JoVE Logo

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Protocol
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

שיטה זו מתארת ​​כיצד לנתח ולהעריך התפתחות תפקוד בלוטת החלב ומן העכברים. בלוטות החלב נכרת מוערכים לתואר הפיתוח באמצעות הר שלם תוך פליטה החלב מוערך באמצעות אוקסיטוצין מבוססי assay myoepithelial התכווצות התא.

Abstract

בלוטת החלב האנושי מורכב האונות 15-20 כי חלב מפרישים לתוך הפתח הסתעפות מערכת צינור לעבר הפטמה. אונות אלו הן עצמם מורכבת ממספר יחידות מסוף אונתית צינור עשוי alveoli הפרשה ותעלות מתכנסים 1. בעכברים, ארכיטקטורה דומה שנצפה הריון שבו צינוריות ו alveoli משובצים בתוך stroma רקמת החיבור. אפיתל עכבר בלוטת החלב הוא עץ כמו מערכת של צינורות מורכב משתי שכבות של תאים, השכבה הפנימית של תאים luminal מוקף שכבה חיצונית של תאים myoepithelial כונה על ידי לגבולות קרום המרתף 2. בזמן הלידה, רק עץ ductal rudimental קיים, המורכב סניפים הדביק 15-20 העיקרי. סניף התארכות ולהתחיל הגברה בתחילת גיל ההתבגרות, סביב 4 שבועות, תחת השפעה של הורמונים 3,4,5. ב 10 שבועות, רוב stroma הוא פלש ידי מערכת מורכבת של צינורות כי יעברו מחזורים של הסתעפות ונסיגה כל מחזור הייחום עד ההריון 2. עם תחילת ההריון, השלב השני של הפיתוח מתחיל, עם התפשטות והבחנה של אפיתל ליצירת ענבים בצורת הפרשה חלב מבנים קרא alveoli 6,7. לאחר הלידה ובמהלך ההנקה, החלב מיוצר על ידי תאים הפרשה luminal ו מאוחסן בתוך לומן של alveoli. לשחרר אוקסיטוצין, מגורה על ידי רפלקס עצבי המושרה על ידי היניקה של הגורים, גורמת להתכווצויות מסונכרן של תאים myoepithelial סביב alveoli לאורך צינורות, המאפשר חלב להיות מועבר דרך הצינורות אל הפטמה שבה הוא הופך להיות זמין עד 8 ​​גורים. התפתחות בלוטת החלב בידול, ותפקוד הם דורשים מתוזמר היטב, לא רק אינטראקציות בין stroma את האפיתל, אך גם בין תאים myoepithelial ו luminal בתוך האפיתל 9,10,11. ובכך, מוטציות בגנים רבים מעורבים אינטראקציות אלה עלולים לפגוע גם התארכות ductal במהלך היווצרות ההתבגרות או alveoli במהלך ההריון התמיינות מוקדם במהלך ההריון המאוחרות ההפעלה הפרשה המוביל הנקה 12,13. במאמר זה, אנו מתארים כיצד לנתח בלוטות החלב עכבר ולהעריך את התפתחותם באמצעות mounts כולו. אנחנו גם מדגימים כיצד להעריך התכווצויות myoepithelial ואת פליטת חלב באמצעות לשעבר vivo אוקסיטוצין מבוססי assay תפקודית. ההשפעה של מוטציה בגן על התפתחות בלוטת החלב לתפקד ולכן יכול להיקבע באתרו על ידי ביצוע שתי הטכניקות הללו בעכברים מוטציה מלאה ו wild-type.

Protocol

1. בלוטת החלב לנתיחה

  1. להרדים את העכבר באמצעות שאיפת CO 2. הימנע נקע בצוואר הרחם אם אפשר שכן הוא עלול לפגוע בכלי הדם הגדולים בצוואר לגרום להצטברות של דם סביב בלוטות החלב, עיבוד לנתיחה קשה יותר. עם זאת, אם קריטריונים אחרים יש להעריך אותו עכבר, כגון רמות של אוקסיטוצין, שיטות המתת חסד חלופי עשוי להיות נחוץ, אם כי זה צריך להיות מוערך על ידי IACUC שלך.
  2. על קצף פוליסטירן עטופה בנייר, במקום את העכבר על גבו ולהפיץ את ארבעת הגפיים. הצמד בחוזקה את כל ארבעת הגפיים באמצעות 16-20 מחטים מד (איור 1A).
  3. תרסיס העכבר בנדיבות עם אתנול 70%.
  4. בעזרת מלקחיים, למשוך את העור בבטן בכל קו האמצע ולעשות חתך קטן במספריים חדים.
  5. החל מ החתך, לחתוך את העור עד הצוואר של החיה תוך הימנעות ניקוב החללים הבטן או החזה (איור 1B).
  6. חותכים את העור על הרגליים הקדמיות על החתך קו האמצע, וכתוצאה מכך "צורת Y" (איור 1B). חותכים את העור של הגפיים האחוריות באותה דרך (איור 1B).
  7. בעזרת מלקחיים עוצר דמום, לקלף בעדינות את העור של הבטן החזה בצד של העכבר. במידת הצורך, בעדינות לחתוך רקמות מקשר.
  8. תקן את העור באמצעות קצף פוליסטירן 16-20 מחטים מד, לחשוף את בלוטות החלב המצורפת התחתון של העור. המשך והשלמה צד אחד בכל פעם (תרשים 1C).
  9. בעזרת מלקחיים, בעדינות להרים את בלוטת החלב עניין לחתוך בין בלוטת ואת העור במספריים חדות קטן, החל מבחוץ לכיוון עמוד השדרה של החיה. הקפד לחתוך בזהירות, כדי לא פיסות עור או שריר להישאר על בלוטת. בלוטות החלב כל (איור 1) ניתן להסיר באמצעות פרוטוקול זה, אבל בלוטות החלב בטן (מס '4) הם הטובים ביותר עבור כל הרכבה. Nd 2 ו 3 בלוטות rd יש שרירים interdigitated ובעוד הם יכולים לשמש הר היסטולוגיה כולו, הם עלולים שלא להתאים לכל מנתח.

2. שלמה הר

  1. לפחות יום אחד לפני לנתיחה, להכין פתרון ארגמן אלום ידי המסת 1g של ארגמן ו 2.5G של אלומיניום סולפט אשלגן 500 מ"ל מים מזוקקים להרתיח במשך 20 דקות בתוך בקבוק 1 ליטר Erlenmeyer. התאמת עוצמת השמע הסופי 500 מ"ל מים. סינון דרך נייר Whatman ולהוסיף כמות קטנה של תימול (גרגרי) כחומר משמר. מכניסים למקרר. לאחר צביעה, פתרון ארגמן אלום ניתן שפכו בחזרה בקבוק המניות ולעשות בהם שימוש חוזר פעמים רבות על פני מספר שבועות. בצע פתרון טרי כאשר צבע הופך קלוש.
  2. לאחר גוזמות את בלוטת החלב של העכבר (שלב 1), להפיץ אותו ישירות על זכוכית שקופית. נסה לשטח אותו ככל האפשר, תוך שמירה על צורתו המקורית באתרה. בלוטת ידבק בשקופית יפה כאשר נמתח כראוי.
  3. תקן את בלוטת ידי טבילה זה, בשקופית, ב מקבע של Carnoy (100% EtOH, כלורופורם, חומצה אצטית קרחונית; 06:03:01) במשך 4 שעות בשכונה קטר בטמפרטורת החדר בצנצנת. שים לב ואחרים השתמשו 2 שעות אשר נראה מספיק. לחלופין, בלוטות יכול להיות גם קבוע 4 ° C למשך הלילה.
  4. לשטוף באתנול 70% במשך 15 דקות. ואז, בהדרגה רעננותם במים על ידי הסרת מחצית הפתרון אתנול מצנצנת והחלפתו DDH 2 O. דגירה של 5 דקות. חזור 3 פעמים. לחלופין, השתמש ב -70% - 35% -, 15% - אמבטיות אתנול ומים במשך 5 דקות כל אחד.
  5. שטפו במים מזוקקים למשך 5 דקות.
  6. כתם אלום ארגמן לילה בטמפרטורת החדר. יצוין כי מכתים עשויה להימשך זמן רב בהתאם לעובי של בלוטת.
  7. הסר אלום ארגמן כתם על שימוש חוזר בהדרגה מייבשים רקמה צבעונית באמצעות אמבטיות אתנול סדרתי (50%, 70%, 95%, 100%) במשך 5 דקות כל אחד וברור קסילן, או חלופה רעיל כמו histo, ברור, בן לילה. גם התייבשות עלולה גם דורשים ניקוי incubations כבר עם דגימות עבה.
  8. בלוטת החלב לטבול salicylate מתיל. בלוטות החלב יכולים להישמר salicylate מתיל במנדף קטר עד דימויים מוכנים לקחת.
  9. דמויות יכולות להילקח במנדף קטר עם מצלמה דיגיטלית רגילה ממוקם על חצובה (שימוש בפונקציה "מאקרו" אם קיים), על ידי הצבת את השקופיות על שולחן אור. שימוש במיקרוסקופ לנתח עבור ההגדלה גבוה יותר. לחלופין, בלוטות החלב יכול להיות מותקן בכלי התקשורת כגון Permount (לאחר שלב 2.7) המאפשר תמונות להילקח מחוץ למכסה המנוע כימי עשן על כל פלטפורמה הדמיה מתן mounts הם דקים מספיק.
  10. על מנת לכמת את התפתחות בלוטת החלב באמצעות הר שלמה, מדידות כגון מספר השלכות (או תופעות סניפים) לאורך חלקים של הצינורות, את אורך הצינורות העיקרי, או יחס של אפיתל לאזור רקמת שומן יכולה להעריך. לבסוף, לאחר documen הצילום, סימטרייה הר בלוטת החלב כולו יכול להיות מוטבע פרפין עבור חתך והכתים היסטולוגית קונבנציונאלי.

3. אוקסיטוצין-Induced חלב פליטה

  1. הפרד את הגורים מן הסכר רק לאחר שהם כבר נמאס. חכו 1 שעה לפני ביצוע assay.
  2. הקורבן האם לחשוף את בלוטות החלב כפי שתואר קודם לכן (שלבים 1.1-1.8), מבלי להסיר אותם מן החיה.
  3. הפעל את assay באופן שווה על ידי הפלה או PBS או פתרון אוקסיטוצין ישירות על בלוטת החלב של עניין, בעזרת פיפטה ההעברה. ספקטרום רחב של מנות יכול לשמש; ~ 8 pg / ml (מנה פיזיולוגיים) משמש בדרך כלל. עם זאת, גבוהה שאינם מינונים פיזיולוגיים (עד 1 מ"ג / מ"ל) ניתן להשתמש כדי להבטיח את העדר התגובה מודלים עכבר מהונדס גנטית. עבור הליך זה, מומלץ להשתמש החזי (# 03/02) בלוטות, באמצעות צד אחד כביקורת (חשופים PBS) ואת הצד השני כדי לבדוק פליטה חלב (חשיפה אוקסיטוצין).
  4. דגירה דקה 1 ולהסיר את הפתרון על ידי בקפידה aspirating אותו עם טפטפת ההעברה. כניסה חלב לתוך הצינורות ניתן לנטר באמצעות הקלטת וידאו, או על ידי לקיחת תמונות לפני ואחרי החשיפה PBS או אוקסיטוצין.

4. נציג תוצאות:

בהר שלמה טובה, בלוטת החלב היא התפשטה יפה הצינורות האפיתל הם נצפות בקלות (איור 2 א). אם בלוטת אינו היטב להתפשט, זה יכול להרים בחלקו או לחלוטין שקופית כאשר הניח הפתרון מקבע. בלוטת יהפוך קשה שמיש (2B איור). באופן דומה, אם הבלוטה לא גזור טוב, או חלק האפיתל יכול להיות חסר (איור 2C) או שאר חלקי העור או שרירי הבטן יפריע ניתוח של בלוטת (איור 2 ד).

עבור assay אוקסיטוצין, חשוב להפריד את הגורים יונק מן הסכר עבור אותה כמות של זמן בכל הזדמנות. בדרך זו תוכלו לוודא כי אין חלב או כמויות קטנות של חלב קיים הצינורות לפני החשיפה אוקסיטוצין, אבל גם זה מספיק חלב קיים alveoli שיכול להפלט לתוך הצינורות על ידי התכווצויות myoepithelial (איור 3A) . אם הגורים יוסרו מוקדם מדי, חלב יכול לצבור את alveoli ועל הצינורות טיוח את ההשפעה של אוקסיטוצין קשה לעקוב (איור 3B). לחילופין, אם הניסוי מבוצע מוקדם מדי לאחר הסרת הגור, חלב לא יהיה לך זמן לצבור את alveoli אוקסיטוצין ו-Induced התכווצויות של תאים myoepithelial לא יפעילו לשחרר מספיק חלב לתוך הצינורות כדי לצפות (איור 3 ג).

figure-protocol-7382
באיור 1. לנתיחה עכבר בלוטת החלב. הצמד את העכבר על גבו על ידי ארבעת הגפיים (A). חותכים את העור הראשון מתוך הבטן עד צוואר. ואז לעשות חתכים בניצב ממרכז הבטן אל כל איבר, כפי שמוצג ע"י הקו המקווקו (B). לקלף בעדינות את העור בצד של החיה ומהדקת אותו, לחשוף את בלוטות החלב (C).

figure-protocol-7803
2. איור עכבר כל בלוטת החלב הר. צינוריות אפיתל (חיצים) ואת הלימפה (ראש חץ) הם נצפו בקלות בהר להפיץ יפה בלוטת החלב שלמה של בלוטת # 4 (א). בלוטת החלב התפשטות לקוי עלול להיות מנותקת לשקופית והתמוטט, טיוח זה לא שמיש (B). בלוטת החלב נכרת שלא כדין יכולים להיות חלקים חסרים (ג) או פיסות עור או שריר הנותרים (ד '). שים לב nd 2 ו 3 בלוטות rd יש interdigitated שרירים, אבל עדיין יכול לשמש הר כולו או היסטולוגיה.

figure-protocol-8382
איור 3. אוקסיטוצין-Induced פליטה חלב ניתן לצפות צינוריות אפיתל (חיצים) בעקבות חשיפת אוקסיטוצין (A). עם זאת, אם הצינורות מלאים כבר בתחילת assay בשל תקופה ארוכה של חביון הולם אחרי האחרונה של יונק את הגורים, הצטברות נוספת של חלב בתוך הצינורות (חיצים) לאחר החשיפה אוקסיטוצין עם חלב (חיצים) קשה לצפות (B). לחילופין, תקופת חביון קצר לאחר הגור יונק לא יאפשר צבירת מספיק חלב לתוך alveoli כדי לצפות כראוי אחרי חשיפה אוקסיטוצין (ג) את צינוריות (חיצים). תמונות שנלקחו לפני ואחרי החשיפה אוקסיטוצין באמצעות מצלמה מספרי (Cybershot, סוני).

figure-protocol-9059
איור 4. ייצוגים סכמטי של כל מבחני טיפול גובר אוקסיטוצין.

Discussion

התפתחות בלוטת החלב הם פונקציה מתוזמר היטב. עכברים Mutant עשוי הנמל מוטציות גנטיות שיכולות לפגוע בהתפתחות בלוטת החלב לתפקד הדגשת הצורך להעריך ארכיטקטורה בלוטת 13,12. הרכבה שלם ניתן לבצע כפי שמתואר במאמר זה בכל שלבי התפתחות בלוטת החלב. בדרך כלל, פיתוח של האפיתל נבחנת ?...

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים הכריז.

Acknowledgements

מחקרים אלו מומנו על ידי CIHR ומענקים CBCRA ל DWL. IP מומן על ידי מלגות CIHR מ-STP, FRSQ ו CIHR. MKGS מומן על ידי מלגות OGS CIHR ו-STP. המחברים מודים קווין בר עזרתו עם גידול העכבר.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
מגיב חברה מספר קטלוגי
ארגמן סיגמא אולדריץ C1022
אשלגן אלומיניום גופרתי סיגמא אולדריץ A6435
תימול סיגמא אולדריץ T0501
מתיל salicylate סיגמא אולדריץ M6752
אוקסיטוצין סיגמא אולדריץ O3251

References

  1. Geddes, D. T. Inside the lactating breast: the latest anatomy research. J Midwifery Womens Health. 52, 556-556 (2007).
  2. Sternlicht, M. D. Key stages in mammary gland development: the cues that regulate ductal branching morphogenesis. Breast Cancer Res. 8, 201-201 (2006).
  3. Silberstein, G. B., Flanders, K. C., Roberts, A. B., Daniel, C. W. Regulation of mammary morphogenesis: evidence for extracellular matrix-mediated inhibition of ductal budding by transforming growth factor-beta 1. Dev Biol. 152, 354-354 (1992).
  4. Daniel, C. W., Robinson, S., Silberstein, G. B. The role of TGF-beta in patterning and growth of the mammary ductal tree. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 1, 331-331 (1996).
  5. Neville, M. C., Daniel, C. W. . The Mammary gland : development, regulation, and function. , (1987).
  6. Oakes, S. R., Hilton, H. N., Ormandy, C. J. The alveolar switch: coordinating the proliferative cues and cell fate decisions that drive the formation of lobuloalveoli from ductal epithelium. Breast Cancer Res. 8, 207-207 (2006).
  7. Anderson, S. M., Rudolph, M. C., McManaman, J. L., Neville, M. C. Key stages in mammary gland development. Secretory activation in the mammary gland: it's not just about milk protein synthesis!. Breast Cancer Res. 9, 204-204 (2007).
  8. Reversi, A., Cassoni, P., Chini, B. Oxytocin receptor signaling in myoepithelial and cancer cells. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 10, 221-221 (2005).
  9. Haslam, S. Z. Cell to cell interactions and normal mammary gland function. J Dairy Sci. 71, 2843-2843 (1988).
  10. Plante, I., Laird, D. W. Decreased levels of connexin43 result in impaired development of the mammary gland in a mouse model of oculodentodigital dysplasia. Dev Biol. 318, 312-312 (2008).
  11. Talhouk, R. S. Heterocellular interaction enhances recruitment of alpha and beta-catenins and ZO-2 into functional gap-junction complexes and induces gap junction-dependant differentiation of mammary epithelial cells. Exp Cell Res. 314, 3275-3275 (2008).
  12. Palmer, C. A., Neville, M. C., Anderson, S. M., McManaman, J. L. Analysis of lactation defects in transgenic mice. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 11, 269-269 (2006).
  13. Howlin, J., McBryan, J., Martin, F. Pubertal mammary gland development: insights from mouse models. J Mammary Gland Biol Neoplasia. 11, 283-283 (2006).
  14. You, L. Modulation of mammary gland development in prepubertal male rats exposed to genistein and methoxychlor. Toxicol Sci. 66, 216-216 (2002).
  15. Grill, C. J., Cohick, W. S., Sherman, A. R. Postpubertal development of the rat mammary gland is preserved during iron deficiency. J Nutr. 131, 1444-1444 (2001).
  16. Hennighausen, L., Robinson, G. W. Think globally, act locally: the making of a mouse mammary gland. Genes Dev. 12, 449-449 (1998).
  17. Aupperlee, . Strain-specific differences in the mechanisms of progesterone regulation of murine mammary gland development. Endocrinology. 150, 1485-1485 (2009).
  18. Montero Girard, G. Association of estrogen receptor-alpha and progesterone receptor A expression with hormonal mammary carcinogenesis: role of the host microenvironment. Breast Cancer Res. 9, R22-R22 (2007).
  19. Moore, D. M., Vogl, A. W., Baimbridge, K., Emerman, J. T. Effect of calcium on oxytocin-induced contraction of mammary gland myoepithelium as visualized by NBD-phallacidin. J Cell Sci. 88, 563-563 (1987).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

53

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Research

Education

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved