Inizia rivestendo i vetrini coprioggetti da 35 millimetri con Poly-D-Lisina o PDL. Per fare ciò, erogare una gocciolina da 0,5 microlitri di PDL al centro di un piatto di vetrino coprioggetti. Utilizzando una pipetta graduata da 10 microlitri, spalmare la goccia PDL sul vetrino coprioggetto.
Lasciare asciugare il vetrino coprioggetto rivestito a 37 gradi Celsius per 10 minuti. Per l'imaging dello sperma appena raccolto da un modello murino che esprime AcroSensE, aggiungere 80 microlitri della sospensione spermatica preparata al centro del vetrino coprioggetto rivestito in PDL. Quindi, aggiungi lentamente tre millilitri di terreno di base Whitten integrato e modificato preriscaldato a 37 gradi Celsius al piatto.
Procedere all'esecuzione dell'imaging utilizzando una combinazione di un microscopio con la configurazione di somministrazione di stimolanti a singola cellula. Per prima cosa, montare la capsula contenente lo sperma sul microscopio. Quindi, utilizzando il micromanipolatore, posizionare la punta capillare del sistema di rilascio dello stimolante a circa 100 micron di lato e da cinque a 10 micron sopra il piano della cellula di interesse.
Posizionare il capillare entro 100 micron dalla testa dello spermatozoo. Quindi, avviare la sequenza di imaging sul microscopio. Immagine di spermatozoi a una frequenza di fotogrammi elevata, preferibilmente superiore a 10 fotogrammi al secondo.
10 secondi dopo aver avviato l'acquisizione dell'immagine, attivare il sistema di rilascio a cellula singola per erogare un soffio di stimolante di 10 secondi. Continuare a catturare immagini di cellule per una durata di 10-15 minuti. In modo simile, è possibile creare l'immagine di più celle da una singola parabola in base alle posizioni mostrate sullo schermo.