עבור המחקר הנוכחי, הניסויים בבעלי חיים אושרו על ידי הוועדה המוסדית לטיפול ושימוש בבעלי חיים של UCSF ונערכו בהתאם למדריך NIH לטיפול ושימוש בחיות מעבדה. עכברים בוגרים בני 8-12 שבועות C57BL/6 זכרים ונקבות (גזע ביתי) שימשו כאן.
1. הכנת מדגם DRG
<ol><li>מרדימים את העכברים עם 2.5% אברטין (ראו טבלת חומרים). להבטיח הרדמה נאותה על ידי חוסר תגובה לגירוי כואב. יש לערבב את בעלי החיים באופן טרנסקרדילי עם 1x מלוחים חוצצי פוספט (PBS) ואחריו 4% פורמלדהיד, כפי שתואר קודם לכן14,15,16.</li>
	<li>לנתח רקמת DRG מחוט השדרה, כפי שתואר קודם 14,15,16.</li>
	<li>לאחר תיקון DRGs מנותחים ב 4% פורמלדהיד במשך 3 שעות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>שים את DRGs ב 30% סוכרוז ב PBS ב 4 ° C במשך הלילה.</li>
	<li>הכנת טמפרטורת החיתוך האופטימלית של הבסיס (OCT)<ol><li>הוסיפו את תרכובת OCT (ראו טבלת חומרים) כדי לכסות את פני השטח העליונים של גוש האלומיניום וקפאו בטמפרטורה של -20°C למשך 5-10 דקות (איור 1A).</li>
		<li>חתכו את החלק העליון של ה-OCT באמצעות הקריוסטט (ראו טבלת חומרים) בעובי של 30 מיקרומטר עד שפני השטח שלו שטוחים כ-OCT הבסיס (איור 1B).</li>
		<li>סמנו בתחתית (מיקום השעה שש) של OCT הבסיס כדי לסמן את הכיוון שלו, לפני שאתם מורידים את בלוק האלומיניום מהקריוסטט (איור 1C).</li>
		<li>בשלבים הבאים, שמור את הסימון במיקום השעה שש כדי לשמור על אותו כיוון, מה שיכול להוביל להשגת חלקים נוספים של דגימת DRG. הערה: אם הכיוון אובד ודגימת DRG נחתכת בזווית שונה, לא ניתן לחתוך את דגימת DRG לחלוטין מלמעלה למטה, מה שישאיר חלק מהדגימות שהושארו בחוץ בבסיס OCT ומבוזבזות, מכיוון שה-OCT הבסיסי ייתקל בעת ניסיון לחתוך את דגימת DRG (איור 1C).</li>
	</ol></li>
	<li>ביצוע הטמעת OCT של DRGs<ol><li>יבש את רקמת DRG לפני לשים אותו על OCT.<ol><li>לפני הוספת DRG לבלוק, הקפד להסיר את תמיסת 30% סוכרוז / PBS סביב הדגימה.</li>
			<li>יבשו את דגימת ה-DRG על-ידי הנחתה על צלחת פטרי יבשה (איור 2A) והעברתה ממקום אחד לאחר פעמיים או שלוש עם פינצטה יבשה (איור 2B).</li>
			<li>יבשו את הפינצטה עם רקמה נטולת סיבים לפני שתזיזו דגימת DRG נוספת (איור 2C).</li>
		</ol></li>
		<li>הניחו את ה-DRG היבש על בסיס OCT.<ol><li>בעזרת פינצטה יבשה, הניחו את ה-DRG היבש על ה-OCT הבסיסי בשעה 12 (איור 1D).</li>
			<li>שמור לפחות 5 מ"מ בין הקצה העליון של DRG לבין הקצה העליון של הבסיס OCT.</li>
			<li>הניחו את החלק הגבי של DRG במצב השעה 12 ואת החלק הגחוני במצב השעה שש (איור 1D).</li>
		</ol></li>
		<li>הטמע את רקמת DRG עם OCT.<ol><li>הוסף OCT נוסף כדי לכסות את כל דגימת DRG בצורה עגולה או אליפטית, עם DRG במרכז (איור 1E).</li>
			<li>ודא שהקצה העליון של OCT מכסה את DRG בקצה העליון של OCT הבסיס (איור 1F), מכיוון שזה מקל על העברת החלק אל מגלשת הזכוכית (איור 3A). הערה: אם OCT הכיסוי נמצא באמצע OCT הבסיס, הקצה העליון של OCT הבסיס יחסום את שקופית הזכוכית כדי לאסוף את המקטע (איור 3B).</li>
			<li>הקפיאו את דגימת OCT ו-DRG של הכיסוי בטמפרטורה של -20°C למשך 5 דקות נוספות (איור 1G). אין לחתוך את ה-OCT סביב דגימת DRG.</li>
			<li>חותכים את החלק העליון של הכיסוי בעובי של 30 מיקרומטר עד שה-DRG גלוי.</li>
		</ol></li>
	</ol></li>
</ol>2. Cryosectioning של DRG
<ol><li>שנו את עובי מקטע הקריוסטט ל-12 מיקרומטר כדי לחתוך מקטעי DRG לשקופית (איור 1H).</li>
	<li>החזיקו את מקטע ה-OCT בתחתית בעזרת מברשת צבע קטנה מקוררת לטמפרטורה של -20°C. הערה: חשוב לא לחתוך את כל החלק לחלוטין, אלא להשאיר 1-3 מ"מ לא חתוכים (איור 1I).</li>
	<li>השתמשו בקצה של פינצטה בטמפרטורת החדר כדי לגעת בעדינות בתחתית (מיקום השעה שש) של החלק כך שהוא יידבק למשטח הפלטפורמה (איור 1J). פעולה זו מונעת מהמקטע להתעקל בחזרה בגליל, דבר המקשה על איסוף המקטע בשקופית. הערה: כאשר החלק התחתון של המקטע נדבק למשטח הרציף, והחלק העליון של המקטע עדיין מתחבר ל-OCT של הכיסוי, המקטע נמצא בצורה שטוחה (איור 1K), מה שמקל מאוד על איסוף המקטע בשקופית.</li>
	<li>קח שקופית זכוכית טעונה (ראה טבלת חומרים) והנח את השקופית באיטיות מעל המקטע. ברגע שהמקטע מתחיל להידבק לשקופית, משכו בעדינות את המגלשה לאחור (איור 1L).</li>
	<li>בצע את אותו התהליך כדי להעלות מקטעי DRG נוספים לשקופית מבלי לחפוף בין המקטעים (איור 1M). ודא שמקטע DRG חדש אינו ממוקם מעל OCT של מקטע DRG אחר (איור 4), מכיוון שמקטע כזה אינו יכול להישאר טוב בשקופית וניתן לשטוף אותו במהלך תהליך הצביעה האימונוכימית.</li>
</ol>3. צביעת ניסל של קטע DRG על מגלשת הזכוכית
<ol><li>שטפו את המקטעים במשך 10 דקות ב-PBS בתוספת 0.1% Triton X-10. לאחר מכן, שטפו את החלקים פעמיים עם PBS.</li>
	<li>יש למרוח על המגלשה כתם בקנ"מ 1:300 (ראו טבלת חומרים) ולדגור במשך 20 דקות בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>שטפו את החלק עם PBS בתוספת 0.1% Triton X-100. לאחר מכן, שטפו את החלקים פעמיים עם PBS במשך 5 דקות, ולאחר מכן במשך שעתיים בטמפרטורת החדר.</li>
	<li>יש למרוח 4′,6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) fluoromount-G (ראה טבלת חומרים) כדי לכסות את החלקים עם תלוש כיסוי.</li>
</ol>

עכבר שורש גבי גנגליון Cryosectioning

<ol>
	<li>Guan, Z., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Injured+sensory+neuron-derived+CSF1+induces+microglial+proliferation+and+DAP12-dependent+pain.">Injured sensory neuron-derived CSF1 induces microglial proliferation and DAP12-dependent pain.</a> Nature Neuroscience. 19 (1), 94-101 (2016).</li><li>Yu, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dorsal+root+ganglion+macrophages+contribute+to+both+the+initiation+and+persistence+of+neuropathic+pain.">Dorsal root ganglion macrophages contribute to both the initiation and persistence of neuropathic pain.</a> Nature Communications. 11 (1), 264 (2020).</li><li>Costa, F. A. L., Moreira Neto, F. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Satellite+glial+cells+in+sensory+ganglia:+its+role+in+pain.">Satellite glial cells in sensory ganglia: its role in pain.</a> Brazilian Journal of Anesthesiology. 65 (1), 73-81 (2015).</li><li>Noguri, T., Hatakeyama, D., Kitahashi, T., Oka, K., Ito, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Profile+of+dorsal+root+ganglion+neurons:+study+of+oxytocin+expression.">Profile of dorsal root ganglion neurons: study of oxytocin expression.</a> Molecular Brain. 15 (1), 44 (2022).</li><li>Su, P. P., Zhang, L., He, L., Zhao, N., Guan, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+role+of+neuro-immune+interactions+in+chronic+pain:+implications+for+clinical+practice.">The role of neuro-immune interactions in chronic pain: implications for clinical practice.</a> Journal of Pain Research. 15, 2223-2248 (2022).</li><li>Esposito, M. F., Malayil, R., Hanes, M., Deer, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unique+characteristics+of+the+dorsal+root+ganglion+as+a+target+for+neuromodulation.">Unique characteristics of the dorsal root ganglion as a target for neuromodulation.</a> Pain Medicine. 20, S23-S30 (2019).</li><li>Chen, X. J., Sun, Y. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Central+circuit+mechanisms+of+itch.">Central circuit mechanisms of itch.</a> Nature Communications. 11 (1), 3052 (2020).</li><li>Guan, Z., Hellman, J., Schumacher, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contemporary+views+on+inflammatory+pain+mechanisms:+TRPing+over+innate+and+microglial+pathways.">Contemporary views on inflammatory pain mechanisms: TRPing over innate and microglial pathways.</a> F1000Research. , (2016).</li><li>Boadas-Vaello, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neuroplasticity+of+ascending+and+descending+pathways+after+somatosensory+system+injury:+reviewing+knowledge+to+identify+neuropathic+pain+therapeutic+targets.">Neuroplasticity of ascending and descending pathways after somatosensory system injury: reviewing knowledge to identify neuropathic pain therapeutic targets.</a> Spinal Cord. 54 (5), 330-340 (2016).</li><li>Guha, D., Shamji, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+dorsal+root+ganglion+in+the+pathogenesis+of+chronic+neuropathic+pain.">The dorsal root ganglion in the pathogenesis of chronic neuropathic pain.</a> Neurosurgery. 63, 118-126 (2016).</li><li>Shorrock, H. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=UBA1/GARS-dependent+pathways+drive+sensory-motor+connectivity+defects+in+spinal+muscular+atrophy.">UBA1/GARS-dependent pathways drive sensory-motor connectivity defects in spinal muscular atrophy.</a> Brain. 141 (10), 2878-2894 (2018).</li><li>Sleigh, J. N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Trk+receptor+signaling+and+sensory+neuron+fate+are+perturbed+in+human+neuropathy+caused+by+Gars+mutations.">Trk receptor signaling and sensory neuron fate are perturbed in human neuropathy caused by Gars mutations.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences. 114 (16), E3324-E3333 (2017).</li><li>Rubio, M. A., Herrando-Grabulosa, M., Gaja-Capdevila, N., Vilches, J. J., Navarro, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+somatosensory+neuron+involvement+in+the+SOD1(G93A)+mouse+model.">Characterization of somatosensory neuron involvement in the SOD1(G93A) mouse model.</a> Scientific Reports. 12 (1), 7600 (2022).</li><li>Sleigh, J. N., West, S. J., Schiavo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+video+protocol+for+rapid+dissection+of+mouse+dorsal+root+ganglia+from+defined+spinal+levels.">A video protocol for rapid dissection of mouse dorsal root ganglia from defined spinal levels.</a> BMC Research Notes. 13 (1), 302 (2020).</li><li>Sleigh, J. N., Weir, G. A., Schiavo, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple,+step-by-step+dissection+protocol+for+the+rapid+isolation+of+mouse+dorsal+root+ganglia.">A simple, step-by-step dissection protocol for the rapid isolation of mouse dorsal root ganglia.</a> BMC Research Notes. 9, 82 (2016).</li><li>Perner, C., Sokol, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protocol+for+dissection+and+culture+of+murine+dorsal+root+ganglia+neurons+to+study+neuropeptide+release.">Protocol for dissection and culture of murine dorsal root ganglia neurons to study neuropeptide release.</a> STAR Protocols. 2 (1), 100333 (2021).</li><li>Haberberger, R. V., Barry, C., Matusica, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immortalized+dorsal+root+ganglion+neuron+cell+lines.">Immortalized dorsal root ganglion neuron cell lines.</a> Frontiers in Cellular Neuroscience. 14, 184 (2020).</li><li>Pokhilko, A., Nash, A., Cader, M. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Common+transcriptional+signatures+of+neuropathic+pain.">Common transcriptional signatures of neuropathic pain.</a> Pain. 161 (7), 1542-1554 (2020).</li><li>Martin, S. L., Reid, A. J., Verkhratsky, A., Magnaghi, V., Faroni, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Gene+expression+changes+in+dorsal+root+ganglia+following+peripheral+nerve+injury:+roles+in+inflammation,+cell+death+and+nociception.">Gene expression changes in dorsal root ganglia following peripheral nerve injury: roles in inflammation, cell death and nociception.</a> Neural Regeneration Research. 14 (6), 939-947 (2019).</li><li>Miller, R. J., Jung, H., Bhangoo, S. K., White, F. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cytokine+and+chemokine+regulation+of+sensory+neuron+function.">Cytokine and chemokine regulation of sensory neuron function.</a> Handbook of Experimental Pharmacology. (194), 417-449 (2009).</li><li>Neto, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Axonal+outgrowth,+neuropeptides+expression+and+receptors+tyrosine+kinase+phosphorylation+in+3D+organotypic+cultures+of+adult+dorsal+root+ganglia.">Axonal outgrowth, neuropeptides expression and receptors tyrosine kinase phosphorylation in 3D organotypic cultures of adult dorsal root ganglia.</a> PLoS One. 12 (7), e0181612 (2017).</li><li>Nascimento, A. I., Mar, F. M., Sousa, M. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+intriguing+nature+of+dorsal+root+ganglion+neurons:+Linking+structure+with+polarity+and+function.">The intriguing nature of dorsal root ganglion neurons: Linking structure with polarity and function.</a> Progress in Neurobiolology. 168, 86-103 (2018).</li><li>Middleton, S. J., Perez-Sanchez, J., Dawes, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+structure+of+sensory+afferent+compartments+in+health+and+disease.">The structure of sensory afferent compartments in health and disease.</a> Journal of Anatomy. 241 (5), 1186-1210 (2022).</li><li>Nguyen, M. Q., von Buchholtz, L. J., Reker, A. N., Ryba, N. J., Davidson, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Single-nucleus+transcriptomic+analysis+of+human+dorsal+root+ganglion+neurons.">Single-nucleus transcriptomic analysis of human dorsal root ganglion neurons.</a> eLife. 10, e71752 (2021).</li><li>Usoskin, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Unbiased+classification+of+sensory+neuron+types+by+large-scale+single-cell+RNA+sequencing.">Unbiased classification of sensory neuron types by large-scale single-cell RNA sequencing.</a> Nature Neuroscience. 18 (1), 145-153 (2015).</li><li>Hunt, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=DRGquant:+A+new+modular+AI-based+pipeline+for+3D+analysis+of+the+DRG.">DRGquant: A new modular AI-based pipeline for 3D analysis of the DRG.</a> Journal of Neuroscience Methods. 371, 109497 (2022).</li></ol>

למחברים אין מה לחשוף.

פרוטוקול זה מספק הליך קל שלב אחר שלב עבור חתך קריוסטט של DRG העכבר כדי להשיג קטעי DRG באיכות גבוהה על שקופיות בצורה אמינה. ישנם ארבעה שלבים קריטיים בפרוטוקול זה. ראשית, דגימת DRG והפינצטה חייבות להיות יבשות לפני העברת דגימת DRG לבסיס OCT. כל נוזל המקיף את דגימת DRG ייצור קליפת קרח סביבה, וכתוצאה מכך ק...

גנגליון השורש הגבי (DRG) מכיל את נוירוני החישה הראשוניים, את המקרופאגים הרקמתיים, ואת תאי הלוויין המקיפים את נוירוני החישה הראשוניים 1,2,3,4. זהו מבנה אנטומי מרכזי בעיבוד אותות מזיקים ומזיקים, וממלא תפקידים קריטיים בכאב, גירוד והפרעות עצביות היקפיות שונות 5,6,7,8,9,10,11,12,13. למרות שפותחו מספר שיטות לניתוח רקמת DRG מחוט השדרה של העכבר14,15,16, הקפאה של רקמת DRG נותרה מאתגרת מכיוון שרקמת DRG קטנה למדי, וקטעי קריוסטט של דגימות DRG נוטים להתעקם לגלילים, מה שמקשה על העברה נכונה של קטעי הקריוסטט לשקופיות זכוכית. עם זאת, קריוסקציה נכונה של רקמת DRG חיונית למחקרי אימונוהיסטוכימיה ולמבנה של נוירונים חושיים DRG 17,18,19,20,21,22,23. יתר על כן, מכיוון שתוצאות ריצוף RNA חד-תאי חשפו את ההטרוגניות יוצאת הדופן של נוירונים חושיים DRG הן בבני אדם24 והן בעכברים25, קריוסקציה נכונה של רקמת DRG היא קריטית לחקר התפקיד התפקודי של תאי DRG שונים במצבים פיזיולוגיים ופתולוגיים שונים.
למרות שטכניקת ניקוי הרקמות יושמה כדי לחקור את השחזור התלת-ממדי של DRG26 כטכניקה חלופית של הקפאת DRG, טכניקת ניקוי הרקמות גוזלת זמן ועבודה. לשם השוואה, קריוסקציה של DRG היא מהירה וקלה יחסית לביצוע, ולכן היא נותרה טכניקה מרכזית לאימונוהיסטוכימיה ומחקרי מבנה של DRG ואזורים אחרים של מערכת העצבים המרכזית. עם זאת, השגת קטעי קריוסטט איכותיים, שלמים ושטוחים על שקופיות זכוכית נותרה אתגר במחקר מדעי המוח בגלל גודל הדגימה הזעיר של רקמות, כמו DRG ואזורי מוח מסוימים, ואין מאמר המתאר את הפרוטוקול האופטימלי בשלב זה להקפאה של דגימות רקמות בגודל קטן, כגון DRG עכבר.
פרוטוקול זה מספק טכניקה קלה, שלב אחר שלב, לחתך קריוסטט של DRG העכבר כדי להשיג באופן אמין כמה שיותר קטעי DRG באיכות גבוהה בשקופיות עבור מחקרי DRG הבאים. בעוד שתוכננה במיוחד עבור דגימות DRG בהקפאה, טכניקה זו יכולה לשמש באופן פוטנציאלי להקפאת רקמות שונות אחרות עם גודל מדגם קטן.

<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always">
	<tbody>
		<tr>
			<td>Avertin</td>
			<td>Sigma-Aldrich</td>
			<td>T48402-25G</td>
			<td>Anesthetize animal</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Epredia&#160;Cryotome Cryostat Cryocassettes, 25 mm dia. Crosshatched</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>1910</td>
			<td>Hold the OCT section at the bottom&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Ergo Tweezers</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>S95310</td>
			<td>Using the end of a tweezer to gently touch the bottom (6 o&#8217;clock) of the section so that it sticks to the platform surface to prevent the section from curving back in a roll&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Fisherbrand&#160;Superfrost Plus Microscope Slides</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>1255015</td>
			<td>To collect the DRG section&#160;</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Marking pens</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>133794</td>
			<td>&#160;Mark the orientation of base OCT</td>
		</tr>
		<tr>
			<td>Scigen&#160;Tissue-Plus O.C.T. Compound</td>
			<td>Fisherbrand</td>
			<td>&#160;23730571</td>
			<td>Embedding medium for frozen tissue specimens to ensure optimal cutting temperature (O.C.T.).</td>
		</tr>
	</tbody>
</table>

a procedure for mouse dorsal root ganglion cryosectioning

קטעי קריוסטט איכותיים של גנגליון שורש גבי של עכבר (DRG) חיוניים לצביעת אימונוכימיה נכונה ולמחקרי RNAscope בחקר כאב דלקתי ונוירופתי, גירוד, כמו גם מצבים נוירולוגיים היקפיים אחרים. עם זאת, זה עדיין אתגר להשיג באופן עקבי קטעי קריוסטט איכותיים, שלמים ושטוחים על שקופיות זכוכית בגלל גודל הדגימה הזעיר של רקמת DRG. עד כה, אין מאמר המתאר פרוטוקול אופטימלי עבור קריוסקציה DRG. פרוטוקול זה מציג שיטה שלב אחר שלב לפתרון הקשיים הנפוצים הקשורים להקפאת DRG. המאמר המוצג מסביר כיצד להסיר את הנוזל שמסביב מדגימות רקמת DRG, למקם את קטעי DRG על השקופית הפונים לאותו כיוון, ולשטח את החלקים במגלשת הזכוכית מבלי להתעקל כלפי מעלה. למרות פרוטוקול זה פותח עבור cryosectioning דגימות DRG, זה יכול להיות מיושם עבור cryosectioning של רקמות רבות אחרות עם גודל מדגם קטן.

The dorsal root ganglion (DRG) contains the primary sensory neurons, the tissue macrophages, and the satellite cells that surround the primary sensory neurons1,2,3,4. It is a key anatomic structure in processing innocuous and noxious signals, and plays critical roles in pain, itch, and various peripheral nerve disorders5,6,7,8,9,10,11,12,13. Although several methods have been developed to dissect DRG tissue from the mouse spinal cord14,15,16, cryosectioning of the DRG tissue remains challenging as the DRG tissue is quite small, and cryostat sections of DRG samples tend to curve into rolls, making it difficult to properly transfer the cryostat sections onto glass slides. However, proper cryosectioning of the DRG tissue is crucial for immunohistochemistry studies and the structure of DRG sensory neurons17,18,19,20,21,22,23. Moreover, as single-cell RNA sequencing results have revealed the remarkable heterogeneity of DRG sensory neurons in both humans24 and mice25, proper cryosectioning of DRG tissue is critical for investigating the functional role of different DRG cells in various physiological and pathological conditions.
Although the tissue-clearing technique has been applied to investigate the 3D reconstruction of the DRG26 as an alternative technique of cryosectioning the DRG, the tissue-clearing technique is time- and labor-consuming. In comparison, cryosectioning of the DRG is quick and relatively easy to perform, and thus it remains to be a key technique for immunohistochemistry and structure studies of the DRG and other regions of the central nervous system. However, obtaining high-quality, intact, and flat cryostat sections onto glass slides remains to be a challenge in neuroscience research because of the tiny sample size of tissues, like the DRG and certain brain regions, and there is no article describing the optimal protocol at this point for cryosectioning small-sized tissue samples, such as mouse DRGs.
This protocol provides an easy, step-by-step technique for cryostat sectioning of the mouse DRG to reliably obtain as many high-quality DRG sections on the slides for subsequent DRG studies. While specifically designed for cryosectioning DRG samples, this technique can potentially be used for cryosectioning various other tissues with a small sample size.

מחבר זרקור: הליך עבור עכבר שורש גבי גנגליון Cryosectioning  

הליך עבור עכבר שורש גבי גנגליון Cryosectioning

It remains a challenge to consistently obtain high-quality, intact, and flat mouse dorsal root ganglion cryostat sections. The research aims to answer how to acquire ideal mouse dorsal root ganglion cryostat section. This protocol provides an easy step-by-step technique for cryostat section of the mouse DRG to high quality, intact, and flat mouse DRG cryostat sections.This presented article explains how to remove surrounding liquid from the mouse DRG sample tissue, placing the DRG sections on the slides facing the same orientation, and flatten the DRG sections without curving up. One major challenge is that the OCT sections of mouse DRG tend to curve into a roll, making it difficult to place onto the glass slide. It is also challenging to acquire sufficient sections from one sample due to the small size of the mouse DRG.

המחקר הנוכחי אסף כ -16 קטעי DRG רציפים ואיכותיים מעכבר אחד L4 DRG. הקטעים שהתקבלו היו ללא כל עיוות. איור 1 מתאר את ההליך שלב אחר שלב עבור ההקפאה. סילוק נוזלים עודפים מחלקי הרקמה מוצג באיור 2. תהליך הטמעת OCT של הרקמות מודגש באיור 3. איור 4</stro...

Watch this Scientific Journal Video about A Procedure for Mouse Dorsal Root Ganglion Cryosectioning at JoVE.com

מוצג כאן הפיתוח לרכישה עקבית של קטעי קריוסטט גנגליון שורש גבי באיכות גבוהה.

High-quality mouse dorsal root ganglion (DRG) cryostat sections are crucial for proper immunochemistry staining and RNAscope studies in the research of ...

זה נשאר אתגר להשיג באופן עקבי באיכות גבוהה, שלם, שטוח עכבר שורש גנגליון גנגליון קריוסטט קטעי קריוסטט. מטרת המחקר היא לענות על השאלה כיצד לרכוש עכבר אידיאלי גנגליון שורש גבי cryostat חתך. פרוטוקול זה מספק טכניקה קלה שלב אחר שלב עבור חתך קריוסטט של DRG העכבר לקטעי DRG עכבר באיכות גבוהה, שלמים ושטוחים.מאמר מוצג זה מסביר כיצד להסיר את הנוזל שמסביב מרקמת דגימת DRG של העכבר, למקם את קטעי DRG על השקופיות הפונות לאותו כיוון, ולשטח את קטעי DRG מבלי להתעקל כלפי מעלה. אתגר מרכזי אחד הוא שקטעי OCT של DRG עכבר נוטים להתעקם לגליל, מה שמקשה על הצבתו על מגלשת הזכוכית. זה גם מאתגר לרכוש מספיק חלקים ממדגם אחד בשל גודלו הקטן של DRG העכבר.

a-procedure-for-mouse-dorsal-root-ganglion-cryosectioning

Research

JoVE Journal

Neuroscience

A Procedure for Mouse Dorsal Root Ganglion Cryosectioning

4.1K Views.  Capital Medical University. זה נשאר אתגר להשיג באופן עקבי באיכות גבוהה, שלם, שטוח עכבר שורש גנגליון גנגליון קריוסטט קטעי קריוסטט. מטרת המחקר היא לענות על השאלה כיצד לרכוש עכבר אידיאלי גנגליון שורש גבי cryostat חתך. פרוטוקול זה מספק טכניקה קלה שלב אחר שלב עבור חתך קריוסטט של DRG העכבר לקטעי DRG עכבר באיכות גבו?...

Video: מחבר זרקור: הליך עבור עכבר שורש גבי גנגליון Cryosectioning  

High-quality mouse dorsal root ganglion (DRG) cryostat sections are crucial for proper immunochemistry staining and RNAscope studies in the research of inflammatory and neuropathic pain, itch, as well as other peripheral neurological conditions. However, it remains a challenge to consistently obtain high-quality, intact, and flat cryostat sections onto glass slides because of the tiny sample size of the DRG tissue. So far, there is no article describing an optimal protocol for DRG cryosectioning. This protocol presents a step-by-step method to resolve the frequently encountered difficulties associated with DRG cryosectioning. The presented article explains how to remove the surrounding liquid from the DRG tissue samples, place the DRG sections on the slide facing the same orientation, and flatten the sections on the glass slide without curving up. Although this protocol has been developed for cryosectioning the DRG samples, it can be applied for the cryosectioning of many other tissues with a small sample size.

Presented here is the development for consistently acquiring high-quality dorsal root ganglion cryostat sections.

Dorsal Root Ganglion (DRG) Sample Preparation for Cryosectioning

Begin by post-fixing the DRG tissue dissected from the spinal cord of the anesthetized mouse in 4%formaldehyde for three hours at room temperature. Then, incubate the tissue in 30%sucrose in PBS at four degrees Celsius overnight. Next, prepare the base OCT by adding the OCT compound and covering the top surface of the aluminum block.Freeze the covered aluminum block at minus 20 degrees Celsius for five to 10 minutes. Cut off the top of the OCT at 30-micrometer thickness using the cryostat, until its surface is as flat as the base OCT. Mark the bottom of the base OCT at the 6:00 position, before taking the aluminum block off the cryostat.To perform OCT embedment of DRGs, dry the DRG tissue by placing it on a dry Petri dish and moving it from one location to another two or three times with the dry tweezers. Then, place the dry DRG onto the OCT base at the 12:00 position, using dry tweezers. Ensure to keep at least five millimeters distance between the upper-edge of the DRG and the upper-edge of the base OCT, with the dorsal part at the 12:00 position, and the ventral part at the 6:00 position.Next, add OCT in a round or oval shape to embed the entire DRG tissue with the DRG in the center. Freeze the cover OCT and DRG sample at minus 20 degrees Celsius for five minutes. Once done, cut off the top of the cover OCT at a 30-micrometer thickness until the DRG is visible.

גנגליון שורש גבי (DRG) הכנת דגימה עבור Cryosectioning

Cryosectioning of the Dorsal Root Ganglion (DRG)

Begin the cryosectioning by holding the optimal cutting temperature DRG section at the bottom, using a small paint brush, pre-chilled at 20 degrees Celsius. Gently touch the bottom of the section using the end of a room temperature tweezer so that it sticks to the platform surface. Next, slowly place a charged glass slide over the section.As soon as the section sticks to the slide, gently pull the slide backward. Follow the same process to get more DRG sections onto the slide without overlapping the sections. The proper placement of the DRG sections on the glass slides is seen where the tissues are not overlapping the DRG section and the OCT of other DRG sections.The confocal fluorescence microscopy image demonstrated the quality of the DRG sections obtained with this protocol. With this technique, the immunohistochemistry studies of DRG can be performed using different antibodies.