לימוד שיפוץ הפוך חדרי שמאלי על ידי ניתוק האבניים במכרסמים

Summary

כאן אנו מתארים פרוטוקול צעד אחר צעד של פירוק אבי העורקים הכירורגי במודל העכברים המבוסס היטב של התכווצות אבי העורקים. הליך זה לא רק מאפשר ללמוד את המנגנונים שבבסיס שיפוץ הפוך החדר השמאלי ורגרסיה של היפרטרופיה, אלא גם כדי לבדוק אפשרויות טיפוליות חדשניות שעשויות להאיץ את ההתאוששות שריר הלב.

Abstract

כדי להבין טוב יותר את החדר השמאלי (LV) שיפוץ הפוך (RR), אנו מתארים מודל מכרסמים שבו, לאחר שיפוץ LV הנגרמת על ידי תחבושת, עכברים עוברים RR עם הסרת התכווצות האב העורקים. במאמר זה, אנו מתארים הליך שלב אחר שלב לביצוע ניתוק אבי העורקים כירורגית זעיר פולשנית בעכברים. אקו-קרדיוגרפיה שימשה לאחר מכן כדי להעריך את מידת היפרטרופיה לב ותפקוד לקוי במהלך שיפוץ LV ו RR ולקבוע את התזמון הטוב ביותר עבור debanding אבי העורקים. בסוף הפרוטוקול נערכה הערכה המודינמית סופנית של תפקוד הלב, ונאספו דגימות למחקרים היסטולוגיים. הראינו כי debanding קשורה שיעורי ההישרדות כירורגית של 70-80%. יתר על כן, שבועיים לאחר debanding, הפחתה משמעותית של לאחר העומס בחדר מפעילה את הרגרסיה של היפרטרופיה חדרית (~ 20%) ופיברוזיס (~ 26%), התאוששות של תפקוד דיאסטולי כפי שהוערך על ידי נורמליזציה של מילוי חדרי שמאל ולחצים דיאסטוליים קצה (E / e ' ו LVEDP). ניתוק באבי העורקים הוא מודל ניסיוני שימושי לחקר LV RR במכרסמים. היקף ההתאוששות שריר הלב משתנה בין הנבדקים, ולכן, מחקה את המגוון של RR המתרחשת בהקשר הקליני, כגון החלפת שסתום אבי העורקים. אנו מסיקים כי מודל פסים /debanding אב העורקים מייצג כלי רב ערך כדי לפענח תובנות חדשניות לתוך המנגנונים של RR, כלומר רגרסיה של היפרטרופיה לב ואת ההתאוששות של תפקוד דיאסטולי.

Introduction

ההתכווצות של אב העורקים רוחבי או עולה בעכבר הוא מודל ניסיוני בשימוש נרחב עבור היפרטרופיה לב הנגרמת על ידי עומס יתר, תפקוד דיאסטולי וסיסטולי ואי ספיקת לב^1,2,3,4. התכווצות העורקים מובילה בתחילה היפרטרופיה קונצנטרית (LV) של החדר השמאלי לפיצוי כדי לנרמל את לחץ הקיר¹. עם זאת, בנסיבות מסוימות, כגון עומס לב ממושך, היפרטרופיה זו אינה מספיקה כדי להפחית את הלחץ על הקיר, מה שמפעיל תפקוד דיאסטולי וסיסטולי (היפרטרופיה פתולוגית)⁵. במקביל, שינויים במטריצה חוץ-תאית (ECM) מובילים לתצהיר הקולגן ולהצלבה בתהליך המכונה פיברוזיס, אשר ניתן לחלקו לפיברוזיס חלופי ופיברוזיס תגובתי. פיברוזיס הוא, ברוב המקרים, בלתי הפיך ומתפשר התאוששות שריר הלב לאחר הקלה עומס יתר^6,7. עם זאת, מחקרי דימות תהודה מגנטית לב לאחרונה גילו כי פיברוזיס תגובתי הוא מסוגל לסגת בטווח הארוך⁸. בסך הכל, פיברוזיס, היפרטרופיה ותפקוד לקוי של הלב הם חלק מתהליך המכונה שיפוץ שריר הלב שמתקדם במהירות לכיוון אי ספיקת לב (HF).

הבנת התכונות של שיפוץ שריר הלב הפכה למטרה מרכזית להגבלה או היפוך ההתקדמות שלה, האחרון המכונה שיפוץ הפוך (RR). המונח RR כולל כל שינוי שריר הלב הפוך באופן כרוני על ידי התערבות נתונה, טיפול תרופתי כזה (למשל, תרופות נגד יתר לחץ פנים), ניתוח שסתום (למשל, היצרות אבי העורקים) או מכשירי סיוע חדריים (למשל, HF כרוני). עם זאת, RR הוא לעתים קרובות לא שלם בשל היפרטרופיה השוררת או תפקוד סיסטולי / דיאסטולי. לכן, ההבהרה של מנגנוני RR הבסיסית ואסטרטגיות טיפוליות חדשניות עדיין חסרים, וזה בעיקר בשל חוסר האפשרות לגשת וללמוד רקמת שריר הלב האנושי במהלך RR ברוב החולים האלה.

כדי להתגבר על מגבלה זו, מודלים מכרסמים מילאו תפקיד משמעותי בקידום ההבנה שלנו של מסלולי האיתות המעורבים בהתקדמות HF. באופן ספציפי, ניתוק אבי העורקים של עכברים עם התכווצות אבי העורקים מייצג מודל שימושי ללמוד את המנגנונים המולקולריים שבבסיס שיפוץ LV שלילי⁹ ו RR^10,11 כפי שהוא מאפשר איסוף של דגימות שריר הלב בנקודות זמן שונות בשני שלבים אלה. יתר על כן, הוא מספק הגדרה ניסיונית מצוינת לבחון מטרות חדשניות פוטנציאליות שיכולות לקדם / להאיץ RR. לדוגמה, בהקשר היצרות אבי העורקים, מודל זה עשוי לספק מידע על המנגנונים המולקולריים המעורבים במגוון העצום של התגובה שריר הלב שבבסיס השלמות (in) של RR^6,12, כמו גם, העיתוי האופטימלי להחלפת שסתום, המייצג חסרון גדול של הידע הנוכחי. ואכן, העיתוי האופטימלי להתערבות זו הוא נושא לדיון, בעיקר משום שהוא מוגדר על סמך גודלם של שיפועים בגור העורקים. מספר מחקרים תומכים כי נקודת זמן זו עשויה להיות מאוחר מדי עבור התאוששות שריר הלב כמו פיברוזיס ותפקוד דיאסטולי הם לעתים קרובות כבר^{נוכחים 12}.

למיטב ידיעתנו, זהו המודל החייתי היחיד כי מסכם את התהליך של שיפוץ שריר הלב והן RR המתרחשים בתנאים כגון היצרות אבי העורקים או יתר לחץ דם לפני ואחרי החלפת שסתום או תחילתה של תרופות נגד יתר לחץ דם, בהתאמה.

בניסיון להתמודד עם האתגרים שסוכמו לעיל, אנו מתארים מודל חיה כירורגי שניתן ליישם הן בעכברים והן בחולדות, תוך התייחסות להבדלים בין שני מינים אלה. אנו מתארים את הצעדים והפרטים העיקריים הכרוכים בביצוע ניתוחים אלה. לבסוף, אנו מדווחים על השינויים המשמעותיים ביותר המתרחשים ב- LV מיד לפני ולאורך RR.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Protocol

כל הניסויים בבעלי חיים מצייתים למדריך לטיפול ולשימוש בחיות מעבדה (פרסום NIH מס' 85-23, מתוקן ב-2011) והחוק הפורטוגלי לרווחת בעלי חיים (DL 129/92, DL 197/96; פ' 1131/97). הרשויות המקומיות המוסמכות אישרו פרוטוקול ניסיוני זה (018833). עכברי C57B1/J6 זכרים בני שבעה שבועות נשמרו בכלובים מתאימים, עם סביבת מחזור רגילה של 12/12 שעות בחושך בהיר, טמפרטורה של 22 מעלות צלזיוס ולחות של 60% עם גישה למים וליביטום מודעת דיאטה סטנדרטי.

1. הכנת השדה הכירורגי

1. לחטא את אתר הניתוח עם 70% אלכוהול ומניחים שולחן ניתוח חד פעמי לכסות על האזור הכירורגי.
2. לעקר את כל המכשירים לפני הניתוח.
   הערה: הליך זה דורש מספריים מיקרו כירורגיות, 2 מלקחיים מעוגלים עדינים, 3 מלקחיים ישרים עדינים, אזמל, מלקחיים קטנים, מספריים מפרק זוויתי, מחזיק מחט, סיוע קשירה אולטרה-דק, 2 hemostats, ולבסוף, מערכת פיתול קיבוע מגנטי מומלץ מאוד (איור 1A).
3. עקום את קצה המחט הקהה 26 G ל 90° לגישה קלה יותר לאגור העורקים. מחט בקוטר 26 גרם תיצור צמצום של 0.45 מ"מ בציר העורקים (איור 1B).
4. כוונן את טמפרטורת כרית החימום ל-37 ± 0°C(0°C).

2. הכנת עכברים וצנרור

1. הרדמה עכברים צעירים C57B1/J6 (20-25 גרם) על ידי שאיפה של 8% sevoflurane עם 0.5 - 1.0 L /min 100% O₂ בצינור חרוט.
2. בדוק את עומק ההרדמה באמצעות רפלקס משיכה צביטה בוהן.
3. מניחים את העכבר על שכיבה הגב על צלחת נוטה ולהמשיך לצנרור orotracheal.
4. להזיז את העכבר אל כרית החימום במהירות לחבר את הצינור orotracheal למכונות ההנשמה ליזום את ההנשמה מכני.
5. להתאים את הפרמטרים מאוורר לתדר של 160 נשימות / דקה ונפח גאות ושפל של 10 מ"ל / ק"ג.

3. הכנה לניתוח (הן לניתוחי פסים והן לניתוחים)

1. לגלח ולהחיל את קרם depilatory מן הצוואר לרמת החזה האמצעי של העכברים.
2. יש למרוח ג'ל עיניים על עיני בעלי החיים כדי למנוע התייבשות מהקרנית.
3. מניחים בדיקה רקטלית ואת oximeter על כף רגל או זנב לניטור טמפרטורה וחמצון בדם, וקצב הלב, בהתאמה.
   הערה: הרדמה מעוררת היפותרמיה משמעותית, ולכן, חשוב לשמור על טמפרטורת גוף נורמלית במהלך הניתוח, כדי למנוע ירידה מהירה בקצב הלב.
4. לשמור על הרדמה עם sevoflurane (2.0 - 3.0%). בדוק את הרמה הנכונה של הרדמה על ידי חוסר רפלקס צביטה בוהן.
5. הניחו את העכברים בדקוביטוס ימני-לרוחב על כרית חימום ואבטחו את הגפיים למערכת הנסיגה של המקבע המגנטי באמצעות קלטת כדי לשמור על החיה במצב הנכון במהלך הניתוח (איור 2, איור 3A).
6. לחטא את חזה העכבר עם 70% אלכוהול ואחריו לספק פתרון יוד.

4. ניתוח פסים של פי העורקים העולה

הערה: לקבלת תיאור פרוטוקול מפורט, התייעץ ^{עם 2,3,4,13}.

1. עם להב חד פעמי, לבצע חתך קטן (~ 0.5 ס"מ) העור בצד שמאל מיד מתחת לרמת אקסילה לנתח את העור.
2. בעדינות לנתח ולהפריד את שריר החזה ושכבות שרירים אחרות עד הצלעות להיות גלוי. השתמש מלקחיים עדינים ולהימנע חיתוך השריר.
3. תחת מיקרוסקופ, זהה את החללים הבין-צלעיים ופתח חתך קטן^בין החלל הבין-צלעי^השני והשלישי עם מלקחיים עדינים.
4. שחזרו את הצלעות על ידי הנחת מחזר החזה (איור 2A).
5. השתמש מלקחיים קטנים בעדינות לנתח ולהפריד את האונות התימית עד אבי העורקים עולה הופך גלוי.
   הערה: אפליקטורים כותנה צריך להיות שימושי במקרה של דימום. מלוחים סטריליים חמים צריכים להינתן תת עורית במקרה של דימום משמעותי (למשל, עורק החלב).
6. השתמש במלקחיים קטנים כדי לנתח בעדינות את העורקים.
   הערה: Aorta נחשב להיות מנותח כאשר אין שומן או הידבקויות אחרות סביבו וניתן בקלות לכתר את הכלי עם מלקחיים עקומה קטנה.
7. לאחר ניתוח בגור העורקים, הניחו ליגטורת פוליפרופילן 7-0 סביב אגירה באמצעות סיוע קשירה ומלקחיים מעוגלים (איור 2B).
8. מקם את המחט הקהה של 26 גרם במקביל לאגורטה (קצה המכוון לכיוון ראש העכברים) (איור 2B). עבור עכברים במשקל 20-25 גרם, מחט זו גורם לשחזור 65-70% התכווצות של העורקים.
9. צרו 2 קשרים רופפים סביב העורקים ומחט ה-26 G בעזרת 2 מלקחיים(איור 2B).
10. הדקו את הקשר^ה-1, ובמהירות לאחר מכן, את הקשר^השני. לאשר בקצרה את המיקום הנכון של ההתכווצות ולהסיר במהירות את המחט כדי לשחזר את זרימת הדם בציר העורקים. לבסוף, לעשות קשר³ (קבוצת BA).
11. מקם מחדש את התימוס והשרירים למצבם הראשוני.
12. בצע את הליך הזיוף זהה להליך ההתכווצות אך שמירה על התפירה רופפת סביב העורקים (קבוצת SHAM).
13. חותכים את הקצוות של התפירה ולהסיר את רקטור החזה.
    הערה: קצות תפר קצרים עשויים להגדיל את ההסתברות של קשרים מתרופפים עם לחץ על העורקים, בעוד קצוות ארוכים להפוך את הליך debanding מסוכן יותר מאז הידבקויות יכול להתרחש בין התפר לבין אטריום שמאל.
14. סגור את דופן החזה באמצעות תפר פוליפרופילן 6-0 עם תפר פשוט מופרע או מתמשך באמצעות המספר הנמוך ביותר של תפרים אפשריים. הדק את קשר החזה האחרון עם הריאות מנופח בסוף השראה על ידי צבט את זרימת ההנשמה עבור 2s כדי לנפח מחדש את הריאות.
15. סגור את העור עם תפר משי /פוליפרופילן 6-0 בתבנית תפר רציפה.
    הערות: אם נעשה שימוש במאוורר עדכני יותר, ניתן לתכנת אותו להשהות בהשראה (Setup-Advanced-Pause-Inspiring)

5. טיפול לאחר הניתוח

1. יש למרוח תמיסת יוד באתר התפרים של העור.
2. עבור משככי כאבים נאותים, לנהל buprenorphine תת עורית 0.1 מ"ג / קילוגרם, פעמיים ביום, עד החיה מתאוששת לחלוטין (בדרך כלל 2-3 ימים לאחר הניתוח).
3. להזריק מלוחים סטריליים תוך-אופן כדי למנוע התייבשות במקרה של דימום משמעותי במהלך הניתוח.
4. מכבים את ההרדמה (מבלי להכתיר את העכבר) ומחכים עד שהחיה תתאושש מהרפלקסים (תנועות שפם הן אות התעוררות) ותתחיל לנשום באופן ספונטני.
5. הסר את קנולה קנה הנשימה.
6. תן לחיה להתאושש באינקובטור ב-37 מעלות צלזיוס.
7. החזירו את החיה לחדר מחזור אור/כהה של 12 שעות לאחר החלמה מלאה.

6. ניתוח להשבתת העורקים

1. שבעה שבועות לאחר מכן, לבצע את debanding של העורקים במחצית בעלי החיים BA ולהסיר את התפר רופף ממחצית העכברים SHAM, הוליד 2 קבוצות חדשות - debanding (DEB) ו debanding SHAMA (DESHAM), בהתאמה. DESHAM מייצג את הפקד עבור הקבוצה DEB (איור 4).
2. חזור על כל השלבים 2.1 עד 3.6 שהוזכרו לעיל.
3. לנתח בעדינות את הרקמות, הידבקויות, פיברוזיס סביב העורקים עד ההתכווצות שלה הופך גלוי.
4. לנתח בזהירות את העורקים ולהפריד את התפר מן העורקים. חותכים את התפירה במספר מספריים אביבי זוויתי חד-בדיקה(איור 3B).
5. סגור את דופן החזה באמצעות תפר פוליפרופילן 6-0 עם תפר פשוט מופרע או מתמשך באמצעות המספר המינימלי של תפרים אפשריים.
   הערה: נסה להדק את תפר החזה האחרון כאשר הריאות מנופחות כדי למנוע pneumothorax.
6. סגור את העור עם תפר משי /פוליפרופילן 6-0 בתבנית תפר רציפה.
7. בצע את כל הליכי הטיפול שלאחר הניתוח כאמור ב- 5.
8. להקריב את החיות 2 שבועות מאוחר יותר.

7. אקו לב כדי להעריך את תפקוד הלב והשאיר היפרטרופיה חדרית ב vivo

1. בצע את הבדיקה אקו כל 2-3 שבועות כדי לעקוב אחר ההתקדמות של היפרטרופיה ותפקוד הלב.
2. הרדמה את בעלי החיים, כמתואר, על ידי שאיפה של 5% sevoflurane עם חרוט האף. התאימו את רמת ההרדמה על ידי הפחתתה ל-2.5%.
3. לגלח ולהחיל את קרם depilatory מן הצוואר עד רמת החזה באמצע החזה.
4. מניחים את החיה על כרית חימום ומניחים את אלקטרודות א.ק.ג. להבטיח עקבות אק"ג טוב ולשמור על קצב הלב בין 300 ל 350 פעימות / דקה.
5. לפקח על הטמפרטורה (~ 37 מעלות צלזיוס).
6. יש למרוח ג'ל הד ולמקם את החיה בדבקה צדדית שמאלית.
7. הפעל את ההד והתאם את ההגדרות.
8. מקם בדיקת אולטרסאונד מעל בית החזה.
9. להעריך את שיפוע הלחץ על פני הרצועות ב 7 ו 2 שבועות לאחר פסים וניתוח debanding, בהתאמה. מקמו את הגשוש בציר הארוך של LV והניחו את הקרן מעל העורקים. לחץ על הלחצן PW כדי להפעיל אקו-קרדיוגרפיה של דופלר. לאחר שבעה שבועות של פסים, שיפוע בצינור יהיה >25 מ"מ-ח"ג בבעלי החיים התחבושות.
10. הקלט תמונות מונחות דו מימדיות של אבירה המראות את נוכחותו או היעדרו של התכווצות העורקים העולה כדי לדמיין באופן אנטומי את היעילות של הפסים וההתפרקות.
    הערה: ניתן לדמיין זרימה סוערת ברמת ההתכווצות אם מצב הצבע זמין.
11. להעריך היפרטרופיה על ידי מיקום החללית בציר קצר LV, ברמת השרירים הפפילריים, ולחץ על מעקב מצב M כדי לדמיין קיר LV קדימי (LVAW), קוטר LV (LVD) וקיר אחורי LV (LVPW) בדיסטול (D) וסיסטולה (S) (איור 5).
12. להעריך את הפונקציה הסיסטולית, לחשב את שבר הפליטה וקיצור שבר כפי שתואר קודם לכן^14,15.
13. להעריך את הפונקציה הדיאסטולית על ידי 1) קביעת השיא של דופלר גל פעמו של מהירות זרימה מיטרלית מוקדמת ומאוחרת (E ו- A גלים, בהתאמה) באמצעות נוף apical 4 תאים apical רק מעל העלונים המיטרליים; 2) הקלטת דיאסטולי מוקדם (E) ו שיא של מהירויות סיסטוליות (S') תוך שימוש ב- TDI פעמו ובתצוגה אפיקלית של 4 תאים (איור 5).
14. רשום לפחות שלוש פעימות לב רצופות לכל הערכת פרמטר. ערכים אלה יהיו ממוצעים לאחר מכן.

8. הערכה המודינמית

1. בסוף הפרוטוקול (איור 4), בצע אקו-קרדיוגרפיה סופית, כמתואר ב-7, לפני ההערכה המודינמית של הטרמינל.
2. חזור על שלבים 2.1 עד 3.6.
3. ניתן ללגום את הווריד הצווארי הנכון ולהחדיר מלוחים סטריליים ב 64 מ"ל / קילוגרם / שעה.
4. לסובב מעט את החיה בצד שמאל ולעשות חתך בעור ברמה של נספח xiphoid.
5. להפריד את העור מן השריר עם מלקחיים או עם מספריים.
6. בצע חתך לרוחב בין הצלעות השמאליות ברמת התוספתן xiphoid.
7. בצע כריתת חזה לרוחב שמאל כדי לחשוף את הלב במלואו.
   הערה: כדי למנוע דימום ונזק לריאות, הכנס ספוגית כותנה לחלל בית החזה ודחוף את הריאה בעדינות תוך החדרת שני hemostats בצד ימין ושמאל של המקום לחתוך.
8. מחממים מראש את קטטרי הלולאה P-V באמבט מים ב-37 מעלות צלזיוס.
9. כייל את הקטטר (התקנה, הגדרת ערוץ, בחר את הערוץ הנכון עבור לחץ ועוצמה, יחידות).
10. הכנס קטטר באופן נקודתי לתוך LV ולהבטיח חיישני עוצמת הקול ממוקמים בין שסתום אבי העורקים לשיא. ניתן להעריך כרכים באמצעות אקו לב (איור 5). הדמיה של לולאות עוצמת הלחץ מסייעת לאשר את המיקום הנכון של הצנתר (איור 6).
11. אפשר לחיה לייצב 20-30 דקות ללא שינויים משמעותיים בצורת לולאות נפח הלחץ.
12. עם אוורור מושעה בסוף התפוגה, לרכוש הקלטות בסיסיות (איור 6). באופן רציף לרכוש נתונים ב 1,000 הרץ כדי להיות מנותח לאחר מכן כבוי על ידי תוכנה מתאימה.
13. לחשב מוליכות מקבילה לאחר בולוס מלוחים היפרטוני (10%, 10 μL).
14. בעודו מורדם, להקריב את החיה על ידי exsanguination, לאסוף צנטריפוגה הדם.
15. לבסוף, בלו ולאסוף את הלב. משקלל את הלב, השמאלי, ואת החדר הימני בנפרד ומיד לאחסן את הדגימות חנקן נוזלי או פורמלין למחקרים מולקולריים או היסטולוגיים הבאים, בהתאמה.

9. הליך רצועות/ביטול פסים של העורקים בחולדות

1. בצע רצועות אב העורקים ב- Wistar הצעיר (70-90 גרם) באמצעות מחט 22 G ו 6-0 ליגטורת פוליפרופילן כדי לכווץ את אב העורקים.
2. להבטיח הליכים הרדמה ומשככי כאבים נאותים עם 3-4% של sevoflurane ו 0.05 מ"ג / קילוגרם של buprenorphine, בהתאמה.
3. במהלך אקו לב, להבטיח קצב הלב תמיד מעל 300 קצב / דקה (באופן אידיאלי בין 300 ל 350).
4. לפני שלב 8.9, בעדינות לנתח את העורקים החולדה, למקם בדיקה זרימה סביבו כדי למדוד את תפוקת הלב. השימוש בגשוש הזרימה של העורקים הוא הליך תקן הזהב לחולדות.
5. להערכה המודינמית, cannulate וריד הצוואר או הירך לניהול נוזלים (32 מ"ל / קילוגרם / שעה).
6. החלף את קטטר נפח הלחץ SPR-1035 על ידי SPR-847 או SPR-838, שגודלם מתאים יותר למידות חדר החולדה.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

תוצאות

הישרדות לאחר הניתוח והישרדות מאוחרת
ההישרדות perioperative של הליך רצועה הוא 80% ואת התמותה במהלך החודש הראשון הוא בדרך כלל <20%. כאמור, ההצלחה של ניתוח ההשבתה תלויה מאוד עד כמה פולשני היה הניתוח הקודם. לאחר עקומת למידה, שיעור התמותה במהלך הליכי ההשבתה הוא סביב 25%. עבור תמותה זו חשבונות בע?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Discussion

המודל המוצע בזאת מחקה את התהליך של שיפוץ LV ו- RR לאחר פסים ו debanding שלאבי העורקים, בהתאמה. לכן, הוא מייצג מודל ניסיוני מעולה כדי לקדם את הידע שלנו על המנגנונים המולקולריים המעורבים שיפוץ LV שלילי כדי לבדוק אסטרטגיות טיפוליות חדשניות מסוגל לגרום התאוששות שריר הלב של חולים אלה. פרוטוקול זה מפרט כ...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

Materials

Name	Company	Catalog Number	Comments
Absorption Spears	F.S.T	18105-03	To absorb fluids during the surgery
Blades	F.S.T	10011-00	To perform the skin incision
Buprenorphine	Buprelieve		Analgesia drug
Catutery	F.S.T	18010-00	To prevent exsanguination
Catutery tips	F.S.T	18010-01	To prevent exsanguination
cotton swab	Johnson's		To absorb fluids during the surgery
Depilatory cream	Veet		To delipate the animal
Disposable operating room table cover	MEDKINE	DYND4030SB	To cover the surgical area
Echo probe	Siemens	Sequoia 15L8W	Ultrasound signal aquisition
Echocardiograph	Siemens	Acuson Sequoia C512	Ultrasound signal aquisition
End-tidal CO2 monitor	Kent Scientific	CapnoStat	To control expiration gas saturation
Forcep/Tweezers	F.S.T	11255-20	To dissect the tissues and aorta
Forcep/Tweezers	F.S.T	11272-30	To dissect the tissues and aorta
Forcep/Tweezers	F.S.T	11151-10	To dissect the tissues and aorta
Forcep/Tweezers	F.S.T	11152-10	To dissect the tissues and aorta
Gas system	Penlon Sigma Delta		To anesthesia and mechanical ventilation
Hemostats	F.S.T	13010-12	To hold the suture before tight the aorta
Hemostats	F.S.T	13011-12	To hold the suture before tight the aorta
Ligation aids	F.S.T	18062-12	To place a suture around the aorta
Magnetic retractor	F.S.T	18200-20	To help keep the animal in a proper position
Needle holder	F.S.T	12503-15	To suture the animal
Needle 26G	B-BRAUN	4665457	To serve as a molde of aortic constriction diameter
Oxygen	Air Liquide		To anesthesia and mechanical ventilation
Polipropilene suture	Vycril	W8304/W8597	To suture the animal and to do the constriction
Povidone-iodine solution	Betadine®		Skin antiseptic
PowerLab	Millar instruments	ML880 PowerLab 16/30	PV loop Signal Aquisition
Pulse oximeter	Kent Scientific	MouseStat	To control heart rate and blood saturation
PVAN software	Millar Instruments		To analyse the haemodynamic data
PV loop cathether	Millar instruments	SPR-1035. 1.4 F	PV loop Signal Aquisition
Retractor	F.S.T	17000-01	To provide a better overview of the aorta
Scalpet handle	F.S.T	10003-12	To perform the skin incision
Scissors	F.S.T	15070-08	To cut the suture in debanding surgery
Scissors	F.S.T	14084-09	To cut other material during the surgery e.g. suture, papper
Sevoflurane	Baxter	533-CA2L9117
Temperature control module	Kent Scientific	RightTemp	To control animal corporal temperature
Ventilator	Kent Scientific	PhysioSuite	To ventilate the animal
Water-bath	Thermo Scientific™	TSGP02	To maintain water temperature adequate to heat the P-V loop catethers