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* Ces auteurs ont contribué à parts égales
La fraction vasculaire stromale (SVF) isolée mécaniquement associée à un hydrogel de fibrine offre un support facile et efficace pour des cellules stromales viables dérivées du tissu adipeux pour diverses indications, y compris l’ingénierie tissulaire et/ou la cicatrisation des plaies. Ici, nous présentons la préparation d’une construction mécanique d’hydrogel SVF (mSVF)-fibrine pour la recherche translationnelle et l’application clinique.
Le potentiel de régénération des cellules stromales dérivées du tissu adipeux (ASC) a suscité une attention considérable dans la recherche régénérative et translationnelle. Dans le passé, l’extraction de ces cellules du tissu adipeux nécessitait un processus enzymatique en plusieurs étapes, ce qui aboutissait à un mélange cellulaire hétérogène composé de SCA et d’autres cellules, appelées conjointement fraction vasculaire stromale (SVF). Plus récemment, les protocoles d’isolation mécanique SVF (mSVF) prennent moins de temps et contournent les problèmes réglementaires. Nous avons récemment proposé un protocole qui génère des mSVF riches en cellules stromales en combinant émulsification et centrifugation. L’un des problèmes actuels dans l’application mSVF pour l’application de thérapie des plaies est l’absence d’un échafaudage offrant une protection contre les manipulations mécaniques et la dessiccation. Les hydrogels de fibrine se sont avérés être un complément utile dans le transfert cellulaire à des fins de cicatrisation des plaies dans le passé. Dans le présent travail, nous décrivons les étapes de préparation d’une construction d’hydrogel mSVF-fibrine en tant qu’approche novatrice pour la recherche translationnelle et l’application clinique.
Au cours des dernières années, la chirurgie plastique régénérative est devenue un pilier supplémentaire de la chirurgie plastique1. La chirurgie plastique régénérative vise à restaurer les tissus endommagés en transférant des facteurs solubles, des cellules et des tissus prélevés sur le patient pour favoriser la restauration des tissus de manière peu invasive2. Les cellules souches dérivées du tissu adipeux (ASC) ont attiré l’attention en raison de leur capacité à se différencier en plusieurs lignées mésenchymateuses, ce qui en fait un candidat prometteur pour la re....
Cette étude a été réalisée conformément à la Déclaration d’Helsinki. Tous les donneurs adultes ont fourni un consentement éclairé écrit pour permettre l’utilisation ultérieure des échantillons de tissus recueillis. Le protocole suit les lignes directrices du comité d’éthique de la recherche sur les êtres humains de notre établissement.
1. Prélèvement du tissu adipeux
Dosage de la résine
Nous avons d’abord examiné la viabilité cellulaire in vitro des cellules mSVF. À cette fin, nous avons effectué un test de viabilité cellulaire de la résazurine aux jours 0, 3 et 7. La figure 1 montre la viabilité cellulaire aux jours 0, 3 et 7 d’un total de quatre échantillons. Les valeurs du jour 0 servent de référence et ont été fixées à 100 %. Au jour 3, le témoin positif (mSVF) a montr.......
L’isolement mécanique de la FVS offre une alternative élégante à l’approche enzymatique traditionnelle et offre un large accès pour une application clinique29. En fait, la mSVF, telle que proposée dans le présent manuscrit, est déjà utilisée en clinique pour le traitement des tissus mous des cicatrices ou en complément des procédures esthétiques30. Le protocole présenté ici fournit une méthode simple pour une administrat.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Bong-Sung Kim est soutenu par la Fondation allemande pour la recherche (KI 1973/2-1) et la Fondation Novartis pour la recherche médico-biologique (#22A046).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
12-Wellplate | Sarstedt | 83.3921 | |
4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) | Biochemica | A1001.0010 | |
50 mL-Falcon | Falcon | 352070 | |
Absorbent Towels, Two Pack | Halyard | 89701 | |
Alamar blue 25 mL | Invitrogen | DAL1025 | |
Albumin, Bovine (BSA) | VWR | 0332-500G | |
Biotek Cytation 5 | Agilent | Cell Imaging Multimode Microplate Reader | |
CaCl2 | Sigma-Aldrich | C5670-500G | |
Cryostat | Microtome | ||
DMEM with 4,5 g/L glucose,with L-Glutamine, with sodium pyruvate | VWR | 392-0416 | |
DPBS | Gibco | 14190-144 | |
Epinephrin | Sigma-Aldrich | E4250 | |
Fetal Bovine Serum | Biowest | S181H-500 | |
Fibrinogen Human Plasma 100 mg | Sigma-Aldrich | 341576-100MG | |
Formalin | Fisher Scientific | SF100-4 | |
Formalin 4% | Formafix | 1308069 | |
FSC 22-Einbettmedium, blau | Biosystems | 3801481S | |
Hematoxylin & Eosin Solution | Sigma-Aldrich | H3136 / HT110132 | |
Lactated Ringer’s Solution 1000 mL | B Braun | R5410-01 | |
Mercedes Cannula 4mm | MicroAire | PAL-R404LL | |
NaCl 0.9% | Bbraun | 570160 | |
OCT Embedding Matrix 125 mL | CellPath | KMA-0100-00A | |
Paraformaldehyde | Fisher Scientific | 10342243 | |
PBS 1% | Sigma-Aldrich | P4474 | |
PenStrep | Sigma-Aldrich | P4333-100ML | |
Petridish 150mm | Sarstedt | 83.1803 | |
Phalloidin-iFluor 488 Reagent | Abcam | ab176753 | |
Sterile Syringe 20 mL Luer | HENKE-JECT | 5200-000V0 | |
Sterile Syringe 30 mL Luer-Lock | BD | 10521 | |
Thrombin from Human Plasma | Sigma-Aldrich | T6884-100UN | |
Tranexamic acid | Orpha Swiss | 6837093 | |
Tulipfilter 1.2 | Lencion Surgical | ATLLLL | |
Tulipfilter 1.4 | Lencion Surgical | ATLLLL |
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