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Ce protocole décrit une approche d’ablation laser à deux photons réalisée chez des larves de poisson-zèbre, qui sert de modèle pour étudier la régénération osseuse et les effets de la réponse immunitaire à l’ablation.
Le poisson-zèbre (Danio rerio) a une capacité exceptionnelle à régénérer différents organes et appendices. La régénération osseuse chez le poisson-zèbre a été étudiée à l’aide de différentes méthodes telles que l’amputation des nageoires, l’épilation des écailles, la trépanation du crâne et les approches microscopiques. À l’aide d’une configuration de balayage laser confocal équipée d’un laser à deux photons, une méthode d’ablation laser a été développée comme paradigme de lésion pour ablater les cellules formant l’os (ostéoblastes) dans l’opercule en développement des larves de poisson-zèbre. La méthode décrite ici permet l’ablation des cellules de manière précise, car la surface, la forme et la profondeur peuvent être ajustées avec précision. De plus, cette méthode permet d’imager la zone avant et juste après l’ablation, de sorte que les effets à court terme de la blessure peuvent être analysés. Dans ce dispositif expérimental, la réponse immunitaire après ablation des ostéoblastes dans la zone lésée a été étudiée. Une augmentation du recrutement des macrophages a été observée après l’ablation, indiquant la pertinence de leur présence lors de la régénération osseuse.
Le poisson-zèbre régénère divers organes tels que la rétine, le cerveau, le cœur et le pancréas1. De plus, le poisson-zèbre régénère les éléments squelettiques, c’est pourquoi il a été utilisé pour étudier la régénération des nageoires, des écailles et des calvaires (calottes crâniennes)2. Différents paradigmes expérimentaux ont été utilisés pour étudier la régénération tissulaire et osseuse, tels que la résection de la nageoire (amputation), la fracture de la nageoire, la trépanation du crâne 3,4, la cryolésion 5,6
Le protocole d’étude a reçu l’approbation de la Landesdirektion Sachsen, numéros de permis 25-5131/564/2, DD25-5131/450/4, 25-5131/496/56, DD25.1-5131/354/87. Les souches de poisson-zèbre utilisées ont été maintenues conformément à la législation nationale et dans des conditions normalisées comme décrit précédemment27,28. Les détails de tous les réactifs et de l’équipement utilisés dans l’étude sont répertoriés dans la table des matériaux.
1. Préparation des matériaux et des solutions
L’ablation au laser a été effectuée comme indiqué dans le protocole ci-dessus. Le signal GFP des ostéoblastes dans la zone ablée a disparu instantanément après l’ablation. Pour étudier la réponse de l’ablation des ostéoblastes en termes de réponse immunitaire, la présence de macrophages chez les larves de 6 dpf avant et à 6 hpl a été imagée. Avant l’ablation, très peu de macrophages ont été observés dans la zone de l’opercule10 (
L’ablation au laser a été appliquée dans diverses disciplines de la recherche biologique. En particulier, il a été utile comme méthode pour étudier la régénération tissulaire 10,11,12. Par exemple, le recrutement et les changements phénotypiques des cellules immunitaires innées ont récemment été analysés au fil du temps à l’aide d’un laser UV ou de tests d’ablation laser.......
Les auteurs n’ont rien à divulguer.
Ce travail a été soutenu par la Fondation allemande pour la recherche (DFG) Transregio 67 (projet 387653785), la DFG SPP 2084 μBone (projet KN 1102/2-1) à FK. Ce travail a été soutenu par l’installation de microscopie optique (projet DFG 413875620), une installation centrale de la plate-forme technologique CMCB à l’Université technique de Dresde. Les travaux de l’université technique de Dresde ont été cofinancés par des recettes fiscales basées sur le budget approuvé par le Parlement saxon (Landtag).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Calcium chloride dihydrate, CaCl2·H2O | Carl Roth | 5239.1 | |
Cell Culture Dish, PS, 100/20 mm | Greiner Bio-one | 664160 | |
Dumont #55 Foceps | FST | 11295-51 | Tip shape straight, 11 cm, 0.05 x 0.02 mm |
Falcon 6-well plate | Corning | 353502 | |
Glass-bottom microwell dish | MatTek | P35G-1.5-14-C | 35 mm Dish, No. 1.5 Coverslip, 14 mm Glass Diameter, Uncoated |
Insight X3 multiphoton laser | Spectra-Physics | ||
Leica Application Suite | LAS X, Leica Microsystems | ||
Low melting agarose | Biozyme | 840101 | Biozym Plaque Agarose |
Magnesium sulfate heptahydrate, MgSO4·7H2O | Sigma-Aldrich | M5921 | |
Mating cages | many varieties, e.g. Tecniplast | ||
Methyleneblue | Carl Roth | A514.1 | |
MS-222 | SIGMA Aldrich | A5040 | |
Potassium Chloride, KCl | PanReac AppliChem | 131494 | |
Sodium chloride, NaCl | Carl Roth | 3957.1 | |
SP8 FALCON | Leica Microsystems | Equipped with a Insight X3 multiphoton laser and Leica Application Suite software | |
Stainless Steel Dissect Needle | Bochem | 12010 | 140 mm |
Stereo Microscope System SZX16 | Olympus | Equipped with a LED illumination base SZX2-ILLTQ | |
Thermostatic Cabinets TS - WTW | xylem | TS 608/2-i | For incubation (embryo) |
Transfer pipette, 3.5 mL | SARSTEDT | 861171 | 155 x 15 mm, LD-PE, transparent |
Zeiss SteREO Discovery.V12 version 4.7.1.0. | Zeiss | Equipped with Axiocam MRm camera and AxioVision sofware |
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