JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

סלמונלה spp /שיגלה spp. הם נפוצים פתוגנים לייחס שלשול. כאן, אנו מתארים פלטפורמה תפוקה גבוהה להקרנה של סלמונלה spp / spp.שיגלה באמצעות PCR בזמן אמת בשילוב עם תרבות מודרכים.

Abstract

מחזור צואה-פה שידור של להרעלתו חריפה מתרחשת מפעם לפעם, במיוחד כאשר אנשים שטיפל מזון ומים נגועים על ידי סלמונלה spp/Shigella spp. שיטת תקן זהב עבור הגילוי של סלמונלה spp/Shigella spp. היא תרבות ישירה אבל זו שדורשת ולגזול. כאן, אנו מתארים פלטפורמה תפוקה גבוהה עבור/Shigella spp. סלמונלה spp ההקרנה, משתמש בזמן אמת תגובת שרשרת פולימראזית (PCR) בשילוב עם תרבות מודרכים. ישנם שני שלבים עיקריים: בזמן אמת PCR ותרבות מודרכים. השלב הראשון (PCR בזמן אמת), להסביר כל שלב של השיטה: לטעום אוסף, העשרה קדם, מיצוי DNA ו- PCR בזמן אמת. התוצאה PCR בזמן אמת היא חיובית, אם מתבצע השלב השני (תרבות מודרך): תרבות סלקטיבית, הביוכימי זיהוי ואפיון סרולוגית. אנחנו גם להמחיש את התוצאות נציג שהופקו ממנה. הפרוטוקול המתואר כאן יהיה פלטפורמה יקר להקרנה מהירה, ספציפית, רגיש, תפוקה גבוהה של סלמונלה spp /שיגלה spp.

Introduction

שלשול הוא עדיין בעיית בריאות משותפת עם שכיחות גבוהה שיעור כללי1,2. למרות התמותה היא נמוכה יחסית, חלק מהחולים מראים סימפטומים שונים במשך שבועות (כגון רפוי, דומעות שרפרפים, דחוף ללכת לשירותים), שהופכים את ההשפעה חברתי-כלכלי גבוה מאוד3,4. יותר ברצינות, חלק מהחולים עשויים להתפתח גם תסמונת המעי הרגיז אם אינו מטופל5. ישנם סוגים שונים של חיידקים, וירוסים, טפילים שיכולים לגרום לשלשול6. סלמונלה spp /שיגלה spp. הם בין החיידק הנפוץ ביותר להעברת להרעלתו חריפה7,8,9,10,11. לכן, מדינות רבות פרסמו חוקים או תקנות רגיל סלמונלה spp / spp.שיגלה הקרנת בקרב אנשים היה מתמודד עם מים ואוכל. לדוגמה, הממשלה הסינית פרסמו חוקים עבור חובה סלמונלה spp / spp.שיגלה הקרנה פעם בשנה.

לשיטת תקן הזהב סלמונלה sppשיגלה spp. זיהוי זה התרבות חיידקים. דרך התרבות חיידקים, רצופים הביוכימי זיהוי ואפיון סרולוגית, נוכל לזהות המינים של חיידקים, אשר יכול להקל על ניהול התפרצות המחלה והגדרת פרופיל מיקרוביאלית לסייע לטיפול בחולים 12. זה גם יכול לעזור לאתר. את מקור זיהום במהלך סלמונלה spp /שיגלה spp. התפרצות13. עם זאת, שיטה זו היא מהגידולים (דרישת ידני), זמן רב (לוקח מספר ימים), במיוחד עבור בדיקה של מספר רב של דוגמאות7. יתר על כן, מעשית אלא ללא-culturable (VBNC) סלמונלה spp /שיגלה spp.קיים בדגימות צואה14. על רקע מחסרונות אלה, מעבדות רבות ניסו לפתח טכניקות חדשות עבור הגילוי של סלמונלה spp /שיגלה spp.15,16,17,18 , 19 , 20 , 21 , 22 , 23 , 24 , 25. כל השיטות האלה השתמש במבחן הגברה חומצת הגרעין (NAAT), ביניהם תגובת שרשרת פולימראזית (PCR) היא הנפוצה ביותר. מגבלה אחת גדולה של השיטות NAAT מבוסס הוא כי חיידקים מתים, פסולת אפילו חיידקי. DNA גנומי לא שלם המכיל, יכול להראות תוצאות חיוביות26, אשר יכלו להשפיע במידה רבה על אבחנה מדויקת של המחלה. בלאנקו. et al. הראה שאת assay מולקולרית היא רגישה מאוד, לא רק קיימא סלמונלה בתרבויות, אלא גם על חלקי הגנום, חיידקים מתים או נבאדה דלקות בעבר או זיהום26. לכן, צריך לפתח טכנולוגיה חדשה.

כאן, אנחנו תיאר שיטה זה משלב NAAT מבוססי שיטה, culturing. כפי שמוצג באיור1, שיטה חדשה חל בזמן אמת PCR ההקרנה הראשונה, לאחר מכן נשלחים דוגמאות חיוביות התרבות חיידקים וזיהוי.

Protocol

הפרוטוקול עוקב אחר ההנחיות שנקבעו על ידי ועדת האתיקה האנושית מחקר של מרכז בריאות נסיעות הבינלאומי Zhuhai. אנא השתמש בפעולת סטרילי רגיל במהלך הניסוי.

1. תרבות המדיה קומפוזיציה והכנות

  1. להכין מרק מזין: להמיס 1% peptone, תמצית בשר 0.3%, 0.5% נתרן כלורי, 0.1% גלוקוז H2O, להתאים את ה-pH 7.5 ו אוטוקלב זה 121 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות.
  2. להכין הסלנייט ציסטין בינוני: להמיס peptone 0.5% לקטוז 0.4%, 1% נה2HCO3, 0.4% נתרן מימן סלניט, 0.001% L-ציסטין H2O, להתאים את ה-pH אל 7.0 והרתיחו אותו למשך 5 דקות.
  3. להכין את Xylose, ליזין, צלחת אגר (XLD) Deoxycholate: להמיס שמרים 0.3% תמצית, 0.5% L-ליזין 0.375% xylose, 0.75% לקטוז, 0.75% סוכרוז, 0.5% נתרן כלורי, 0.008% פנול אדום, 0.68% נתרן תיוסולפט, 0.08% אמוניום ferric ציטראט, 0.25% נתרן deoxycholate, 1.5% אגר H2O, ולהתאים את ה-pH ל 7.4. לאחר מכן מרתיחים זה 5 דקות, יוצקים אותו לתוך צלחות 90 מ מ.
  4. להכין צלחת אגר הדפסות כסף של סלמונלה : להמיס אגר 1.5%, כ- 0.7% תמצית peptone ושמרים, ריאגנט סלקטיבי 1.29% H2O. לאחר מכן מרתיחים זה 5 דקות, יוצקים אותו לתוך צלחות 90 מ מ.
  5. להכין צלחת אגר מזין את: להמיס 1% peptone, תמצית בשר 0.3%, 0.5% נתרן כלורי, 1.5% אגר H2O ו pH ל 7.3. ואז אוטוקלב זה 121 מעלות צלזיוס למשך 15 דקות ויוצקים אותו לתוך צלחות 90 מ מ.
  6. להכין צלחת אגר (MAC) של MacConkey: להמיס peptone 2%, 1% לקטוז, 0.5% נתרן כלורי, 0.5% מלח מרה שור, 0.0025% אדום ניטרלי, 1.5% אגר, 0.0001% קריסטל ויולט H2O, ולהתאים את ה-pH ל- 7.2. ואז אוטוקלב זה 115 מעלות למשך 20 דקות ויוצקים אותו לתוך צלחות 90 מ מ.

2. בזמן אמת PCR

  1. דוגמה אוסף
    1. הכנס מבדיקה אנאלית לתוך פי הטבעת של המטופל 3-5 ס מ עמוק, ולסובב אותה 360 מעלות מסביב.
    2. לשים את אנאלית לתוך צינור אוסף סטרילי. מארק מדגם מזהה
    3. שלח את הדגימה למעבדה בהקדם האפשרי.
      הערה: הדוגמאות שניתן לאחסנו ב 4 ° C עבור לא יותר מ 24 שעות.
  2. העשרה קדם
    1. להוסיף 3 מ ל מרק מזין לתוך כל מדגם בצינור אוסף.
    2. דגירה ב 36 מעלות צלזיוס במשך 6 שעות בתוך אינקובטור.
  3. לדוגמה ערבוב (אופציונלי)
    1. לאסוף 100 µL של כל תרבות העשרה קדם ומערבבים 8-10 דוגמאות הדגימה 1 לתוך צינור 1.5 mL, אם קיימים יותר מ- 10 דוגמאות.
    2. לסמן כראוי.
  4. הפקת דנ א
    1. Centrifuge התרבות העשרה טרום ב g x 800 למשך 2 דקות לאפשר חלקיקים גדולים להתמסד, העברת תגובת שיקוע צינור חדש ו צנטריפוגה ב g 12,000 x עבור 5 דק. למחוק את תגובת שיקוע על ידי השאיפה.
    2. להוסיף 100 µL של פתרון הפקת דנ א (0.01 M pH 8.0 טריס-EDTA, 0.01% P Nonidet 40 (NP40)) כדי בגדר. מערבולת נמרצות במשך 1 דקה.
    3. מרתיחים ב 100 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות על אמבט יבש.
    4. צנטריפוגה ב 12,000 x g עבור 5 דק. לאסוף את תגובת שיקוע באמצעות צינור חדש, אשר יהיה התבנית עבור הניתוח PCR מצליחה בזמן אמת.
  5. PCR בזמן אמת
    1. הגדרת את תערובת התגובה כמו בצע: עבור כל דגימה, להוסיף 12.5 µL של 2 x תערובת התגובה מיקרומטר 0.4 של כל פריימר, 0.2 µM של כל בדיקה (רצפי טבלה 1)27, µL 5 של תבנית מוכן בשלב 2.4.4 ולהשתמש ddH2O להוספת סה כ עד 25 µL נפח.
    2. הגדרת התוכנית אופניים כדלקמן: 95 מעלות צלזיוס למשך 3 דקות, ואחריו 40 מחזורי 95 ° C 15 s, 55 ° C ל 30 s, 72 מעלות צלזיוס במשך 34 ס' לאסוף אותות פלואורסצנט 6-carboxy-fluorescein (FAM) ו Hexachlorofluorescein (הקסדצימאלי) ערוצי בשלב התארכות (72 ° C) באופן אוטומטי ע י המכונה PCR פלורסנט בזמן אמת.
    3. לבצע PCR בזמן אמת על מכונת ה-PCR פלורסנט בזמן אמת, בהתאם להוראות של המכשיר.
    4. ללכת בשלב 4 ישירות, הנפקת דוחות השליליות אם תוצאה שלילית להתרחש על הערוצים FAM/HEX, מה שאומר כי הדגימות שלילית סלמונלה spp /שיגלה spp.
    5. עבור לשלב 3.1 ו/או 3.2 אם חיובי תוצאות להתרחש על הערוצים HEX ו/או המשפחה, מה שאומר כי המדגם עשוי להיות חיובי סלמונלה spp ו/או שיגלה spp., בהתאמה.
      הערה: אם הדגימה ערבוב בוצעה בשלב 2.3, אז PCR בזמן אמת על דגימות בודדים אשר המציא החיובי יש לבצעו לסנן את הדגימה חיובי מאוד.

3. מודרכים תרבות

  1. סלמונלה spp. PCR דוגמה חיובית
    1. תרבות סלקטיבי בינוני
      1. להוסיף 100 µL של תרבות העשרה מראש לתוך 5 מ של הסלנייט ציסטין בינוני במבחנה. דגירה ב 36 מעלות צלזיוס במשך 18 – 24 h בתוך אינקובטור.
    2. הפרדת התרבות בצלחת
      1. לאסוף את סיבוב אחד של התרבות עם לולאה מיקרו ולהתפשט אל XLD צלחת או צלחת אגר הדפסות כסף סלמונלה . דגירה ב 36 מעלות צלזיוס במשך 18-24 h בתוך אינקובטור.
    3. זיהוי הביוכימי
      1. בחר מושבת חשוד על צלחת XLD (המושבה ורוד עם/בלי הלב האפל; המושבה כהה המושבה צהוב עם/בלי הלב האפל) או צלחת אגר הדפסות כסף סלמונלה (סגול או prunosus המושבה עגולה וחלקה) (איור 2).
      2. נושא המושבה חשוד לזיהוי ביוכימי במערכת ממוכנת זיהוי חיידקים, לפי ההוראות של המכשיר.
    4. אפיון סרולוגית
      1. O אנטיגן אפיון
        1. הוסף טיפה אחת של sera ערכיות אנטיגן O לשקופית נקי.
        2. לאסוף את סיבוב אחד של המושבה עם מיקרו-לולאה, לטחון ב sera.
        3. ללכת צעד 3.1.4.1.4 אם זה נראה כמו זורם חול, מה שאומר המושבה תגובתי ל סרה (איור 3). אחרת, עבור לשלב 3.1.4.1.5.
        4. השתמש O אנטיגן סרה monovalent לחזור על שלבים 3.1.4.1.1 עד 3.1.4.1.3 עד O אנטיגן ספציפי מאופיין.
        5. השתמש סרה השישי לחזור על שלבים 3.1.4.1.1 כדי 3.1.4.1.3. לאסוף את המושבות תגובתי האלה סרה השישי בצינור והרתיחו ב 100 מעלות צלזיוס למשך 5 דקות באמבט יבש. צנטריפוגה ב 12,000 x g עבור 5 דק. לאסוף את צניפה, חזור על שלבים 3.1.4.1.1 כדי 3.1.4.1.4 עד אנטיגן O מאופיין.
      2. אפיון אנטיגן H
        1. הוסף טיפה אחת של sera ערכיות אנטיגן H לשקופית נקי.
        2. לאסוף את סיבוב אחד של המושבה עם מיקרו-לולאה, לטחון ב sera.
        3. ללכת צעד 3.1.4.2.4 אם זה נראה כמו זורם חול, מה שאומר המושבה תגובתי ל sera.
        4. השתמש H אנטיגן סרה monovalent לחזור על שלבים 3.1.4.2.1 עד 3.1.4.2.3 עד אנטיגן ספציפי H מאופיין.
          הערה: לפעמים סרום אינדוקציה עשוי להיות נחוץ כדי לאפיין אנטיגן שלב H השני. אם כן, אז השלבים האופציונליים הבאים יש לבצעו.
        5. (אופציונלי) הוסף טיפה אחת של sera אנטיגן ספציפי של H על גבי צלחת אגר מזין. המתן עד כל סרה נספגים.
        6. (אופציונלי) לאסוף את סיבוב אחד של המושבה עם מיקרו-לולאה, התפשטות לצלחת איפה sera מסוימת של אנטיגן H נספגים. דגירה ב 36 מעלות צלזיוס במשך 18-24 h בתוך אינקובטור.
        7. (אופציונלי) השתמש H אנטיגן סרה monovalent לחזור על שלבים 3.1.4.2.1 עד 3.1.4.2.3 עד השלב השני אנטיגן H מאופיין.
        8. עבור לשלב 4.
  2. שיגלה spp. PCR דוגמה חיובית
    1. הפרדת התרבות בצלחת
      1. לאסוף את סיבוב אחד של התרבות העשרה מראש עם לולאה מיקרו ולהתפשט אל XLD צלחת או צלחת MAC. דגירה ב 36 מעלות צלזיוס במשך 18 – 24 h בתוך אינקובטור.
    2. זיהוי הביוכימי
      1. לאסוף את המושבה חשוד על צלחת XLD (חלק, עגול, שקוף ואדום המושבה) או בצלחת MAC (חלק, עגול, המושבה שקוף וחסר צבע עם 2-3 מ מ קוטר; שיגלה sonnei עשוי להיות גדול יותר, לפנות אור ורוד כמו התארכות של זמן הדגירה) (איור 4).
      2. נושא המושבה חשוד לזיהוי ביוכימי במערכת ממוכנת זיהוי חיידקים, לפי ההוראות של המכשיר.
    3. אפיון סרולוגית
      1. הוסף טיפה אחת של sera ערכיות spp. שיגלה לשקופית נקי.
      2. לאסוף את סיבוב אחד של המושבה עם מיקרו-לולאה, לטחון ב sera.
      3. ללכת צעד 3.2.3.4 אם זה נראה כמו זורם חול, מה שאומר המושבה תגובתי ל sera.
      4. השתמש שיגלה spp. סרה monovalent לחזור על שלבים 3.2.3.1 כדי 3.2.3.3 עד spp. שיגלה ספציפי מאופיין.
      5. עבור לשלב 4.

4. דו ח

  1. להנפיק דוחות חיוביים או שליליים על פי התוצאות לעיל.

תוצאות

הפרוטוקול היה מוחל להקרנה של סלמונלה spp / spp.שיגלה בצואת אנאלי דוגמאות מאנשים יטפל מזון ומים.

בשלב ה-PCR בזמן אמת, כמוצג באיור 5א, הייתה הגברה מוצלחת ערוץ HEX, שאומר כי המדגם מעורב היה חיובי עבור סלמונלה sp...

Discussion

מאז סלמונלה spp /שיגלה spp. הקשורים לעתים קרובות עם הרעלת מזון והעברת בצואה אורלי להרעלתו חריפה28,29 , השיטה שגרתית היא עתירי עבודה או זמן רב 7, נתאר פלטפורמה תפוקה גבוהה סלמונלה spp /שיגלה spp. ההקרנה, באמצעות PCR בזמן אמת בשילוב עם תרבו...

Disclosures

המחברים אין לחשוף.

Acknowledgements

עבודה זו נתמכה על ידי המדע, טכנולוגיה תוכנית של Zhuhai, סין (20171009E030064 מספר גרנט), המדע התוכנית טכנולוגיה של גואנג-דונג, סין (2015A020211004 מספר גרנט), המדע ואת הטכנולוגיה של כללי ניהול הפרויקט של איכות הפיקוח, הביקורת ההסגר של הרפובליקה העממית של סין (2016IK302 מספר של גרנט, 2017IK224).

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
TrisSigma10708976001
EDTASigma798681
NP40Sigma11332473001
ddH2OTakara9012
PrimeSTAR HS (Premix)TakaraR040Q
Nutrient BrothLandBridgeCM106
Nutrient agarLandBridgeCM107
Selenite Cystine mediumLandBridgeCM225
XLDLandBridgeCM219
MAC LandBridgeCM908
Salmonella chromogenic agarCHROMagarSA130
Salmonella diagnostic serumTianrunSAL60
Shigella diagnostic serumTianrunSHI54
anal swab (collecting tube plus)Huachenyang
slideMingsheng7102
micro-loopWeierkangW511
incubatorJinghongDNP-9082
autoclaveAULSS-325
dry bathJinghongKB-20
automated microbial identification systembioMérieuxVITEK2other equivalent system could be used
fluorescent real-time PCR machineThermoFisherABI7500other equivalent machine could be used

References

  1. Roy, S. L., Scallan, E., Beach, M. J. The rate of acute gastrointestinal illness in developed countries. Journal of Water and Health. 4, 31-69 (2006).
  2. Wilking, H., et al. Acute gastrointestinal illness in adults in Germany: a population-based telephone survey. Epidemiology and Infection. 141 (11), 2365-2375 (2013).
  3. Friesema, I. H. M., Lugnér, A. K., van Duynhoven, Y. T. H. P. Costs of gastroenteritis in the Netherlands, with special attention for severe cases. European Journal of Clinical Microbiology & Infectious Diseases. 31 (8), 1895-1900 (2012).
  4. Henson, S. J., et al. Estimation of the costs of acute gastrointestinal illness in British Columbia, Canada. International Journal of Food Microbiology. 127 (1-2), 43-52 (2008).
  5. Okhuysen, P. C., Jiang, Z. D., Carlin, L., Forbes, C., DuPont, H. L. Post-diarrhea chronic intestinal symptoms and irritable bowel syndrome in North American travelers to Mexico. The American Journal of Gastroenterology. 99 (9), 1774-1778 (2004).
  6. Wongboot, W., Okada, K., Chantaroj, S., Kamjumphol, W., Hamada, S. Simultaneous detection and quantification of 19 diarrhea-related pathogens with a quantitative real-time PCR panel assay. Journal of Microbiological Methods. 151, 76-82 (2018).
  7. Van Lint, P., De Witte, E., Ursi, J. P., Van Herendael, B., Van Schaeren, J. A screening algorithm for diagnosing bacterial gastroenteritis by real-time PCR in combination with guided culture. Diagnostic Microbiology and Infectious Disease. 85 (2), 255-259 (2016).
  8. Liu, J., et al. Use of quantitative molecular diagnostic methods to identify causes of diarrhoea in children: a reanalysis of the GEMS case-control study. Lancet. 388 (10051), 1291-1301 (2016).
  9. Wang, S. M., et al. Surveillance of shigellosis by real-time PCR suggests underestimation of shigellosis prevalence by culture-based methods in a population of rural China. Journal of Infection. 61 (6), 471-475 (2010).
  10. Wikswo, M. E., Hall, A. J. Outbreaks of acute gastroenteritis transmitted by person-to-person contact--United States, 2009-2010. MMWR Surveillance Summaries. 61 (9), 1-12 (2012).
  11. Shen, H., et al. The 12 Gastrointestinal Pathogens Spectrum of Acute Infectious Diarrhea in a Sentinel Hospital, Shenzhen, China. Frontiers in Microbiology. 7, 1926 (2016).
  12. Tariq, A., et al. Molecular profiling of antimicrobial resistance and integron association of multidrug-resistant clinical isolates of Shigella species from Faisalabad, Pakistan. Canadian Journal of Microbiology. 58 (9), 1047-1054 (2012).
  13. Ferrari, R. G., Panzenhagen, P. H. N., Conte-Junior, C. A. Phenotypic and Genotypic Eligible Methods for Salmonella Typhimurium Source Tracking. Frontiers in Microbiology. 8, 2587 (2017).
  14. Oliver, J. D. The viable but nonculturable state in bacteria. The Journal of Microbiology. 43, 93-100 (2005).
  15. Rintala, A., Munukka, E., Weintraub, A., Ullberg, M., Eerola, E. Evaluation of a multiplex real-time PCR kit Amplidiag(R) Bacterial GE in the detection of bacterial pathogens from stool samples. Journal of Microbiological Methods. 128, 61-65 (2016).
  16. Wohlwend, N., Tiermann, S., Risch, L., Risch, M., Bodmer, T. Evaluation of a Multiplex Real-Time PCR Assay for Detecting Major Bacterial Enteric Pathogens in Fecal Specimens: Intestinal Inflammation and Bacterial Load Are Correlated in Campylobacter Infections. Journal of Clinical Microbiology. 54 (9), 2262-2266 (2016).
  17. Van Lint, P., et al. Evaluation of a real-time multiplex PCR for the simultaneous detection of Campylobacter jejuni, Salmonella spp., Shigella spp./EIEC, and Yersinia enterocolitica in fecal samples. Eur Journal of Clinical Microbiology Infect Dis. 34 (3), 535-542 (2015).
  18. Kamkamidze, G., et al. Rapid Identification Of The Etiological Factors Causing Diarrheal Diseases. Georgian Medical News. (258), 89-92 (2016).
  19. Li, Y. Establishment and Application of a Visual DNA Microarray for the Detection of Food-borne Pathogens. Analytical Sciences. 32 (2), 215-218 (2016).
  20. Zhuang, L., et al. Detection of Salmonella spp. by a loop-mediated isothermal amplification (LAMP) method targeting bcfD gene. Letters in Applied Microbiology. 59 (6), 658-664 (2014).
  21. Shi, X. L., et al. Rapid simultaneous detection of Salmonella and Shigella using modified molecular beacons and real-time PCR. Zhonghua Liu Xing Bing Xue Za Zhi. 27 (12), 1053-1056 (2006).
  22. Mo, Q. H., et al. Preparation of a 96-microwell plate DNA diagnostic chip for detection of foodborne bacteria and its application in an incident of food poisoning. Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 30 (3), 417-421 (2010).
  23. Wang, H. B., et al. Probe-free and sensitive detection of diarrhea-causing pathogens using RT-PCR combined high resolution melting analysis. Biologicals. 44 (5), 360-366 (2016).
  24. Sun, H., et al. Rapid simultaneous screening of seven clinically important enteric pathogens using a magnetic bead based DNA microarray. World Journal of Microbiology and Biotechnology. 27 (1), 163-169 (2011).
  25. Qi, W., et al. Multiplex PCR assay for rapid detection of five important pathogenic vibrios. Chinese Journal of health laboratory technology. (24), 3497-3500 (2014).
  26. Blanco, G., Diaz de Tuesta, J. A. Culture- and molecular-based detection of swine-adapted Salmonella shed by avian scavengers. Science of the Total Environment. 634, 1513-1518 (2018).
  27. Tang, X. J., Yang, Z., Chen, X. B., Tian, W. F., Tu, C. N., Wang, H. B. Verification and large scale clinical evaluation of a national standard protocol for Salmonella.spp./Shigella.spp. screening using real-time PCR combined with guided culture. Journal of Microbiological Methods. 145, 14-19 (2018).
  28. Dekker, D. M., et al. Drinking water from dug wells in rural ghana--salmonella contamination, environmental factors, and genotypes. International Journal of Environmental Research and Public Health. 12 (4), 3535-3546 (2015).
  29. Gargano, J. W., et al. Mortality from selected diseases that can be transmitted by water - United States, 2003-2009. Journal of Water and Health. 15 (3), 438-450 (2017).
  30. Kumar, R., Surendran, P. K., Thampuran, N. Evaluation of culture, ELISA and PCR assays for the detection of Salmonella in seafood. Letters in Applied Microbiology. 46 (2), 221-226 (2008).
  31. Herrera-Leon, S., et al. Blind comparison of traditional serotyping with three multiplex PCRs for the identification of Salmonella serotypes. Research in Microbiology. 158 (2), 122-127 (2007).
  32. Cunningham, S. A., et al. Three-hour molecular detection of Campylobacter, Salmonella, Yersinia, and Shigella species in feces with accuracy as high as that of culture. Journal of Clinical Microbiology. 48 (8), 2929-2933 (2010).
  33. Eriksson, E., Aspan, A. Comparison of culture, ELISA and PCR techniques for salmonella detection in faecal samples for cattle, pig and poultry. BMC Veterinary Research. 3, 21 (2007).
  34. Dutta, S., et al. Sensitivity and performance characteristics of a direct PCR with stool samples in comparison to conventional techniques for diagnosis of Shigella and enteroinvasive Escherichia coli infection in children with acute diarrhoea in Calcutta, India. Journal of Medical Microbiology. 50 (8), 667-674 (2001).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

141sppsppPCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved