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Cet article détaille le processus de fabrication des lymphocytes T à récepteurs antigéniques chimériques à usage clinique, en particulier à l’aide d’un processeur cellulaire automatisé capable d’effectuer la transduction virale et la culture de lymphocytes T. Nous formulons des recommandations et décrivons les pièges à éviter qui doivent être pris en compte lors de l’élaboration du processus et de la mise en œuvre d’un essai clinique de phase précoce.
Les cellules T à récepteurs antigéniques chimériques (CAR)-T représentent une approche immunothérapeutique prometteuse pour le traitement de diverses maladies malignes et non malignes. Les cellules CAR-T sont des cellules T génétiquement modifiées qui expriment une protéine chimérique qui reconnaît et se lie à une cible de surface cellulaire, entraînant la destruction de la cellule cible. Les méthodes traditionnelles de fabrication des cellules CAR-T sont à forte intensité de main-d’œuvre, coûteuses et peuvent comporter un risque de contamination. Le CliniMACS Prodigy, un processeur cellulaire automatisé, permet de fabriquer des produits de thérapie cellulaire à l’échelle clinique dans un système fermé, minimisant ainsi le risque de contamination. Le traitement s’effectue de manière semi-automatique sous le contrôle d’un ordinateur et minimise ainsi l’implication humaine dans le processus, ce qui permet de gagner du temps et de réduire la variabilité et les erreurs.
Ce manuscrit et cette vidéo décrivent le processus de transduction des cellules T (TCT) pour la fabrication de cellules CAR-T à l’aide de ce processeur. Le processus TCT implique l’enrichissement des lymphocytes T CD4+/CD8+, l’activation, la transduction avec un vecteur viral, l’expansion et la récolte. À l’aide de la matrice d’activité, une fonctionnalité qui permet d’ordonner et de chronométrer ces étapes, le processus TCT peut être largement personnalisé. Nous fournissons une présentation de la fabrication des cellules CAR-T conformément aux bonnes pratiques de fabrication (BPF) actuelles et discutons des tests de libération requis et des expériences précliniques qui soutiendront une demande de nouveau médicament expérimental (IND). Nous démontrons la faisabilité et discutons des avantages et des inconvénients de l’utilisation d’un processus semi-automatique pour la fabrication clinique de cellules CAR-T. Enfin, nous décrivons un essai clinique en cours initié par un chercheur qui cible les tumeurs malignes à cellules B pédiatriques [NCT05480449] comme un exemple de la façon dont ce processus de fabrication peut être appliqué dans un cadre clinique.
Le transfert adoptif de lymphocytes T modifiés pour exprimer un récepteur antigénique chimérique (CAR) a montré une efficacité remarquable dans le traitement des patients atteints de tumeurs malignes à cellules B réfractaires 1,2,3,4,5. Cependant, les méthodes traditionnelles de fabrication des cellules CAR-T sont à forte intensité de main-d’œuvre, prennent beaucoup de temps et nécessitent des techniciens hautement qualifiés pour effectuer des étapes hautement spécialisées. Par exemple, le processus de fabr....
Toutes les recherches ont été effectuées conformément aux directives de l’établissement avec l’approbation de l’Institutional Review Board (IRB) de l’hôpital, et tous les sujets ont donné leur consentement éclairé à la publication des données recueillies dans le cadre de l’essai.
REMARQUE : La première section du protocole donne un aperçu général du processus de fabrication des CAR-T. Les sections restantes fournissent les instructions étape par étape. Le protocole décrit le flux de travail à l’aide de la version 1.4 du logiciel TCT, qui est la version actuelle au moment de la rédaction de cet article. L’interface utilisateur des autres versions du logiciel TCT peu....
Les résultats des trois premiers essais de fabrication de CAR-T de l’essai NCT05480449 sont présentés ci-dessous dans le tableau 3. Le matériel de départ, le vecteur, les cytokines de culture et les concentrations sériques AB ont été maintenus constants pour chaque essai. Les produits ont été récoltés le jour 7 ou 8. La croissance cellulaire quotidienne moyenne était de 46 % (augmentation du nombre total de cellules), ce qui indique que le processus TCT était efficace pour favoriser l’e.......
La thérapie cellulaire CAR-T est apparue comme une approche thérapeutique prometteuse pour les cellules B et d’autres tumeurs malignes. Cependant, les méthodes traditionnelles de fabrication des cellules CAR-T présentent plusieurs limites, telles qu’un coût élevé, une production à forte intensité de main-d’œuvre et des étapes ouvertes qui augmentent le risque de contamination. Récemment, plusieurs plates-formes semi-automatisées, dont Miltenyi CliniMACS Prodigy (le « processeur »), ont vu le jour pou.......
S.K., S.G. et Y.W. ont reçu le soutien de Miltenyi Biotec pour leurs recherches.
Les auteurs tiennent à souligner la contribution de plusieurs personnes et organisations à ce travail. Le laboratoire de thérapie cellulaire et génique et le laboratoire d’études translationnelles et corrélatives de Pennsylvanie ont fourni une aide précieuse pour le développement de processus et la préparation des demandes d’IND. Melissa Varghese et Amanda DiNofia ont contribué à l’élaboration du processus et à la préparation des soumissions d’IND qui sous-tendent ce manuscrit. Ce travail a été soutenu par une subvention d’accélération du Cell and Gene Therapy Collaborative de l’hôpital pour enfants de Philadelphie. Les auteurs tiennent également à remercier Miltenyi ....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
12 x 75 borosilicate tubes | Charles River | TL1000 | |
20 mL Reagent Bag | Miltenyi Biotec | 170-076-631 | |
50 mL Conical Tube | Fisher | 05-539-10 | |
150 mL Transfer Set | Fenwal | 4R2001 | |
2,000 mL Transfer Set | Fenwal | 4R2041 | |
7AAD | Fisher Scientific | BDB559925 | |
Alcohol Prep | Tyco/Healthcare | ||
Bag Access | Medline | 2300E-0500 | |
CD19 APC-Vio770 REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-113-643 | |
CD19 CAR Detection Reagent Biotin | Miltenyi Biotec | 130-129-550 | |
CD19 PE | BD | 555413 | |
CD3 APC | BD | 340440 | |
CD4 VioBright FITC REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-113-229 | |
CD45 VioBlue REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-110-637 | |
CD8 APC-Vio770 REAfinity | Miltenyi Biotec | 130-110-681 | |
Cellometer Reference Beads 10um | Nexcelom | B10-02-020 | |
Cellometer Reference Beads 15um | Nexcelom | B15-02-010 | |
Cellometer Reference Beads 5um | Nexcelom | B05-02-050 | |
Cellometer Slides | Nexcelom | CHT4-SD100-002 | |
CliniMACS CD4 GMP MicroBeads | Miltenyi Biotec | 276-01 | The CD4 reagent |
CliniMACS CD8 GMP MicroBeads | Miltenyi Biotec | 275-01 | The CD8 reagent |
CliniMACS PBS/EDTA Buffer | Miltenyi Biotec | 130-021-201 | The buffer |
DMSO | Origen | CP-10 | |
Freezing Bag 50 mL | Miltenyi Biotec | 200-074-400 | |
Freezing Vial, 1.8 mL | Nunc | 12565171N | |
Freezing Vial, 4.5 mL | Nunc | 12565161N | |
Human AB serum | Valley Biomedical | Sterile filtered, heat inactivated | |
Human Serum Albumin 25% | Grifols | 68516-5216-1 | |
Human Serum Albumin 5% | Grifols | 68516-5214-1 | |
MACS GMP Recombinant Human IL-2 | Miltenyi Biotec | 170-076-148 | The cytokines |
MACS GMP T Cell TransAct | Miltenyi Biotec | 200-076-202 | The activation reagent |
MycoSeq Mycoplasma Detection Kit | Life Technologies | 4460623 | |
Needles, Hypodermic 14G | Medline | SWD200573 | |
Needles, SlideSafe 18G | BD | B-D305918 | |
Pipet tips, 2-200 μL, individually wrapped | Eppendorf | 022492209 | |
Pipet tips, 50-1000 μL, individually wrapped | Eppendorf | 022492225 | |
Pipets 10 mL | Fisher | 13-678-27F | |
Pipets 25 mL | Fisher | 13-675-30 | |
Pipets 5 mL | Fisher | 13-678-27E | |
Plasmalyte-A | Baxter | 2B2544X | The electrolyte solution |
Prodigy TS520 Tubing Set | Miltenyi Biotec | 170-076- 600 | The tubing set |
Sterile Field | Medline | NON21001 | |
Streptavidin PE-Vio770 | Miltenyi Biotec | 130-106-793 | |
Syringe 1 mL | BD | 309628 | |
Syringe 10 mL | BD | 302995 | |
Syringe 3 mL | BD | 309657 | |
Syringe 30 mL | BD | 302832 | |
Syringe 50 mL | BD | 309653 | |
TexMACS GMP Medium | Miltenyi Biotec | 170-076-306 | The medium |
Triple Sampling Adapter | Miltenyi Biotec | 170-076-609 | |
Viral Vector | CHOP Clinical Vector Core | huCART19 | |
Equipment | |||
Biological Safety Cabinet | The Baker Co | ||
Cellometer Auto 2000 | Nexcelom | ||
CliniMACS Prodigy | Miltenyi Biotec | 200-075-301 | The processor |
Controlled Rate Freezer | Planer/Kryosave | ||
Endosafe nexgen-PTS150K | Charles River | ||
Mettler Balance | Mettler | ||
Refrigerated Centrifuge | Thermo Fisher | ||
Refrigerated Centrifuge | Fisher Sci | ||
SCD Sterile Tubing Welder | Terumo | ||
Sebra Tube Sealer | Sebra | ||
Varitherm | Barkey | The dry thaw device | |
XN-330 Hematology Analyzer | Sysmex |
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