JoVE Logo
Authors
Contact Us

Sign In

A subscription to JoVE is required to view this content. Sign in or start your free trial.

In This Article

  • Summary
  • Abstract
  • Introduction
  • Protocol
  • תוצאות
  • Discussion
  • Disclosures
  • Acknowledgements
  • Materials
  • References
  • Reprints and Permissions

Summary

כאן, אנו מקימים פרוטוקול המשתמש בכמויות מינימליות של מקטעי רקמת מוח קפואים טריים ושיטת צנטריפוגה נגישה במהירות גבוהה יחד עם כרומטוגרפיה של אי הכללת גודל כדי להשיג שלפוחיות חוץ-תאיות קטנות כמקורות לסמנים ביולוגיים של מיקרו-RNA (miRNA) להפרעות נוירולוגיות.

Abstract

שלפוחיות חוץ-תאיות קטנות (sEVs) הן מתווכות חיוניות בתקשורת תא-תאי, ומעבירות מטענים מגוונים כמו חלבונים, שומנים וחומצות גרעין (microRNA, mRNA, DNA). למטען ה-microRNA sEV יש תועלת פוטנציאלית כסמן ביולוגי רב עוצמה לא פולשני למחלות בשל יכולתו של sEV לחצות מחסומים ביולוגיים (למשל, מחסום דם-מוח) ולהיות נגיש באמצעות נוזלי גוף שונים. למרות מחקרים רבים על סמנים ביולוגיים של sEV בנוזלי גוף, זיהוי תת-אוכלוסיות sEV ספציפיות לרקמות או לתאים נותר מאתגר, במיוחד מהמוח. המחקר שלנו מתמודד עם אתגר זה על ידי התאמת שיטות קיימות לבידוד sEVs מכמויות מינימליות של חלקי מוח אנושיים קפואים באמצעות כרומטוגרפיה של אי הכללת גודל (SEC).

לאחר אישור אתי, כ-250 מיקרוגרם של רקמת מוח אנושית קפואה טרייה (שהושגה מבנק המוח של מנצ'סטר [בריטניה]) נחתכה מ-3 רקמות התורם והודגרה בתמיסת קולגנאז מסוג 3/Hibernate-E, עם תסיסה ביניים, ואחריה צנטריפוגה סדרתית ושלבי סינון. לאחר מכן, sEVs בודדו בשיטת SEC ואופיינו על ידי ביצוע הנחיות MISEV. לפני בידוד RNA מתוך sEVs אלה, התמיסה טופלה ב-Proteinase-K ו-RNase-A כדי להסיר כל RNA חוץ-תאי שאינו sEV. כמות ואיכות ה-RNA נבדקו ועובדו עוד עבור qPCR וניסויי ריצוף RNA קטנים.

נוכחותם של sEVs אושרה באמצעות ניתוח מעקב אחר ננו-חלקיקים פלואורסצנטיים (fNTA) וכתם מערבי לסמני פני השטח (CD9, CD63, CD81). התפלגות הגודל (50-200 ננומטר) אושרה על ידי NTA ומיקרוסקופ אלקטרונים. ריכוז ה-RNA הכולל בתוך sEVs שעברו ליזה נע בין 3-9 ננוגרם/מיקרוליטר ושימש לכימות מוצלח על ידי qPCR עבור מיקרו-רנ"א מועמדים נבחרים. ריצוף RNA קטן ב-MiSeq סיפק נתונים באיכות גבוהה (Q >32) עם 1.4-5 מיליון קריאות לדגימה.

שיטה זו מאפשרת בידוד ואפיון יעיל של sEVs מנפח מינימלי של רקמת המוח, מקלה על מחקר סמנים ביולוגיים לא פולשני וטומנת בחובה הבטחה למחקרי סמנים ביולוגיים שוויוניים של מחלות, המציעים תובנות לגבי מחלות ניווניות והפרעות אחרות.

Introduction

שלפוחיות חוץ-תאיות (EVs) הן אחד משחקני המפתח בתקשורת בין-תאית בכל האורגניזמים הרב-תאיים1. EVs הם חלקיקי ממברנה דו-שכבתית של שומנים שמקורם בתאים שיכולים להקל על העברת מגוון עומסי מטען, כגון חלבונים, ליפידים וחומצות גרעין, לתאים המקבלים. לרכבים חשמליים יכול להיות טווח גדלים רחב שנע בין 30 ננומטר ל-1 מיקרומטר. לרכבים חשמליים קטנים (sEVs), המוגדרים כשלפוחיות קשורות לליפידים עם גודל קוטר ממוצע של <200 ננומטר, יש את היכולת לחצות את מחסום הדם-מוח; לכן, הם היו מעורבים בהתפשטות דמוית פריון והחמרה של מחלות ניווניות ומצבים אחרים כגון מחלת אלצהיימר (AD), דמנציה פרונטו-טמפורלית (FTD), מחלת פרקינסון (PD) וסרטן 2,3. יתר על כן, מכיוון שניתן למצוא sEVs במגוון נוזלים ביולוגיים כגון דם, נוזל מוחי (CSF), רוק ואפילו שתן, השימוש המועיל בהם יכול להתפרש על פני תחום הסמנים הביולוגיים והאבחון הלא פולשני. לדוגמה, מחקר AD עשוי להצביע על שימוש ביחסי חלבון פתוגניים ביו-נוזליים, כגון tau/Aβ, או אפילו Aβ42/Aβ404.

מטען ידוע אחד של sEVs הוא microRNA (miRNA), קבוצה של מולקולות RNA קטנות שאינן מקודדות באורך של כ-22 נוקלאוטידים הנקשרות לאזורי 3'-UTR של mRNA ובדרך כלל מווסתות באופן שלילי את ביטוי החלבון. מעורבים בתפקידים תאיים רבים, miRNAs היו מעורבים גם בפתוגנזה של מחלות שונות, כולל סרטן ומחלות ניווניות. Cheng et al. ערכו ניתוח ריצוף בתפוקה גבוהה של חתימות ביטוי sEV miRNA שמקורן בסרום מחולי אלצהיימר5. לאחר שילוב עם רשומות הדמיה מוחית וגורמי סיכון ידועים של גיל, מין והצגת אלל APOE ε4, נמצא כי התוצאות מנבאות אלצהיימר עם רגישות של 87% וספציפיות של 77%. יתר על כן, מחקרים זיהו שני miRNAs CSF מווסתים (miR-151a-3p, let-7f-5p) ו-3 miRNAs מווסתים (miR-27a-3p, miR-125a-5p ו-miR-423-5p) שיכולים לאבחן PD6 בשלב מוקדם. במחלות פתולוגיות, המצב הפתולוגי עשוי להקדים תסמינים אופייניים מסוימים של מחלות, ואילו בניוון עצבי, הצטברות סימני היכר פתולוגיים מתרחשת הרבה יותר מוקדם מירידה קוגניטיבית.

מיקרו-רנ"א הם סמן ביולוגי יעיל יותר מחלבונים, בשל תפקידיהם המגוונים, וויסות אפיגנטי מסדר גבוה יותר. באמצעות רקמת מוח, חוקרים יכולים לזהות חתימות miRNA ספציפיות של sEV (BDsEV) שמקורן במוח עבור מחלות ותת-הסוגים שלהן. לדוגמה, sEVs עם סמני עצב וגליה יכולים להציג מטען miRNA שונה, והניתוח יכול לגרום לשיטות מדויקות יותר לזיהוי מחלות. יתר על כן, מוצע כי BDsEVs ממלאים תפקיד גדול בהתפשטות הטרנס-סינפטית של חלבונים נוירופתוגניים7. דיווחים קודמים הציעו אולטרה-צנטריפוגה של משקעים חיסוניים ושיפוע צפיפות (שיפוע סוכרוז) כדי להשיג sEVs מרקמת מוח קפואה טרייה 8,9. עם זאת, גישות אלו דורשות תשתית ספציפית עם אולטרה-צנטריפוגה ושיטות טיהור במורד הזרם כדי להשיג דגימות sEV באיכות גבוהה10. דיווחים עדכניים יותר הציעו מספר שינויים ושיפורים בגישה 11,12,13; עם זאת, למרות זאת, בידוד ומחקר של מיקרו-RNA שמקורו ב-sEV מרקמות אנושיות עדיין אינם מיושמים באופן נרחב. הגישה המתוארת בפרוטוקול זה נועדה לספק פרוטוקול מעודן צעד אחר צעד למחקר sEV שמקורו במוח כדי לשפר את הנגישות לטכניקה זו. הקמנו פרוטוקול המשתמש בכמויות מינימליות של רקמת מוח, שממנו בודדנו sEVs טהורים באמצעות כרומטוגרפיה של אי הכללת גודל ומציגים נתוני ריצוף באיכות גבוהה מהדור הבא ממטען המיקרו-RNA של ה-sEVs הללו.

Protocol

העבודה אושרה מבחינה אתית על ידי בנק המוח של מנצ'סטר (הפניה ל-REC 09/H0906/52) ועל ידי ועדת האתיקה באוניברסיטת סלפורד (מזהה יישום: 3408).

1. פירוק מטריצה תוך-תאית באמצעות קולגנאז על קטעי רקמת מוח קפואים

  1. פורסים דק 250 מ"ג רקמת מוח קפואה (שברים בעובי של כ-0.4 מ"מ) בעזרת אזמל מעוקר על צלחת קרה ומוסיפים 2 מ"ל של תמיסת קולגנאז מסוג 75 U/mL מסוג III/Hibernate-E.
  2. דגרו כל דגימה באמבט מים בטמפרטורה של 37 מעלות צלזיוס למשך 20 דקות. בנקודת 5 הדקות, הפוך כל דגימה פעמיים לערבוב; בנקודת 10 הדקות, פיפטה כל דגימה שלוש פעמים בעדינות באמצעות פס חד פעמי מפלסטיק בנפח 10 מ"ל.
  3. מניחים כל דגימה על קרח ומוסיפים קוקטייל מעכב פרוטאז אחד ומעכב פוספטאז אחד. זה עוצר את תגובת האנזים ומהווה את נקודת הקצה של העיכול באמצעות קולגנאז מסוג III.
  4. צנטריפוגה כל דגימת רקמת מוח ב-300x גרם למשך 10 דקות ב-4 מעלות צלזיוס. יש לאסוף כל סופרנטנט וצנטריפוגה נוספת בטמפרטורה של 2000 x גרם למשך 15 דקות בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
  5. אספו שוב כל סופרנטנט וסננו דרך מסנן של 0.22 מיקרומטר. צנטריפוגה כל סינון ב-10,000 x גרם למשך 48 דקות ב-4 מעלות צלזיוס.
  6. אספו את הסופרנטנט והוסיפו מאגר משקעים ביחס של 2:1 לכל דגימה. יש לדגור למשך הלילה בטמפרטורה של 4 מעלות צלזיוס.
  7. צנטריפוגה כל דגימה ב-10,000 x גרם למשך 96 דקות ב-4 מעלות צלזיוס ותשעה מחדש את הגלולה ב-100 מיקרוליטר של PBS ללא שלפוחית חוץ-תאית (EV).

2. הכנת עמודות כרומטוגרפיה של אי הכללת גודל

  1. לפני השימוש, יש לאזן את עמודת ה-SEC שהוכנה מראש בטמפרטורת החדר (RT) למשך 15 דקות.
    הערה: יש להסיר את המכסה התחתון לפני מכסה הבורג.
  2. לאחר שיווי המשקל, הסר את המאגר המשמר מהחלק העליון של העמודה ושטוף את העמודה פעמיים באמצעות 250 מיקרוליטר של PBS נטול EV. כל שטיפת PBS נותרת להיכנס לעמודה דרך כוח הכבידה.

3. בידוד שלפוחיות חוץ-תאיות קטנות באמצעות כרומטוגרפיה של אי הכללת גודל

  1. הוסף את הגלולה המושעה לחלק העליון של עמודת ה-SEC וצנטריפוגה את העמודה ב-50 x g למשך 30 שניות. השליכו את הזרימה.
  2. הוסף 180 μL של PBS נטול-EV לחלק העליון של עמודת ה-SEC וצנטריפוגה של העמודה ב-50 x g למשך דקה אחת, מה שמאפשר ל-sEVs שמקורם במוח להיפלט מהעמודה.
    הערה: החלק של הפרוטוקול המפורט לעיל מסוכם באיור 1.

4. אישור סמני שלפוחית חוץ-תאיים קטנים על ידי כתמים מערביים

  1. כדי ליז sEVs לפני ניתוח כתמים מערביים (כדי להבטיח שכל מטעני הממברנה והציטוזוליים מנותחים), יש לדלל דגימת sEV מבודדת 1:1 במאגר ליזה ומיצוי (מעכב פרוטאז 1x ומעכב פוספטאז 1x).
  2. מערבבים את הדגימה ב-4 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
  3. דגימת צנטריפוגה ב 14 000 x גרם למשך 15 דקות.
  4. אסוף את חומר החלבון ומדוד את ריכוזי החלבון באמצעות ערכת בדיקת חלבון.
  5. מערבבים דגימות עם 4x Laemmli buffer ומעמיסים 20 מיקרוגרם חלבון לכל באר כנגד סולם חלבון צבוע מראש.
  6. לאחר הפתרון, העבירו את החלבונים לקרום ניטרוצלולוזה של 0.45 מיקרומטר. לאחר ההעברה, חסום את הממברנה למשך שעתיים ב-5% BSA.
  7. דגרו על הממברנות עם נוגדנים ראשוניים (טבלה 1) למשך הלילה.
  8. שטפו את הממברנה שלוש פעמים עם מאגר כביסה (1% Tween20 ב-PBS) וצבעו באמצעות נוגדן משני נגד עכבר. לאחר מכן, יש לשטוף שלוש פעמים עם מאגר כביסה (1% Tween20 ב-PBS).
  9. בצע את השלבים לעיל בכתב היד לפני הדמיית הכתמים.
  10. תמונה באמצעות מצע פרוקסידאז חזרת (HRP).

5. אישור שלפוחיות חוץ-תאיות קטנות על ידי ניתוח מעקב אחר ננו-חלקיקים (NTA)

  1. לבצע NTA כדי לנתח את הריכוז והגודל של כל החלקיקים בדגימה. בצע זאת על ידי דילול כל דגימה ב-PBS במקדם דילול של 1:1000.
  2. הזרקו את הדגימה למכשיר ה-NTA וקראו את הדגימה באורך גל של 550 ננומטר. בשלב זה, השתמש בכמות החלקיקים כדי למדוד את כמות החלבון לחלקיק (המתבטאת בדרך כלל בפמטוגרמה) כפי שהומלץ בהנחיות MISEV.
  3. לאחר מכן, עבור NTA פלואורסצנטי, יש לדלל את מסכת התא בכתום (CMO) (מכתים את כל החלקיקים הביולוגיים בתוך דגימה) ב-PBS במקדם דילול של 1:1000. מכאן, יש לדלל את צבע ה-CMO באמצעות דגימת sEV במקדם דילול של 1:10 - דגרו את שלב הדילול הזה בחושך למשך 30 דקות ב-4 מעלות צלזיוס.
  4. לדלל את דילול ה-CMO השני באמצעות PBS במקדם דילול של 1:1000.
    הערה: הדילול הסופי של צבע CMO חייב להיות 1:10 000 000.
  5. קרא את ה-CMO של כל דגימת sEV באורך גל של 550 ננומטר באמצעות מכשיר ה-NTA.
  6. עבור הנוגדנים הפלואורסצנטיים של טטרספנין (ראה טבלת חומרים), ראשית, יש לדלל כל נוגדן בהתאמה ב-PBS במקדם דילול של 1:10. מכאן, יש לדלל כל אחד מהצבעים באמצעות דגימת sEV במקדם דילול של 1:10 - לדגור את שלב הדילול בחושך למשך שעתיים ב-4 מעלות צלזיוס.
  7. לדלל את דילול הנוגדנים השני באמצעות PBS במקדם דילול של 1:1000.
    הערה: הדילול הסופי של כל נוגדן טטרספנין חייב להיות 1:100,000.
  8. קרא את קריאות הנוגדנים הפלואורסצנטיים של דגימת ה-sEV באורך גל של 550 ננומטר באמצעות מכשיר ה-NTA.

6. אישור שלפוחיות חוץ-תאיות קטנות על ידי מיקרוסקופ אלקטרונים שידור (TEM)

הערה: פרוטוקול זה בוצע על ידי מתקן המיקרוסקופיה הביו-רפואית באוניברסיטת ליברפול.

  1. ראשית, תקן דגימות sEV באמצעות גלוטרלדהיד וצבוע באמצעות אורניל אצטט.
  2. באמצעות סדרה מדורגת של אלכוהולים, יש לייבש את הדגימה מוכנה ל-TEM.
  3. דגימות תמונה באמצעות מיקרוסקופ אלקטרונים הולכה מתאים.

7. טיפול בפרוטאינאז K ו-RNase A

  1. ל-50 מיקרוליטר של מוח מבודד מפיקים EVs, הוסף 1 מיקרוליטר של 20 מיקרוגרם/מיקרוליטר פרוטאינאז K ודגירה ב-37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
  2. עצור כל תגובה על ידי הוספת קוקטייל מעכב חלבון 1x ודגירה על קרח למשך 10 דקות.
  3. לאחר הדגירה, הוסף 1 מיקרוליטר של 10 מיקרוגרם/מיקרוליטר RNase A לכל דגימה ודגירה נוספת ב-37 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות.
    הערה: עבור מיד לסעיף 8.

8. בידוד RNA מוחלט משלפוחיות חוץ-תאיות קטנות

  1. כדי לבודד את ה-RNA הכולל, הוסף 700 מיקרוליטר של ריאגנט ליזה לשחזור RNA באיכות גבוהה ל-50 מיקרוליטר של דגימת EV שמקורה במוח (BDsEV). מערבבים כל דגימה למשך שעה.
  2. מוסיפים 140 מיקרוליטר כלורופורם, מנערים כל דגימה במרץ במשך 20 שניות, ומניחים לדגור ב-RT למשך 3 דקות.
  3. צנטריפוגה את הדגימה ב-12,000 x גרם למשך 15 דקות ב-4 מעלות צלזיוס ואספו את האינטרפאזה מהדגימה. הוסף פי 1.5 נפח של 100% אתנול.
  4. הוסף 700 מיקרוליטר של עמודות בידוד RNA של תערובת בין-פאזית/אתנול וצנטריפוגה ב-≥8000 x g למשך 15 שניות ב-RT.
    הערה: חזור על שלב זה באמצעות כל דגימות הבין-פאזי/אתנול.
  5. לעמודה, הוסף 700 מיקרוליטר של מאגר כביסה וצנטריפוגה ב-≥8000 x גרם למשך 15 שניות. השליכו את הזרימה.
  6. הוסף 500 מיקרוליטר של RPE מאגר ושוב צנטריפוגה ב-≥8000 x g למשך 15 שניות. השליכו את הזרימה.
  7. הוסף 500 מיקרוליטר של 80% אתנול וצנטריפוגה ב-≥8000 x גרם למשך 2 דקות. השליכו את הזרימה.
  8. בשלב זה, יבש את קרום העמוד על ידי צנטריפוגה של העמודים במהירות מלאה (>8000 x גרם) למשך 5 דקות כשהמכסה פתוח.
  9. העבירו את העמודה לצינור איסוף חדש, הוסיפו 14 מיקרוליטר מים נטולי RNase ישירות לקרום העמוד, וצנטריפוגה ב-≥8000 x g למשך דקה אחת כדי לסלק את סך ה-RNA מ-BDsEVs.
  10. כמת את סך המיקרו-RNA עם דגימות באמצעות ערכת בדיקת כימות miRNA, שבה נמדדו דגימות על פלואורומטר כמות, ובחר את סוג בדיקת ה-miRNA.

9. ריצוף RNA קטן

  1. לאחר כימות ה-miRNA בתוך הדגימה, סנתז ספריית cDNA באמצעות ערכת ההכנה של ספריית RNA-Seq קטנה.
    הערה: באמצעות פרוטוקול זה, יצירת הספרייה כללה ארבעה שלבים: קשירת מתאם 3', טיהור, קשירת מתאם 5' ושעתוק הפוך - כאשר, בסופו של דבר, נוצרת ספריית RNA/cDNA. לאחר יצירת הספרייה, הגברת PCR של נקודת קצה מתרחשת עם הוספת פריימרים לאינדקס (המשמשים למטרות ריבוב), ולאחר מכן מטוהרים הדגימות.
  2. כדי לבדוק את איכות ה-RNA, השתמש בבדיקת יישום בקרת איכות המפרטת את הגודל של כל תכשיר ואת עוצמת השיא.
  3. כדי לבדוק את ריכוז ה-DNA, מדוד את כימות ה-DNA על פלואורומטר כמות, ובחר את סוג בדיקת dsDNA.
  4. הכן את הדגימות ל-RNA Seq קטן באמצעות ערכת הריאגנטים, ולאחר מכן הדגימות נטענות לתא הזרימה.

תוצאות

כדי לאשר את נוכחותם של BDsEVs, נעשה שימוש בשלוש טכניקות: כתמים מערביים, NTA ו-TEM (איור 3). תוצאות הכתם המערבי (איור 3A וקובץ משלים 1) מראות את נוכחותם של כל חמשת הסמנים החיוביים (CD9, CD63, CD81, Flot-1 ו-TSG101) והיעדר קלנקסין ב-sEVs (המשמש כבקרה שלילית), מה...

Discussion

פרוטוקול שונה ומשופר זה לבידוד שלפוחיות חוץ-תאיות קטנות שמקורן במוח ומטען המיקרו-RNA שלהן מדגים את ההיתכנות של שימוש ברקמה מינימלית מבלי לפגוע באיכות ובכמות המוצרים במורד הזרם. בתחום גילוי הסמנים הביולוגיים, זיהוי מזהים מולקולריים ספציפיים לסוגי תאים ורקמות יכול להובי?...

Disclosures

אין ניגודי אינטרסים לאף אחד מהכותבים.

Acknowledgements

עבודה זו מומנה על ידי מלגת הדוקטורט של ג'וזף מורגן מאגודת האלצהיימר בבריטניה (מענק מספר 549/SERA-52) ועל ידי קרנות אסטרטגיית החדשנות של אוניברסיטת סלפורד (מענק SEFA-39). רקמת המוח התקבלה מבנק המוח של מנצ'סטר (REC Reference 09/H0906/52) של רשת המוח לדמנציה.

Materials

NameCompanyCatalog NumberComments
Bovine Serum AlbuminMerckA9418-100G
Cell Mask Orange Plasma Membrane StainThermoFisher ScientificC10045
Collagenase Type-IIIStemCell Technologies07422
ExoSpin Columns and BufferCell Guidance Systems Ltd.EX01-50This kit contains SEC columns used in this experiment, precipitation buffer and EV free PBS.
Halt Protease Inhibitor Cocktail (100x)ThermoFisher Scientific78429
Hibernate-E MediumThermoFisher ScientificA1247601
Laemmli Sample Buffer (4x)BioRad1610747
Lexogen Small RNA-Seq Library Prep KitLexogen052.24This kit contains Small RNA preparation reagent box with i7 Index primer plate. 
miRNeasy Micro Kit (50)Qiagen217084This kit contains high-quality RNA recovery lysis reagent (Qiazol), RNA isolation columns, isolation buffers (RWT, RPE) and RNase free water.
MiSeq Reagent Kit v3IlluminaMS-102-3001This is the Illumina Preparation Kit
Nitrocellulose Membrane, 0.45 μmThermoFisher Scientific88018
PE/Dazzle 594 anti-human CD63 AntibodyBioLegend143914Used for fNTA Analysis
PE/Dazzle 594 anti-human CD81 AntibodyBioLegend349520Used for fNTA Analysis
PE/Dazzle 594 anti-human CD9 AntibodyBioLegend312118Used for fNTA Analysis
PhosSTOPMerck4906845001
Pierce BCA Protein Assay KitThermoFisher Scientific23225
Proteinase KThermoFisher Scientific25530049
Qubit microRNA Assay KitThermoFisher ScientificQ32880
Qubit 1X dsDNA HS assay kitThermoFisher ScientificQ33230
Qubit 3.0 FluorometerThermoFisher ScientificQ33216
RIPA Lysis and Extraction BufferThermoFisher Scientific89901
RNase AThermoFisher ScientificEN0531
SuperSignal West Femto Maximum Sensitivity SubstrateThermoFisher Scientific34094

References

  1. Jia, Y., et al. Small extracellular vesicles isolation and separation: Current techniques, pending questions and clinical applications. Theranostics. 12 (15), 6548-6575 (2022).
  2. Fornari, S., Schäfer, A., Jucker, M., Goriely, A., Kuhl, E. Prion-like spreading of Alzheimer's disease within the brain's connectome. J R Soc Interface. 16 (159), 20190356 (2019).
  3. Zhang, P., et al. Tumor-derived small extracellular vesicles in cancer invasion and metastasis: molecular mechanisms, and clinical significance. Mol Cancer. 23 (1), 18 (2024).
  4. Constantinides, V., et al. CSF Aβ42 and Aβ42/ Aβ40 ratio in Alzheimer's disease and frontotemporal dementia. Diagnostics. 13 (4), 783 (2023).
  5. Cheng, L., et al. Prognostic serum miRNA biomarkers associated with Alzheimer's disease shows concordance with neuropsychological and neuroimaging assessment. Mol Psychiatry. 20 (10), 1188-1196 (2015).
  6. Roser, A. E., Caldi Gomes, L., Schünemann, J., Maass, F., Lingor, P. Circulating miRNAs as diagnostic biomarkers for Parkinson's disease. Front Neurosci. 12, 625 (2018).
  7. Jackson, N., Guerrero-Muñoz, M. J., Castillo-Carranza, D. L. The prion-like transmission of tau oligomers via exosomes. Front Aging Neurosci. 14, 974414 (2022).
  8. Vella, L., et al. A rigorous method to enrich for exosomes from brain tissue. J Extracell Vesicles. 6 (1), 1348885 (2017).
  9. Yousif, G., Qadri, S., Parray, A., Akhthar, N., Shuaib, A., Haik, Y. Exosomes derived neuronal markers: Immunoaffinity isolation and characterization. Neuromolecular Med. 24 (3), 339-351 (2022).
  10. Kumar, K., et al. Recent advances in microfluidic approaches for the isolation and detection of exosomes. TRAC-Trend Anal Chem. 159, 116912 (2023).
  11. Ransom, L., et al. Human brain small extracellular vesicles contain selectively packaged, full-length mRNA. Cell Rep. 43 (4), 114061 (2024).
  12. Gomes, P., et al. A novel isolation method for spontaneously released extracellular vesicles from brain tissue and its implication for stress-driven brain pathology. Cell Commun Signal. 21 (1), 35 (2023).
  13. Welsh, J., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles (MISEV 2023): From basic to advanced approaches. J Extracell Vesicles. 13 (2), e12404 (2023).
  14. Théry, C., et al. Minimal information for studies of extracellular vesicles 2018 (MISEV2018): a position statement of the International Society for Extracellular Vesicles and update of the MISEV2014 guidelines. J Extracell Vesicles. 7 (1), 1535750 (2018).
  15. Pirisinu, M. The long journey of extracellular vesicles towards global scientific acclamation. Adv Pharm Bull. 13 (3), 489-501 (2023).
  16. Bender, A., Sullivan, B. P., Lillis, L., Posner, J. D. Enzymatic and chemical-based methods to inactivate endogenous blood ribonucleases for nucleic acid diagnostics. J Mol Diagn. 22 (8), 1030-1040 (2020).

Reprints and Permissions

Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article

Request Permission

Explore More Articles

SEVsQPCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

Privacy

Terms of Use

Policies

Contact Us

Recommend to library

JoVE NEWSLETTERS

Research

Education

Authors

Librarians

ABOUT JoVE

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved