Analyse histologique du tissu rénal et du patch de Peyer isolés à partir d'un modèle murin IgAN

Après avoir préparé les coupes de paraffine du rein et le patch de Peyer isolés à partir d’une souris modèle de néphropathie d’immunoglobuline A ou d’IgA, procédez au déparaffinage et à la coloration de la section de paraffine souhaitée à l’aide d’une solution acide périodique à température ambiante pendant 10 minutes tout en évitant l’exposition à la lumière. Rincez la section à l’eau distillée avant de la sécher. Colorez ensuite la partie sèche avec la solution de coloration Schiff pendant 20 à 30 minutes en évitant l’exposition à la lumière.

Rincez la section à l’eau distillée jusqu’à ce qu’elle apparaisse rouge au microscope. Plongez la section rincée dans une solution de coloration à l’hématoxyline pendant trois minutes pour colorer les noyaux, puis rincez-la à l’eau courante jusqu’à ce que la section devienne incolore. Après avoir effectué une déshydratation de routine avec des gradients de xylène et d’éthanol, scellez la section avec de la gomme neutre pour l’examiner au microscope.

Par rapport au groupe témoin, le modèle de souris de néphropathie à IgA induite par l’immunité muqueuse présente un dépôt visible d’IgA dans toute la région mésangiale. La coloration PAS du tissu rénal a montré une prolifération des cellules mésangiales et une hyperplasie stromale dans le groupe modèle, qui a été réduite dans le groupe gavage de dioscine.