Dako | Z0334 | IHC |
Rabbit anti-IBA1 | Wako | 019-19741 | IHC |
8-arm Radial Arm Water Maze | MazeEngineers | n/a | RAWM |
Scale | OHAUS CS series | BAL-101 | Surgery prep |
Scalpel Handle #7 Solid 6.25" | Roboz | RS-9847 | Surgery |
Sterile Alcohol Prep Pads (isopropyl alcohol 70% v/v) | Fisher Brand | 22-363-750 | Surgery prep |
SumnoSuite low-flow anesthesia system | Kent Scientific | SS-01 | Surgery |
10 mL syringe Luer-Lok Tip | BD Bard-Parker | 302995 | Head support apparatus |
Timers | Fisher Scientific | 6KED8 | Surgery |
Topical anesthetic cream | L.M.X 4 | NDC 0496-0882-15 | Surgery prep |
Triple antibiotic ointment | Major | NDC 0904-0734-31 | Post-surgery |
Tubing | MasterFlex | 96410-16 | Head support apparatus |
Vaporizer Single Channel Anesthesia System | Kent Scientific | VetFlo-1210S | Surgery prep |
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