Name: porphyromonas gingivalis as a model organism for assessing interaction of anaerobic bacteria with host cells
Uploaded: 2015-12-17T13:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 16 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells at JoVE.com

We would like to thank Dr. Hiroshi Miyazaki, Dr. Scott Henderson, Dr. Todd Kitten, Dr. Justin Hutcherson, Dr. Catherine Jauregui, and Collin R. Berry. This work was supported by NIH NIDCR grants R01DE016124, R01DE018039, and R01DE023304 to J.P. Lewis.
Microscopy was performed at the VCU Department of Anatomy and Neurobiology Microscopy Facility, supported, in part, with funding from NIH-NINDS Center core grant (5P30NS047463).

Authors have nothing to disclose.

כל השיטות הנ&quot;ל יכולות לשמש כדי לתכנן מבחני ספציפיים על מנת להעריך את האינטראקציה של חיידקים אנאירוביים עם תאים האיקריוטים. עם זאת, יש כמה שיקולים לבצע בהצלחה את הניסויים. הם ראשון זני חיידקים לשימוש במחקר. זה חיוני בהשוואה של ש?...

חיידקים אנאירוביים ליישב כמעט כל משטחים של הגוף האנושי. למרות דומיננטי בצמחייה של קטעי מעיים ומין ושתן שבו ריכוזי חמצן נמוכים, הם קיימים גם ברמות גבוהות על העור, פה, האף והגרון 1. חיידקים אנאירוביים הם גורם נפוץ של זיהומי אנדוגני ולעתים קרובות מבודדים מאתרים נגועים. עם זאת, בגלל אופיים האנין, אנאירוביים יכול להיות קשה לבודד ותרבות. מחקרים שכלל חיידקים אנאירוביים חייבים להיעשות בתנאים מוגבלים. טכניקות אנאירובי-תרבות מודרניות מאפשרות לחוקרים לחקות את הגדרות אנאירובי נדרשו ללמוד הרבה זני מעבדה אנאירובי או אפילו מבודד קליני 2,3. חיידקים אנאירוביים פתוגניים פיתחו מערכת יחסים דינמיות ושיתוף אבולוציה עם תאי המארח שבו הם מתגוררים. רוב אנאירוביים רגישים להרג על ידי התגובה החיסונית המארח לפני שהגיע infectiרמות היחידות הארגוניות. עם זאת, כמה חיידקים פתוגניים פיתחו מנגנונים לברוח מאו לחתור תחת התגובה החיסונית המארח. הם להשיג מטרה זו באמצעות מנגנונים כגון התחמקות של הכרה חיסונית, נטרול של מתווכים חיסוניים, שינוי של חסינות תא בתיווך, פלישה של תאי מארח, ושינוי של חיסון איתות 4. Porphyromonas gingivalis, anaerobe גראם שלילי מעורב בשני אוראליים ו מחלות extraoral, הוא דוגמא אחת לפתוגן חיידקים המותאם ביותר מסוגל לגרום שינויים פתוגניים במארח 5-7. כיסים של שלט biofilm נצברו בנקיקים עמוקים שנוצרו בין השיניים וחניכיימיים הרקמה רירית יכול נמל חיידקים אנאירוביים שמוגנים מחמצן אטמוספרי 8. כיסי חניכיים אלו משמשים כנישה לפתוגנים אנאירובי שונים, כגון פ gingivalis 9. פ gingivalis הוא הפתוגן אבן הראשה כי הוא מסוגל לשפץing קהילת חיידקי הפה בדרכים שיקדמו התפתחות והתקדמות של מחלות חניכיים 10. היא מייצרת מספר רב של גורמים ארסי הפועלים נגד קשת רחבה של חלבוני מארח ומספק מנגנונים להתחמקות של הגנות מארח 11. הוא גם מסוגל לפלוש לאפיתל, אנדותל, fibroblastic, ותאי רצועת חניכיים במבחנה 12-14 וin vivo 15. על ידי יעילות פולש תאי מארח, פ gingivalis יכול לברוח חסינות מארח. פלישה אפקטיבית של תאי מארח מאפשרת לא רק החיידק לברוח הגנות מארח, אלא גם משמשת כמאגר לזיהום מחדש בעתיד, כמו גם משנה את התא המארח. מחקרים של המנגנונים המולקולריים המעורבים בהדבקה והפנמה של החיידק על ידי תאי מארח יש צורך. בהבנת האירועים המולקולריים הקשורים בהפנמה של פ מחקר במספר מעבדות מתמקד gingivalis על ידי תאי המארחכמו גם את המנגנונים המשמשים לדיכוי ולחטוף את התגובה החיסונית ולשרוד את מנגנוני הגנת מארח העוינים. יש מבחני רבים מסוגלים לזהות ולאפיין פתוגנים המסוגלים פולש תאי מארח. עם זאת, מחקרים במבחנה עם פתוגנים אנאירובי מציבים בעיות ניסיוניות רבות לחוקר בעיקר משום שקשה לבצע מחקרים המסתמכים על מכשירים מגושמים בהיעדר חמצן. זה מורכב על ידי העובדה שתאים האיקריוטים דורשים חמצן כדי לגדול, וכך צריך להיות מוכנות בנפרד בחממות בתרבית רקמה. דרך אחת למנוע מכשולים כזה תהיה לבצע מחקרים בחמצן באטמוספרה, אבל זה יהפוך את הצמיחה של חיידקים אנאירוביים בלתי אפשרית. שיטה נוספת תהיה להשתמש חיידקים נהרגו חום להדביק וללמוד אינטראקציות מארח תאים. עם זאת, קיימים הבדלים בין חיידקים נהרגו חום ובת קיימא שיקטינו את הרלוונטיות של interacti מארח הפתוגןב -16 ב. היא מרכזית ללמוד חיידקי קיימא עם ביטוי ללא שינוי באינטראקציה עם תאי מארח; לכן, שיטות לculturing פ gingivalis בהגדרת אנאירובי מקבל. כמו כן, שני פרוטוקולים חסכוניים פשוטים הם הפגינו להערכת יכולתה של פ gingivalis להיות מופנם על ידי תאים אנושיים טבור וריד אנדותל (HUVECs). הפרוטוקול הראשון מבוסס על assay הגנת האנטיביוטיקה הפופולרי. למרות assay הוא פשוט, ניתנים שיקולים בעת שימוש במייקרו-אורגניזמים אנאירובי. הפרוטוקול השני דורש שימוש במיקרוסקופ סריקת ניאון כדי לחזות אינטראקציה והפנים פ gingivalis. לכל assay מגבלות ויתרונות שיידונו לספק חוקר מתווה ללימוד הפולשנות של חיידקים אנאירוביים. למרות שכתב היד הנוכחית לומדת פ gingivalis וHUVECs, פרוטוקולים אלה יכולים לשמש להרבה חיידקים אנאירוביים אחרים גם כןכעבור סוגים אחרים של תאי מארח.

<table><tbody><tr><td>Vinyl Anaerobic Chamber-Type B</td><td>Coy Laboratory Products</td><td></td><td>Model 2000 incubator&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>TSA II Trypticase Soy Agar with 5% Sheep Blood</td><td>BBL</td><td>221261</td><td></td></tr><tr><td>Human Umbilical Vein Endothelial Cells 10-donor Pool</td><td>LifeLine Technology</td><td>FC-0044</td><td></td></tr><tr><td>VascuLife VEGF Medium Complete Kit</td><td>LifeLine Technology</td><td>LL-0003</td><td></td></tr><tr><td>TrypKit</td><td>LifeLine</td><td>LL-0013</td><td></td></tr><tr><td>Saponin</td><td>Riedel-de Haen</td><td>16109</td><td></td></tr><tr><td>Gentamicin Sulfate Salt</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>G-1264</td><td></td></tr><tr><td>Metronidazole</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>M-3761</td><td></td></tr><tr><td>BCECF-AM</td><td>LifeTechnologies</td><td>B1150</td><td></td></tr><tr><td>TRITC Phalloidin&amp;nbsp;</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P1951</td><td></td></tr><tr><td>18 mm Circular Coverslips</td><td>Electron Microscopy Sciences</td><td>72222-01</td><td></td></tr><tr><td>VectaShield Mounting Medium with DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td></td></tr></tbody></table>

porphyromonas gingivalis as a model organism for assessing interaction of anaerobic bacteria with host cells

חיידקים אנאירוביים הרבה משיעור aerobes בהרבה נישות אנושיות כגון הבטן, פה, ונרתיק. יתר על כן, זיהומים אנאירוביים נפוצים ולעתים קרובות ממוצא ילידים. היכולת של כמה פתוגנים אנאירובי לפלוש תאים אנושיים נותנת להם אמצעי הסתגלות לברוח חסינות מולדת, כמו גם לווסת מארח התנהגות תא. עם זאת, על מנת להבטיח כי החיידקים אנאירוביים הם חיה במהלך החקירה ניסויית של האירועים יכולים להוות אתגר. Gingivalis Porphyromonas, anaerobe גראם שלילי, הוא מסוגל פולש מגוון של תאים שאינם phagocytic האיקריוטים. מאמר זה מתאר כיצד בהצלחה התרבות ולהעריך את היכולת של פ gingivalis לפלוש תאים אנושיים וריד טבור אנדותל (HUVECs). שני פרוטוקולים שפותחו: אחד למדוד חיידקים שהצלחה יכולה לפלוש ולשרוד בתוך המארח, והשני כדי להמחיש חיידקי אינטראקציה עם תאי מארח. טכניקות אלו מצריכות שימוש בanaerobic קאמרי לספק פ gingivalis עם סביבת אנאירובי לצמיחה אופטימלית. הפרוטוקול הראשון מבוסס על assay הגנת האנטיביוטיקה, המשמש במידה רבה כדי ללמוד את הפלישה של תאי מארח על ידי חיידקים. עם זאת, assay הגנת האנטיביוטיקה הוא מוגבל; רק חיידקים תאיים שculturable הבא טיפול אנטיביוטי ותמוגה תא מארח נמדדים. כדי להעריך את כל חיידקי אינטראקציה עם תאי מארח, שני חיים ומתים, שפיתחנו פרוטוקול המשתמש במיקרוסקופ פלואורסצנטי לבחון אינטראקציה מארח הפתוגן. חיידקים שכותרתו fluorescently עם 2 &#39;, 7&#39;-ביסה (2-carboxyethyl) -5- (ו- 6) -carboxyfluorescein acetoxymethyl אסתר (BCECF-AM) ושימש להדביק תאים האיקריוטים בתנאים אנאירוביים. בעקבות תיקון עם paraformaldehyde וpermeabilization עם 0.2% Triton X-100, תאי מארח מסומנים עם phalloidin TRITC וDAPI לתייג שלד תא התא וגרעין, בהתאמה. הר&quot;י מרובהGES נלקחה בנקודות שונות מוקד (Z-ערימה) מתקבלת להדמיה זמנית-מרחבי של חיידקים. שיטות ששמשו במחקר זה יכול להיות מיושמות על כל anaerobe לעיבוד חקלאי וכל סוג תא האיקריוטים.

פרוטוקולים שתוארו לעיל שמשו בלימוד האינטראקציה מארח הפתוגן בין פ gingivalis ותאי האנדותל. פ gingivalis W83 ופ gingivalis V3150 ביצוע מחיקה של PG0228 שימש במחקר. PG0228 צפוי לקודד חלבון שעשוי לשנות את הרמות של RNA וחלבונים, אשר עשוי להשפיע בסופו של אינטראקציה של פ gingivalis עם תא?...

Watch this Scientific Journal Video about Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells at JoVE.com

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

This article presents two protocols: one to measure anaerobic bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize anaerobic bacteria interacting with host cells. This study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type.

gingivalis Porphyromonas כאורגניזם מודל להערכת אינטראקציה של חיידקים אנאירוביים עם תאי מארח

Anaerobic bacteria far outnumber aerobes in many human niches such as the gut, mouth, and vagina. Furthermore, anaerobic infections are common and ...

porphyromonas-gingivalis-as-model-organism-for-assessing-interaction

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

26.2K Views.  Virginia Commonwealth University. This article presents two protocols: one to measure anaerobic bacteria that can successfully invade and survive within the host, and the other to visualize anaerobic bacteria interacting with host cells. This study can be applied to any cultivable anaerobe and any eukaryotic cell type. 

Video: Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells

Assessing the Viability of a Synthetic Bacterial Consortium on the In Vitro Gut Host-microbe Interface

The interplay between host and microbiota has been long recognized and extensively described. The mouth is similar to other sections of the gastrointestinal tract, as resident microbiota occurs and prevents colonisation by exogenous bacteria. Indeed, more than 600 species of bacteria are found in the oral cavity, and a single individual may carry around 100 different at any time. Oral bacteria possess the ability to adhere to the various niches in the oral ecosystem, thus becoming integrated within the resident microbial communities, and favouring growth and survival. However, the flow of bacteria into the gut during swallowing has been proposed to disturb the balance of the gut microbiota. In fact, oral administration of P. gingivalis shifted bacterial composition in the ileal microflora. We used a synthetic community as a simplified representation of the natural oral ecosystem, to elucidate the survival and viability of oral bacteria subjected to simulated gastrointestinal transit conditions. Fourteen species were selected, subjected to in vitro salivary, gastric, and intestinal digestion processes, and presented to a multicompartment cell model containing Caco-2 and HT29-MTX cells to simulate the gut mucosal epithelium. This model served to unravel the impact of swallowed bacteria on cells involved in the enterohepatic circulation. Using synthetic communities allows for controllability and reproducibility. Thus, this methodology can be adapted to assess pathogen viability and subsequent inflammation-associated changes, colonization capacity of probiotic mixtures, and ultimately, potential bacterial impact on the presystemic circulation.

Assessing the Viability of a Synthetic Bacterial Consortium on the In Vitro Gut Host-microbe Interface

Gut host-microbe interactions were assessed using a novel approach combining a synthetic oral community, in vitro gastrointestinal digestion, and a model of the small intestine epithelium. We present a method that can be adapted to evaluate cell invasion of pathogens and multi-species biofilms, or even to test probiotic formulations&#39; survivability.

הערכת הכדאיות של קונסורציום חיידקי סינתטי על הממשק מארח-חיידק במעיים במבחנה

The interplay between host and microbiota has been long recognized and extensively described. The mouth is similar to other sections of the ...

Biochemistry

A Mouse Model for Pathogen-induced Chronic Inflammation at Local and Systemic Sites

Chronic inflammation is a major driver of pathological tissue damage and a unifying characteristic of many chronic diseases in humans including neoplastic, autoimmune, and chronic inflammatory diseases. Emerging evidence implicates pathogen-induced chronic inflammation in the development and progression of chronic diseases with a wide variety of clinical manifestations. Due to the complex and multifactorial etiology of chronic disease, designing experiments for proof of causality and the establishment of mechanistic links is nearly impossible in humans. An advantage of using animal models is that both genetic and environmental factors that may influence the course of a particular disease can be controlled. Thus, designing relevant animal models of infection represents a key step in identifying host and pathogen specific mechanisms that contribute to chronic inflammation.
Here we describe a mouse model of pathogen-induced chronic inflammation at local and systemic sites following infection with the oral pathogen Porphyromonas gingivalis, a bacterium closely associated with human periodontal disease. Oral infection of specific-pathogen free mice induces a local inflammatory response resulting in destruction of tooth supporting alveolar bone, a hallmark of periodontal disease. In an established mouse model of atherosclerosis, infection with P. gingivalis accelerates inflammatory plaque deposition within the aortic sinus and innominate artery, accompanied by activation of the vascular endothelium, an increased immune cell infiltrate, and elevated expression of inflammatory mediators within lesions. We detail methodologies for the assessment of inflammation at local and systemic sites. The use of transgenic mice and defined bacterial mutants makes this model particularly suitable for identifying both host and microbial factors involved in the initiation, progression, and outcome of disease. Additionally, the model can be used to screen for novel therapeutic strategies, including vaccination and pharmacological intervention.

Animal models have proven to be invaluable tools in defining host and pathogen specific mechanisms that contribute to the development of chronic inflammation. Here we describe a mouse model of oral infection with the human pathogen Porphyromonas gingivalis and detail methodologies to assess the progression of inflammation at local and systemic sites.

מודל של עכברים של דלקת כרונית הנגרם על ידי פתוגן באתרים מקומיים ומערכתיים

Chronic inflammation is a major driver of pathological tissue damage and a unifying characteristic of many chronic diseases in humans including ...

Robust Ligature-Induced Model of Murine Periodontitis for the Evaluation of Oral Neutrophils

The main advantages of studying the pathophysiology of periodontal disease utilizing murine models are the reduced cost of animals, array of genetically modified strains, the vast number of analyses that can be performed on harvested soft and hard tissues. However, many of these systems are subject to procedural criticisms. As an alternative, the ligature-induced model of periodontal disease, driven by the localized development and retention of a dysbiotic oral microbiome, can be employed, which is rapidly induced and relatively reliable. Unfortunately, the variants of ligature-induced murine periodontitis protocol are isolated to focal regions of the periodontium and subject to premature avulsion of the installed ligature. This minimizes the amount of tissue available for subsequent analyses and increases the number of animals required for study. This protocol describes the precise manipulations required to place extended molar ligatures with improved retention and usage of a novel rinse technique to recover oral neutrophils in mice with an alternative approach that mitigates the aforementioned technical challenges.

This article presents a protocol for establishing a ligature-induced model of murine periodontitis involving multiple maxillary molars, resulting in larger areas of the involved gingival tissue and bone for subsequent analysis as well as reduced animal usage. A technique to assess oral neutrophils in a manner analogous to human subjects is also described.

מודל חזק המושרה לקשירה של חניכיים Murine להערכת הנויטרופילים אוראלי

The main advantages of studying the pathophysiology of periodontal disease utilizing murine models are the reduced cost of animals, array of genetically ...

Models of Murine Vaginal Colonization by Anaerobically Grown Bacteria

The mammalian vagina can be colonized by many bacterial taxa. The human vaginal microbiome is often dominated by Lactobacillus species, but one-in-four women experience bacterial vaginosis, in which a low level of lactobacilli is accompanied by an overgrowth of diverse anaerobic bacteria. This condition has been associated with many health complications, including risks to reproductive and sexual health. While there is growing evidence showing the complex nature of microbial interactions in human vaginal health, the individual roles of these different anaerobic bacteria are not fully understood. This is complicated by the lack of adequate models to study anaerobically grown vaginal bacteria. Mouse models allow us to investigate the biology and virulence of these organisms in vivo. Other mouse models of vaginal bacterial inoculation have previously been described. Here, we describe methods for the inoculation of anaerobically grown bacteria and their viable recovery in conventionally raised C57Bl/6 mice. A new, less stressful procedural method for vaginal inoculation and washing is also described. Inoculation and viable recovery of Gardnerella are outlined in detail, and strategies for additional anaerobes such as Prevotella bivia and Fusobacterium nucleatum are discussed.

The protocol presents a mouse model of vaginal colonization with anaerobically cultured human vaginal bacteria. We focus on Gardnerella vaginalis,&#160;while including suggestions for Prevotella bivia and Fusobacterium nucleatum. This protocol can also be used as a guide for vaginal inoculations and viable recovery of other anaerobically grown bacteria.

מודלים של התיישבות נרתיקית מורין על ידי חיידקים שגודלו אנאירובית

The mammalian vagina can be colonized by many bacterial taxa. The human vaginal microbiome is often dominated by Lactobacillus species, but one-in-four ...

Organotypic Tissue Model Systems for Investigating Host-Pathogen Interactions In Vitro

Recapitulating the host-pathogen interface at the epithelial or mucosal barrier in vitro remains a challenging prospect for infection biologists. While in-house grown 2D epithelial monolayers lack true representation of the in vivo situation, commercially available tissue models are often overlooked due to their cost and practicality. However, with careful planning, such models provide reproducible platforms for a vast array of different applications. Here, we report the use of epithelial models that can be utilized for a wide variety of experimental purposes to investigate host-pathogen interactions in various ecological niches, such as the oral cavity, skin, and vaginal mucosa. From simple planktonic cells to complex biofilm co-culture, epithelial models are used to assess microbial adherence and invasion, and to evaluate the host response at a transcriptional and/or protein level, with scope for more detailed profiling using different omics approaches. Furthermore, these biological systems can be used as more accurate test beds for evaluating conventional and novel antimicrobial activity in a complex host-pathogen microenvironment in vitro. The protocols described herein document how models are handled upon arrival and prepared in the laboratory for co-culture stimulation with biofilm communities. The methods detail how experimental outputs are achieved from the model systems, including the processing of tissue, the co-culture setup, and data generation. These experiments include host gene expression through single- and multiplex qPCR analyses and inflammatory protein detection using ELISAs. In conclusion, epithelial models provide useful in vitro systems for preclinical investigatory studies into simple or complex host-pathogen interactions.

The present protocol outlines the application of organotypic tissue models for investigating host-pathogen interactions in vitro. Specifically, the model system described uses a multi-layered oral epithelium exposed to microorganisms associated with biofilms (dental plaque) within the context of oral health versus disease.

מערכות מודל רקמות אורגנוטיפיות לחקירת אינטראקציות מארח-פתוגן במבחנה

Recapitulating the host-pathogen interface at the epithelial or mucosal barrier in vitro remains a challenging prospect for infection biologists. While ...

Establishing Stable Binary Cultures of Symbiotic Saccharibacteria from the Oral Cavity

Many bacterial species cannot be cultured in the laboratory using standard methods, posing a significant barrier to studying the majority of microbial diversity on earth. Novel approaches are required to culture these uncultured bacteria so that investigators can effectively study their physiology and lifestyle using the powerful tools available in the laboratory. The Candidate Phyla Radiation (CPR) is one of the largest groups of uncultivated bacteria, comprising ~15% of the living diversity on earth. The first isolate of this group was a member of the Saccharibacteria phylum, 'Nanosynbacter lyticus' strain TM7x. TM7x is an unusually small bacterium that lives as a symbiont in direct contact with a bacterial host, Schaalia odontolytica, strain XH001. Taking advantage of the unusually small cell size and its lifestyle as a symbiotic organism, we developed a protocol to rapidly culture Saccharibacteria from dental plaque. This protocol will show how to filter a suspension of dental plaque through a 0.2 &#181;m filter, then concentrate the collected Saccharibacteria cells and infect a culture of host organisms. The resulting coculture can be passaged as any normal bacterial culture and infection is confirmed by PCR. The resulting binary culture can be maintained in the laboratory and used for future experiments. While contamination is a possibility, the binary culture can be purified by either further filtering and reinfection of host, or by plating the binary culture and screening for infected colonies. We hope this protocol can be expanded to other sample types and environments, leading to the cultivation of many more species in the CPR.

We demonstrate a method for isolating difficult-to-grow members of the novel bacterial phylum, Saccharibacteria, by filtering dental plaque and co-culturing with host bacteria.

הקמת תרבויות בינאריות יציבות של סקרייבקטריה סימביוטית מחלל הפה

Many bacterial species cannot be cultured in the laboratory using standard methods, posing a significant barrier to studying the majority of microbial ...

Biology

Measuring the Migration and Biofilm Formation of Various Bacteria

As microbes that thrive in the host body primarily have adaptive abilities that facilitate their survival, methods for classifying and identifying their nature would be beneficial in facilitating their characterization. Currently, most studies focus only on one specific characterization method; however, the isolation and identification of microorganisms from the host is a continuous process and usually requires several combinatorial characterization methods. Herein, we describe methods of identifying the microbial biofilm-forming ability, the microbial respiration state, and their chemotaxis behavior. The methods are used to identify five microbes, three of which were isolated from the bone tissue of Sprague-Dawley (SD) rats (Corynebacterium stationis, Staphylococcus cohnii subsp. urealyticus, and Enterococcus faecalis) and two from the American Type Culture Collection (ATCC)-Staphylococcus aureus ATCC 25923&#160;and Enterococcus faecalis V583. The microbes isolated from the SD rat bone tissue include the gram-positive microbes. These microbes have adapted to thrive under stressful and nutrient-limiting environments within the bone matrix. This article aims to provide the readers with the specific know-how of determining the nature and behavior of the isolated microbes within a laboratory setting.

<meta charset="utf8"></head><body>מדידת הנדידה והיווצרות הביופילם של חיידקים שונים

Here, we present a practical method for the isolation and identification of microorganisms within the host. In this way, the physicochemical properties of microorganisms and possible ways of living in the host are clearly described.

מדידת הנדידה והיווצרות הביופילם של חיידקים שונים

As microbes that thrive in the host body primarily have adaptive abilities that facilitate their survival, methods for classifying and identifying their ...

Anti-Infective Efficacy in Cystic Fibrosis with Aggregate Biofilm Models

Cystic Fibrosis Aggregate Biofilm Model to Study Infection-relevant Gene Expression

Standard pre-clinical testing methods for novel antimicrobial therapeutics used to treat chronic lung infections in people with cystic fibrosis do not reflect the environmental conditions of the hostile lung niche. Current reductionist testing conditions can lead to the progression of compounds along a preclinical pipeline without evidence of their activity under cystic fibrosis lung niche-appropriate conditions. Several approaches used to study traditional antimicrobials may not be suitable for antibiotic alternatives, including anti-virulence therapeutics like anti-quorum sensing agents and siderophore inhibitors. This protocol documents an aggregate biofilm model of Pseudomonas aeruginosa to compare resistance and infection-relevant gene expression in single-species and multi-species cultures (Staphylococcus aureus and Candida albicans), examining colony-forming unit (CFU) reductions and changes in gene expression, using algD as an exemplar. The model was optimized for small, static volumes of bacterial cultures to allow the study of novel compounds in the discovery phase of the drug development pipeline, where compound quantities may be limited. Single-species P. aeruginosa biofilms were formed in Synthetic Cystic Fibrosis Medium 2 (SCFM2) for 24 h before treatment with meropenem at different concentrations (1, 16, and 256 &#181;g/mL) for a further 24 h. Polymicrobial biofilms were established by growing Staphylococcus aureus and Candida albicans together in SCFM2, then inoculating with P. aeruginosa for an additional 24 h and treating with meropenem. The lack of a direct connection between compound efficacy measures in pre-clinical testing and clinical trial results has cast doubt on the applicability of current laboratory screening tools. This model allows us to understand the impact of relevant factors on P. aeruginosa gene expression, including genes contributing to resistance and virulence, thereby bridging this gap.

This study outlines a framework for developing an aggregate polymicrobial biofilm model and optimizing an RNA extraction protocol to assess Pseudomonas aeruginosa gene expression reflective of the cystic fibrosis lung environment. Applications include evaluating antimicrobial effects and studying antibiotic alternatives under conditions relevant to cystic fibrosis.

Standard pre-clinical testing methods for novel antimicrobial therapeutics used to treat chronic lung infections in people with cystic fibrosis do not ...

Visualization of Internalized Anaerobic Bacteria within Host Endothelial Cells

Source: Wunsch, C. M. et. al., <a href="https://app.jove.com/v/53408">Porphyromonas gingivalis as a Model Organism for Assessing Interaction of Anaerobic Bacteria with Host Cells.</a> J. Vis. Exp. (2015)
In this video, we demonstrate a procedure to visualize internalized Porphyromonas gingivalis, an anaerobic pathogenic bacterium, within human endothelial cells using confocal microscopy. The bacteria are stained with a fluorescent dye while the host endothelial cell actin cytoskeleton is labeled with a different fluorescent dye. The internalized Porphyromonas gingivalis inside endothelial cells are visualized using confocal microscopy.

gingivalis Porphyromonas כאורגניזם מודל להערכת אינטראקציה של חיידקים אנאירוביים עם תאי מארח

Summary

Explore More Videos

PLAYLIST