JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

וידאו זה מדגים את הכנת תרביות נוירונים העיקרי של המוח של המנוח בשלב תסיסנית גלמים. צפיות של תרבויות לחיות להראות תוצאה neurite הדמיה של רמות הסידן באמצעות Fura-2.

Abstract

בסרטון הזה אנחנו מדגימים הכנת תרבויות העצבית העיקרי של המוח של המנוח בשלב תסיסנית גלמים. ההליך מתחיל עם סילוקו של מוחות מחיות ב 70-78 שעות לאחר היווצרות puparium. המוח מבודד מוצגים לאחר דגירה קצרה papain ואחריו שוטף מספר בינוני סרום ללא צמיחה. תהליך ניתוק מכני של המוח כל טיפה 5 ul של התקשורת על coverslip מודגם. האקסונים והדנדריטים של הפוסט mitotic הנוירונים התרחק ליד סומה במהלך דיסוציאציה אבל הנוירונים מתחילים מחדש תהליכים בתוך כמה שעות של ציפוי. תמונות להראות תרבויות לחיות 2 ימים. נוירונים להמשיך לפרט תהליכים במהלך השבוע הראשון בתרבות. אוכלוסיות נוירונים מסוימים ניתן לזהות בתרבות באמצעות GAL4 קווי לנהוג ביטוי רקמות ספציפיות של סמנים ניאון כגון GFP או RFP. הקלטות שלמות התא הדגימו את נוירונים בתרבית טופס פונקציונלי, סינפסות cholinergic ו GABAergic פעיל באופן ספונטני. קטע וידאו קצר ממחיש הדינמיקה סידן נוירונים בתרבית באמצעות Fura-2 כמו צבע אינדיקטור סידן לפקח הארעיים סידן ספונטנית ניקוטין התגובות סידן עורר בצלחת של נוירונים בתרבית. אלו תרבויות המוח גלמי הם מערכת מודל שימושי אילו כלים גנטיים תרופתי יכול לשמש כדי לזהות גורמים פנימיים וחיצוניים המשפיעים על היווצרות ותפקוד של סינפסות המרכזית.

Protocol

הכנות לפני יום culturing:

  1. בצע פתרון מנתחים סטרילית.
  2. הפוך את DMEM סטרילית ושומרים aliquots 10 מ"ל ב 4 מעלות צלזיוס למשך 2 שבועות.
  3. בצע סטרילי DDM2 תוספי הקפאת 50 או 100 aliquots μl במשך חודש 1.
  4. הפוך את ConA / laminin.
  5. מעיל coverslips.
    אופציונלי: בצע CNBM חנות סטרילית להקפיא עד 4 חודשים.

ביום של culturing

I. הכן פתרון אנזימים (ES) במנדף תזרים למינרית

  1. שים 5 מ"ל של ביתור פתרון (DS) בצינור צנטריפוגה 15 מ"ל.
  2. לשקול 0.8 מ"ג ציסטאין-L ב 0.6 מ"ל Eppendorf ולהוסיף 150 μl של DS. פיפטה למעלה ולמטה עד הקריסטלים נעלמו.
  3. מוסיפים 150 מ"ל של DS / ציסטאין על DS 5 מ"ל ומערבבים היטב.
  4. הוסף 50 U (יחידות) של Papain.
  5. הוסף 7 מ"ל של 0.1 N Na OH ומערבבים היטב. הפתרון יהיה ברור בתוך 30 דקות. כאשר מופעל.
  6. אנזים פתרון סינון עם מסנן 0.2 מ"מ מזרק לתוך צינור סטרילי 1.5 מ"ל כובע בורג microfuge

    Papain: רוצה 50 U DS ב 5 מ"ל. כל אצווה שונה במקצת, אז צריך לחשב כמה:
    37.3 מ"ג / מ"ל ​​ו - 28.3 U / מ"ג
    37.3 x 28.3 = 1055.59 U / ml (1000 מ"ל)
    50 U = 47.4 מ"ל

השנייה. הפוך את DDM2 התקשורת

ביום של culturing: להוסיף את התוספים הבאים כדי DDM2

עד 10 מ"ל של DMEM להוסיף את התוספים, ממש לפני culturing:

  1. 100μl transferrin
  2. 100μl Putrescine
  3. 100μl סלניום
  4. 100μl הפרוגסטרון
  5. 50μl אינסולין
  6. 10μl 20-Hydroxyecdysone

הערה: בצע מספיק DDM2 לכל התרבויות המתוכנן (כל המוח מצופה על coverslip יחיד צלחת פטרי 35 מ"מ בודדים, 1.5 ms התקשורת / תרבות)

שלב III-VI יכול להיות על הספסל נעשה במעבדה nonsterile ואמור להסתיים תוך 45 דקות או פחות.

ג. אוסף גלמים

  1. בחר 10-15 גלמים משני של הבקבוקון תחת מיקרוסקופ לנתח.
  2. המקום גלמים במכסה של צלחת פטרי 35 מ"מ יבש.

הערה: אנו משתמשים בדרך כלל במוחם של גלמים בין 55-78 שעות לאחר היווצרות puparium (APF). זה מעט קשה יותר לנתח את המוח של גלמים הצעיר מאז כמוסות ראש נוטים לקרוס, בעוד הרמה הכללית של תולדה neurite נמוכה מעט מ גלמים הבכור. בשנת המתח wildtype קנטון-S, בשלבים אלה מוכרים על ידי פיגמנט בעיניים כי הם חום בהיר עד מעט אדמדם, עם פיגמנט מעט במקום אחר.

IV. עריפת ראש תחת מיקרוסקופ לנתח

  1. מניחים שתי טיפות של תמיסת לנתח סטרילי בתוך מכסה של צלחת פטרי, ליד גלמים.
  2. בעדינות להחזיק גולם אחד עם מלקחיים קנס ביד שמאל ולהשתמש 27 מזרק מחט מד מצורף מזרק 1 סמ"ק ביד ימין כדי להסיר את העור המת בקצה הקדמי של גולם.
  3. לסחוט מעט גולם עם מלקחיים כראש עולה 27 להשתמש מחט מד לנתק את הצוואר.
  4. עם קצה של מחט או מלקחיים, העברת ראש טיפת לנתח פתרון.
  5. חזור על הפעולה עד שיש לך 10-15 ראשי בטיפה אחת.

V. הסרת המוח מהראש תחת מיקרוסקופ לנתח

  1. ביד כל אחד להחזיק מזרק 1 סמ"ק עם מחט מד 27.
  2. השתמש אלה לתפקיד ראש לטוס ירידה של ביתור פתרון כל כך חוטם פונה אליך את פני השטח הגבי של הראש הוא בצפון.
  3. הכנס את המחט שמאלה אל חוטם כדי להצמיד את הראש למטה ולהשתמש מחט הזכות לבצע חתך בעין ימין העובר מן הגחון אל פני השטח הגבי.
  4. הכנס את המחט ממש ליד שמאל באזור חוטם ולאחר מכן להשתמש במחט משמאל בעדינות לדכא את הקוטיקולה מעל העין השמאלית, דוחפים את המוח לכיוון החריץ בעין ימין. המוח צריך לצאת מן חריץ בצד ימין, ללא פגע יחסית, לעתים קרובות עם שני lo אופטייםBES עדיין מחוברת ולפעמים רקמת העין פיגמנט גם כן.
  5. דחוף את המוח על גבו של המחט ולהעביר לירידה של תמיסת מלח סטרילית לנתח בצלחת חדש סטרילי, 35 מ"מ פטרי.
  6. איסוף 10-15 מוחות עבור כל גנוטיפ.

VI. הסרת אונות אופטיים וטיפול אנזים

  1. ביד כל אחד להחזיק מזרק 1 סמ"ק עם מחט 27 מד ולהשתמש אלה כדי לאסוף את כל המוחות בתחום אחד קטן של ירידה של פתרון לנתח
  2. שימוש במזרקים כמו כלי חיתוך כדי להסיר את האונות אופטיים מהמוח כל כך את הרקמה הנותרת לתרבות הוא האזור במוח המרכזי.
  3. השתמש pipetman 20 μl, נקבע μl 5, להעביר את כל במוחם של גנוטיפ יחיד צינור Eppendorf המכילה 1 מ"ל של תמיסת papain סטרילית.
  4. המוח מודגרות ב papain במשך 10-15 דקות על קבוצה מסובב ב 60 סל"ד.
  5. צנטריפוגה בסל"ד 3000 למשך 3 דקות.

בתוך מכסה המנוע זרימה למינרית סטרילי - כל השלבים שבו רקמה חשוף לאוויר צריך להיעשות ברדס זרימה למינרית עבור השלבים הנותרים.

VII. כביסה

  1. הסר פתרון אנזים ולהחליף פתרון מנתחים סטרילית.
  2. צנטריפוגה בסל"ד 3000 למשך 3 דקות.
  3. לשטוף עם פתרון לנתח סטרילי בסך הכל 3 פעמים.
  4. הסר מלוחים לנתח ולהחליף DDM2.
  5. צנטריפוגה ולשטוף בסך הכל 2 פעמים עם DDM2.
  6. העברת מוח התקשורת מ"מ צלחת פטרי סטרילית 35.

VIII. טחינה דקה ו ציפוי תחת מיקרוסקופ לנתח

  1. מקום 5 ul של DDM2 במרכז coverslip.
  2. העברת 1 המוח ירידה זו של DDM2 עם קצה צהוב.
  3. מתחת למיקרוסקופ, להשתמש במחטים 27 מד אל הקוביות את המוח לחתיכות קטנות (צריך לקחת <1 דקה).
  4. תחת הדרכתו חזותיים, לשבור את קצה pipet כוס כי כבר משך לנקודה קנס כך חלקים גדולים יותר יכולים להישאב לתוך בעדינות קצה pipet וגורשו בחזרה לתוך המדיום. אנו משתמשים צינורות יניקה בפה כי מגיעות כסטנדרט עם זכוכית 100 המטוקריט μl נימי.

    הערה: הקפד לא לקבל בועות בתקשורת תצטרך אמפירי לקבוע את גודל pipet הטובה ביותר לשימוש. אלה טובים מאפשרים לך לנתק את המוח עם כמה תאים בודדים ועדיין כמה גושים גדולים, כ -30 שניות / המוח. כשאתה מסתכל על אלה בהספק גבוה יותר, כ 10-20% של נוירונים צריך עדיין יש כמה תהליכים שנותרו עדיין יהיו כמה גושים גדולים. אם לנתק יותר מדי, אז כל התאים יהיו עגולים יהיה להם נזק נגרם כל כך הרבה הם לא ישרדו. צעד זה דורש תרגול חייב להיעשות במהירות מאז יש יחס גדול משטח ל-נפח osmolality ו-pH של ירידה של DDM2 יכול להשתנות במהירות. רקמות צריך להיות ממוקם בתוך חממה CO 2 במהירות האפשרית.

  5. כתוב על מכסה צלחת פטרי ", גנוטיפ התאריך והשעה".
  6. שים את 35 מ"מ צלחת פטרי בתוך צלחת פטרי 100 מ"מ (עם kimwipe רטוב) ולתת להתיישב CO 2 באינקובטור למשך 30 דקות.
  7. המבול צלחת 35 מ"מ עם 1.5 מ"ל של DDM2.
  8. שמור תרבויות בחממה של 5% CO 2 באינקובטור (23 ° C).

    הערה: אם אין לך גישה ל-CO 2 באינקובטור קירור, השתמש תקן יונקים בתרבית רקמה החממה או לשים אותו בחדר חום קריר עד 23 ° C, או לשים במעבדה, לכבות זמני, ולהשתמש מגש קרח בחלק התחתון של החממה להסדיר זמני סביב הסביבה.

IX. האכלה תאים

  1. ביום 1 (למחרת), להוסיף 0.5 מ"ל של CNBM/B27 (Media אילף) כדי להפוך 03:01 DDM2: CNBM/B27.
  2. ביום 5 להחליף 1 מ"ל של התקשורת 03:01 DDM2: CNBM/B27.
  3. שמור תאים האכלה עם 03:01 DDM2: CNBM/B27 כל 4-5 ימים.

    הערה: תרבויות ניתן לגדל בלי הלא ממוזג אבל התקשורת העצבית הנוירונים נראים קצת שבירים יותר וקשה יותר לשימוש בניסויים electrophysiology.

Discussion

נוירונים שנקטפו מן המוח של מכרסמים עובריים / לאחר הלידה ניתן לגדל בתרבית תאים העיקרי שבו הם להאריך neurites וליצור קשרים סינפטיים תפקודית. שיטות הכנה של תרבויות אלה מבוססים היטב מחקרים בתרבויות מכרסם העצבית יש תפקיד קריטי בזיהוי גנים וגורמים סביבתיים מעורבים ויסות היווצרות פונקצי...

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי NIH כדי להעניק NS27501 DKOD. תמיכה נוספת עבור עבודה זו סופק על ידי מענק קליפורניה תמיכה DKOD באמצעות תוכנית פרופ HHMI.

Materials

Coverslips לציפוי: לשים coverslips autoclaved בצלחת פטרי 60 מ"מ. 5 Pipet ul של קון תערובת / Laminin על מרכז coverslip כל אחד. מקום 37 C החממה למשך 2 שעות. לשטוף coverslips 3x עם ul 100 מים autoclaved כל אחד. השתמש ואקום המצורפת pipet פסטר סטרילית. במהלך השטיפה האחרונה, להרים את coverslip עם מלקחיים ויבש שני הצדדים. מעבירים את coverslip כדי בצלחת פטרי 35mm. אחסן בטמפרטורת החדר עד חודש.

References

  1. Banker, G., Goslin, K. . Culturing Nerve Cells. , (1991).
  2. Rohrbough, J., O'Dowd, D. K., Baines, R. A., Broadie, K. Cellular bases of behavioral plasticity: Establishing and Modifying synaptic circuits in the Drosophila Genetic System. J. Neurobiol. 54, 254-271 (2003).
  3. O'Dowd, D. K. Voltage-gated currents and firing properties of embryonic Drosophila neurons grown in a chemically defined medium. J. Neurobiol. 27, 113-126 (1995).
  4. Lee, D., O'Dowd, D. K. Fast excitatory synaptic transmission mediated by nAChR in cultured Drosophila neurons. J. Neurosci. 19, 5311-5321 (1999).
  5. Su, H., O'Dowd, D. K. Fast synaptic currents in Drosophila mushroom body Kenyon cells are mediated by alpha-bungarotoxin-sensitive nAChRs and picrotoxin-sensitive GABA receptors. J. Neurosci. 23, 9246-9253 (2003).
  6. Jiang, S. A., Campusano, J. M., Su, H., O'Dowd, D. K. Drosophila mushroom body Kenyon cells generate spontaneous calcium transients mediated by PLTX-sensitive calcium channels. J. Neurophysiol. 94, 491-500 (2005).
  7. Campusano, J. M., Su, H., Jiang, S. A., Sicaeros, B., O'Dowd, D. K. nAChR-mediated calcium responses and plasticity in Drosophila Kenyon cells. Develop Neurobiol. 67, 1520-1532 (2007).
  8. Oh, H. -. W., Campusano, J. M., Hilgenberg, L. G. W., Sun, X., Smith, M. A., O'Dowd, D. K. Ultrastructural analysis of chemical synapses and gap junctions between Drosophila brain neurons in culture. Develop Neurobiol. , (2007).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

Neuroscience4Fura 2

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved