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Descriviamo l'ingegneria di una nuova T7 RNA polimerasi legata al DNA per regolare le reazioni di trascrizione in vitro. Discutiamo i passaggi per la sintesi e la caratterizzazione proteica, convalidiamo la regolazione trascrizionale proof-of-concept e discutiamo le sue applicazioni nel calcolo molecolare, nella diagnostica e nell'elaborazione delle informazioni molecolari.
La nanotecnologia del DNA consente l'autoassemblaggio programmabile degli acidi nucleici in forme e dinamiche prescritte dall'utente per diverse applicazioni. Questo lavoro dimostra che i concetti della nanotecnologia del DNA possono essere utilizzati per programmare l'attività enzimatica della T7 RNA polimerasi derivata dai fagi (RNAP) e costruire reti di regolazione genica sintetica scalabili. In primo luogo, un RNAP T7 legato all'oligonucleotide viene ingegnerizzato tramite l'espressione di un RNAP con tag SNAP N-terminale e il successivo accoppiamento chimico del tag SNAP con un oligonucleotide modificato con benzilguanina (BG). Successivamente, lo spostamento del filamento di acido nucleico viene utilizzato per programmare la trascrizione della polimerasi su richiesta. Inoltre, gli assemblaggi di acidi nucleici ausiliari possono essere utilizzati come "fattori di trascrizione artificiale" per regolare le interazioni tra l'RNAP T7 programmato dal DNA con i suoi modelli di DNA. Questo meccanismo di regolazione della trascrizione in vitro può implementare una varietà di comportamenti circuitali come la logica digitale, il feedback, la cascata e il multiplexing. La componibilità di questa architettura di regolazione genica facilita l'astrazione, la standardizzazione e il ridimensionamento del design. Queste caratteristiche consentiranno la prototipazione rapida di dispositivi genetici in vitro per applicazioni quali il biorilevamento, il rilevamento di malattie e l'archiviazione dei dati.
Il calcolo del DNA utilizza un insieme di oligonucleotidi progettati come mezzo per il calcolo. Questi oligonucleotidi sono programmati con sequenze per assemblarsi dinamicamente secondo la logica specificata dall'utente e rispondere a specifici input di acido nucleico. Negli studi proof-of-concept, l'output del calcolo consiste tipicamente in un insieme di oligonucleotidi marcati fluorescentemente che possono essere rilevati tramite elettroforesi su gel o lettori di piastre di fluorescenza. Negli ultimi 30 anni sono stati dimostrati circuiti computazionali del DNA sempre più complessi, come varie cascate di logica digitale, reti di reazioni chimiche e reti neurali
1. Preparazione del buffer
NOTA: la preparazione del tampone di purificazione delle proteine può avvenire in qualsiasi giorno; qui, è stato fatto prima di iniziare gli esperimenti.
Figura 5: Analisi SDS-PAGE dell'espressione di SNAP T7 RNAP e test di trascrizione in vitro. (A) Analisi di purificazione della proteina SNAP T7 RNAP, peso molecolare SNAP T7 RNAP: 119.4kDa. FT = flusso dalla colonna, W1 = frazioni di eluizione del tampone di lavaggio contenente impurità, E1-3 = frazioni di eluizione contenenti prodotto puri.......
Questo studio dimostra un approccio ispirato alla nanotecnologia del DNA per controllare l'attività della T7 RNA polimerasi accoppiando covalentemente un RNAP T7 ricombinante N-terminale con tag SNAP con un oligonucleotide funzionalizzato BG, che è stato successivamente utilizzato per programmare reazioni TMDSD. In base alla progettazione, lo SNAP-tag è stato posizionato al N-terminus della polimerasi, poiché il C-terminus del wild-type T7 RNAP è sepolto all'interno del nucleo della struttura proteica e stabilisce i.......
Non ci sono interessi finanziari concorrenti da dichiarare da parte di nessuno degli autori.
L.Y.T.C riconosce il generoso sostegno del New Frontiers in Research Fund-Exploration (NFRF-E), del Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) Discovery Grant e della Medicine by Design Initiative dell'Università di Toronto, che riceve finanziamenti dal Canada First Research Excellence Fund (CFREF).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
0.5% polysorbate 20 (TWEEN 20) | BioShop | TWN510.5 | |
0.5M ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Bio Basic | SD8135 | |
10 mM sodium phosphate buffer (pH 7) | Bio Basic | PD0435 | Tablets used to make 10 mM buffer |
10% ammonium persulfate (APS) | Sigma Aldrich | A3678-100G | |
100 kDa Amicon Ultra-15 Centrifugal Filter Unit | Fisher Scientific | UFC910008 | |
100% acetone | Fisher Chemical | A18P4 | |
100% ethanol (EtOH) | House Brand | 39752-P016-EAAN | |
10x in vitro transcription (IVT) buffer | New England Biolabs | B9012 | |
10x Tris-Borate-EDTA (TBE) buffer | Bio Basic | A0026 | |
1M Isopropyl β- d-1-thiogalactopyranoside (IPTG) | Sigma Aldrich | I5502-1G | |
1M sodium bicarbonate buffer | Sigma Aldrich | S6014-500G | |
1M Tris(hydroxymethyl)aminomethane (Tris) | Sigma Aldrich | 648311-1KG | |
1X Tris-EDTA (TE) buffer | ThermoFisher | 12090015 | |
2M imidazole | Sigma Aldrich | 56750-100G | |
2-mercaptoethanol (BME) | Sigma Aldrich | M3148 | |
3M sodium acetate | Bio Basic | SRB1611 | |
40% acrylamide (19:1) | Bio Basic | A00062 | |
4x LDS protein sample loading buffer | Fisher Scientific | NP0007 | |
5M sodium chloride (NaCl) | Bio Basic | DB0483 | |
5mM dithiothreitol (DTT) | Sigma Aldrich | 43815-1G | |
6x gel loading dye | New England Biolabs | B7024S | |
agarose B powder | Bio Basic | AB0014 | |
BG-GLA-NHS | New England Biolabs | S9151S | |
BL21 competent E. coli | Addgene | C2530H | |
BLUeye prestained protein ladder | FroggaBio | PM007-0500 | |
bromophenol blue | Bio Basic | BDB0001 | |
coomassie blue (SimplyBlue SafeStain) | ThermoFisher | LC6060 | |
cyanine dye (SYBR Gold nucleic acid gel stain) | Fisher Scientific | S11494 | |
cyanine dye (SYBR Safe nucleic acid gel stain) | Fisher Scientific | S33102 | |
dry dimethyl sulfoxide (DMSO) | Fisher Scientific | D12345 | |
formamide | Sigma Aldrich | F9037-100ML | |
glycerol | Bio Basic | GB0232 | |
kanamycin sulfate | BioShop | KAN201.5 | |
lysogeny broth | Sigma Aldrich | L2542-500ML | |
malachite green oxalate | Sigma Aldrich | 2437-29-8 | |
N,N,N'N'-Tetramethylethane-1,2-diamine (TEMED) | Sigma Aldrich | T9281-25ML | |
NuPAGE MES SDS running buffer (20x) | Fisher Scientific | LSNP0002 | |
NuPAGE Novex 4-12% Bis-Tris gel 1.0 mm 12-well | Life Technologies | NP0322BOX | |
oligonucleotide (cage antisense) | IDT | N/A | TATAGTGAGTCGTATTAATTTG |
oligonucleotide (cage sense) | IDT | N/A | TCAGTCACCTATCTGTTTCAAA TTAATACGACTCACTATA |
oligonucleotide (malachite green aptamer antisense) | IDT | N/A | GGATCCATTCGTTACCTGGCT CTCGCCAGTCGGGATCCTATA GTGAGTCGTATTACAGTTCCAT TATCGCCGTAGTTGGTGTACT |
oligonucleotide (malachite green aptamer sense) | IDT | N/A | TAATACGACTCACTATAGGATC CCGACTGGCGAGAGCCAGGT AACGAATGGATCC |
oligonucleotide (Transcription Factor A) | IDT | N/A | AGTACACCAACTACGAGTGAG |
oligonucleotide (Transcription Factor B) | IDT | N/A | TCAGTCACCTATCTGGCGATAA TGGAACTG |
oligonucleotide with 3’ Amine modification (tether) | IDT | N/A | GCTACTCACTCAGATAGGTGAC TGA/3AmMO/ |
Pierce strong ion exchange spin columns | Fisher Scientific | 90008 | |
plasmid encoding SNAP T7 RNAP and kanamycin resistance genes | Genscript | N/A | custom gene insert |
protein purification column (HisPur Ni-NTA spin column) | Fisher Scientific | 88226 | |
rNTP mix | New England Biolabs | N0466S | |
Roche mini quick DNA spin column | Sigma Aldrich | 11814419001 | |
Triton X-100 | Sigma Aldrich | T8787-100ML | |
Ultra Low Range DNA ladder | Fisher Scientific | 10597012 | |
urea | BioShop | URE001.1 |
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