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Ici, nous présentons un protocole d’imagerie intravitale du poumon gauche de souris transplantée à l’aide de la microscopie à deux photons. Il s’agit d’un outil précieux pour étudier la dynamique cellulaire et les interactions en temps réel après une transplantation pulmonaire murine.
Les complications après une transplantation pulmonaire sont en grande partie liées à la réponse du système immunitaire de l’hôte à la greffe. Ces réponses immunitaires sont régulées par la diaphonie entre les cellules donneuses et receveuses. Une meilleure compréhension de ces processus repose sur l’utilisation de modèles animaux précliniques et est facilitée par une capacité à étudier le trafic de cellules immunitaires intra-greffe en temps réel. La microscopie intravitale à deux photons peut être utilisée pour imager des tissus et des organes à des profondeurs allant jusqu’à plusieurs centaines de microns avec un minimum de photodommages, ce qui offre un grand avantage par rapport à la microscopie confocale monophotonique. L’utilisation sélective de souris transgéniques avec une expression de protéine fluorescente spécifique du promoteur et/ou le transfert adoptif de cellules marquées à un colorant fluorescent pendant la microscopie intravitale à deux photons permet l’étude dynamique de cellules uniques dans leur environnement physiologique. Notre groupe a mis au point une technique pour stabiliser les poumons de souris, ce qui nous a permis d’imager la dynamique cellulaire dans des poumons naïfs et des greffons pulmonaires transplantés orthotopiquement. Cette technique permet d’évaluer en détail le comportement cellulaire dans le système vasculaire et dans l’interstitium, ainsi que d’examiner les interactions entre diverses populations cellulaires. Cette procédure peut être facilement apprise et adaptée pour étudier les mécanismes immunitaires qui régulent les réponses inflammatoires et tolérogènes après une transplantation pulmonaire. Il peut également être étendu à l’étude d’autres affections pulmonaires pathogènes.
La transplantation pulmonaire est la dernière option pour de nombreux patients souffrant d’une maladie pulmonaire en phase terminale ; Cependant, la survie à long terme après une transplantation pulmonaire est faible par rapport à d’autres greffes d’organes solides. La survie à 5 ans n’est que de ~60 %-70 %1, contre 80 %-90 % dans le cœur2 et 85 %-90 % dans les reins3. De nombreuses complications après une transplantation pulmonaire, telles que le dysfonctionnement primaire du greffon, le rejet médié par les anticorps et le dysfonctionnement chronique de l’allogre....
Toutes les procédures de manipulation des animaux ont été effectuées conformément aux directives des National Institutes of Health Care and Use of Laboratory Animals et approuvées par le comité institutionnel de soin et d’utilisation des animaux de la faculté de médecine de l’Université de Washington.
1. Anesthésie et intubation
REMARQUE : Une greffe orthotopique du poumon gauche de souris est effectuée, comme décrit précédemment20,21. Des poumons de souris C57BL/6 (B6) de 20 à 25 g sont transplantés chez d....
Après 1 h de stockage ischémique à froid à 4 °C, nous avons transplanté orthotopiquement le poumon gauche d’une souris B6 dans une souris B6. LysM-GFPsouris 4, puis une imagerie intravitale à deux photons a été réalisée, comme décrit ci-dessus. Nous avons effectué l’imagerie à deux moments après la greffe - 2 h (Figure 3A) et 24 h (Figure 3B). Les vaisseaux sanguins sont marqués en rou.......
L’excitation à deux photons a été décrite pour la première fois dans sa thèse de doctorat par Maria Göppert-Mayer en 1931, qui a ensuite remporté le prix Nobel de physique pour avoir décrit la structure de la coquille nucléaire22,23. La microscopie à fluorescence traditionnelle repose sur l’excitation d’un seul photon, avec des longueurs d’onde d’excitation plus courtes et une énergie plus élevée que les l.......
Les auteurs ne signalent aucune divulgation pertinente.
Ce travail est soutenu par des subventions du NIH 1P01AI11650 et de la Fondation pour l’hôpital juif Barnes. Nous remercions le Centre d’imagerie in vivo de la Faculté de médecine de l’Université de Washington.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.75% povidone-iodine | Aplicare | NDC 52380-0126-2 | For disinfectant |
1-inch 20G IV catheter | Terumo | SROX2025CA | For endotracheal tube (ETT) |
1-inch silk tape | Durapore | 3M ID 7100057168 | To secure mouse in position |
20x water immersion long objective lens | Olympus | N20X-PFH | |
3M Vetbond glue | Medi-Vet.com | 10872 | To glue coverglass to lung |
655 nm non-targeted quantum dots | ThermoFisher | Q21021MP | For labeling of blood vessels |
70% ethanol | Sigma Aldrich | EX0281 | For disinfectant |
Argent High Temp Fine Tip Cautery Pen | McKesson | 231 | |
Black O ring (2 cm) | Hardware store | N/A | For custom-built imaging chamber |
Bolt (2) | Hardware store | N/A | For custom-built imaging chamber |
Brass thumb nut (2) | Hardware store | N/A | For custom-built imaging chamber |
Buprenorphine 1.3 mg/mL | Fidelis Animal Health | NDC 86084-100-30 | For pain control |
Chameleon titanium-sapphire femtosecond pulsed laser | Coherent | N/A | |
Cover glass (24 mm x 50 mm) | Thomas Scientific | 1202F63 | For custom-built imaging chamber |
Curved mosquito clamp (1) | Fine Science Tools | 13009-12 | |
Dual channel heater controller | Warner Instruments | TC-344B | |
Fine scissors (1) | Fine Science Tools | 15040-11 | |
Fixed-stage upright microscope | Olympus | BX51WI | |
Gauze (cut to 1 cm x 3 cm) | McKesson | 476709 | To place under left lung |
High vacuum grease | Dow Corning | N/A | To adhere coverglass onto top plate |
Isoflurane 1% | Sigma Aldrich | 26675-46-7 | For anesthesia |
Ketamine hydrochloride 100 mg/mL | Vedco | NDC 50989-996-06 | For anesthesia |
Metal sheet (3 cm x 7 cm) | Hardware store | N/A | For custom-built imaging chamber |
Pointed cotton-tipped applicators | Solon | 56225 | To manipulate lung and for blunt dissection |
Power Pro Ultra clipper | Oster | 078400-020-001 | |
Puralube Vet eye ointment | Medi-Vet.com | 11897 | To prevent eye dessiccation |
Small animal ventilator | Harvard Apparatus | 55-0000 | |
Straight forceps (1) | Fine Science Tools | 91113-10 | |
Three channel shutter driver | Uniblitz | VMM-D3 | Resonant scanner |
x.y.z optical stepper motor | Prior Scientific | OptiScan II | |
Xylazine 20 mg/mL | Akorn | NDC 59399-110-20 | For pain control |
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