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要約

現在の記事は、効率的効果的にフローサイトメトリー分析に利用することができる脳や脊髄の組織から単核細胞を分離するために迅速なプロトコルを記述します。

要約

感染症、外傷、自己免疫疾患または神経変性における中枢神経系(CNS)に浸潤する免疫細胞の単離は、しばしばそれらの表現型とエフェクター機能を定義する必要があります。組織化学的アプローチは、浸潤細胞の位置を決定するために、病理関連したCNSを分析するための手段です。しかし、現場組織化学および免疫蛍光染色の技法は、特定の組織に免疫細胞のサブタイプを特徴付けるために一度に使用できる抗体の数によって制限されています。したがって、フローサイトメトリーによる免疫フェノタイピングと一緒に組織学的なアプローチは、完全にローカルのCNS浸潤の組成を特徴づけるために不可欠です。このプロトコルは、不連続パーコール勾配以上のCNSの細胞懸濁液の分離に基づいています。現在の記事は、効率的効果的にフローサイトメトリーにより、単一のサンプル中の様々な免疫細胞集団の同定に利用することができる脳や脊髄の組織から単核細胞を単離するために迅速なプロトコルを記述します。

プロトコル

試薬の調製

CAがない場合10X HBSSの一部でパーコールの9部を混合することにより、株式等張パーコール(SIP)、脳あたり4 mlを、準備+ +およびMg + +。

15 mlのポリプロピレンコニカルチューブに分注し、脳当たりのCa + +およびMg + +、2 mlのなく1X HBSSで70%でSIPを準備します。

注:これは、パーコールは室温で使用されることをお勧めします、風邪を使用する場合、細胞が塊に傾向があると細胞分離が少なく効率的です。

組織の収集と均質化

氷冷した1 × HBSSで左心室経由でマウスと浸み込ませるの麻酔。脳と脊髄を摘出し、すべてのマウスを屠殺されるまで、フェノールレッドを含まないRPMIで維持する。

RPMI 3mlを含む7または15ミリリットルダウンスホモジナイザーの場所の組織は、優しく、さらに組織を解離するために締め付けフィッティング乳棒(Bサイズ)に続く、緩い乳棒(サイズ)で細胞懸濁液を作る。 RPMIで7 mlに細胞懸濁液の体積を完了します。

勾配は、セットアップ

最終的に30%のSIPを作るために細胞懸濁液に、SIPの3 mlを加え

徐々に層の70%SIPの上に10 mLの細胞懸濁液。これはプロシージャの中で最も重要なステップであり、70%、30%溶液の混合回避重力モードで設定されたピペットエイドを使用してください。非常に明確なフラットラインは70%-30%の接合部で表示する必要があります。

500G 18℃で30分間遠心操作する相間が乱されないように遠心分離機が最小限、あるいはまったくブレーキで停止することを確認してください。

転送ピペットを用いて、軽くチューブの上部からごみの層を除去し、1X HBSS 8mlを含むきれいなコニカルチューブに70%-30%の相間の2.0〜3.0ミリリットルを収集する。相間を含むパーコールは、3倍程度希釈されていることを確認し、18で500Gで反転しcentrifugre 7分で数回混ぜる℃に

懸濁します細胞染色緩衝液1mlでペレットとは、1.5 mlチューブに移すと4℃で10,000 G 1分間℃でマイクロ遠心機を使用して、1つより多くの時間を洗う

抗体染色

ヤギCD16/CD32を精製した50μlに再懸濁し、ペレットは、Fc結合部位をブロックするために細胞の染色バッファーで1:200に希釈した。 10分間氷の上にインキュベートする。血球計算板を用いて細胞を数える。

氷上で30分間抗体のカクテルミックスとインキュベート(50μl)を加えます。各抗体は、最初に最適な希釈を評価するために滴定する必要があります。レーザーと、特定のフローサイトメーターのフィルタ設定の機能に従って、選択した適切な蛍光色素の組み合わせを使用してください。

細胞の染色バッファ100〜200μlの細胞の染色バッファー、再懸濁し、ペレットに細胞を洗浄し、血球計算器で直ちに分析し、あるいは細胞は4℃のPBSで調製した2%パラホルムアルデヒド(PFA)に再懸濁し、一晩保存することができます° C 。

代表的な結果:

グラデーションを回転した後、70%-30%の相間には定義されている白いハロを持っているはず、と素朴なマウスから回収された細胞の定量は、マウスにつき3〜5 × 10 5細胞(脳プラス脊髄)でなければなりません。炎症を起こした脳は中枢神経系の侮辱や疾患モデル(図1)によって炎症細胞数の範囲かもしれない。

figure-protocol-2007
図1ピーク疾患におけるナイーブおよびEAE -脳から単核細胞の単離。脳細胞の懸濁液は、不連続70%/ 30%パーコール勾配を介して分離した。染色した細胞を氷上で30分間抗CD45抗体が続くのFc -ブロックとインキュベートした。細胞は、細胞の染色バッファーでリンスし、そしてLSR - IIの2%PFA買収前に修正されました。 CD45の強度は、3つの異なった集団が可視化するY軸、に測定されます。 CD45 ハイテク浸潤細胞の免疫表現型のさらなる特徴は、追加の抗体を使用して実装し、続いてフローサイトメトリーによって分析されます。

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ディスカッション

正常および炎症のマウス組織から中枢神経系の白血球の細胞表面マーカーの分析は、1月3日数十年にわたって利用されている。分離プロトコルは密度遠心4によるミクログリアと白血球の分離に基づいています。ここでは、不連続パーコール勾配を用いて、CNSの白血球を分離するの迅速かつ効果的な方法を説明します。細胞の単離の後、次のような - ではなく、CD45に限られた?...

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開示事項

利害の衝突は宣言されません。

謝辞

この作品は、全国多発性硬化症協会(TA AECへの3021 - A1 / T)とテキサス大学サンアントニオ校によってサポートされていました。

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資料

組織の均質化とグラデーション

  • パーコール(Amersham社)
  • カルシウムとマグネシウムのない10Xハンクス平衡塩溶液、(ギブコ)
  • フェノールレッドを含まないRPMI培地1640(Gibco社)
  • 7 - mlまたは15 mlのダウンスティッシュグラインダ(VWR)

フローサイトメトリー

  • 細胞の染色バッファー(Biolegend)
  • 精製ラット抗マウスCD16/CD32(マウスBD Fcをブロック)、BD Pharmingen社
  • 血球計(フィッシャー)
  • 抗マウスCD45(クローン30 - F11)、CD4(クローンRM4 - 5)、CD19(クローン6D5)、BioLegend
  • 10Xリン酸塩はカルシウムとマグネシウムなしで、緩衝生理食塩水(サーモサイエンティフィック)
  • パラホルムアルデヒド(シグマアルドリッチ)
  • LSR II(BD Biosciences社)を使用して実行フローサイトメトリー分析

参考文献

  1. Sedgwick, J. D. Isolation and direct characterization of resident microglial cells from the normal and inflamed central nervous system. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88, 7438-7442 (1991).
  2. Ponomarev, E. D., Shriver, L. P., Maresz, K., Dittel, B. N. Microglial cell activation and proliferation precedes the onset of CNS autoimmunity. J. Neurosci. Res. 81, 374-389 (2005).
  3. Ford, A. L., Goodsall, A. L., Hickey, W. F., Sedgwick, J. D. Normal adult ramified microglia separated from other central nervous system macrophages by flow cytometric sorting. Phenotypic differences defined and direct ex vivo antigen presentation to myelin basic protein-reactive CD4+ T cells compared. J Immunol. 154, 4309-4321 (1995).
  4. Cardona, A. E., Huang, D., Sasse, M. E., Ransohoff, R. M. Isolation of murine microglial cells for RNA analysis or flow cytometry. Nat. Protoc. 1, 1947-1951 (2006).
  5. Juedes, A. E., Ruddle, N. H. Resident and infiltrating central nervous system APCs regulate the emergence and resolution of experimental autoimmune encephalomyelitis. J. Immunol. 166, 5168-5175 (2001).
  6. Prinz, M., Priller, J. Tickets to the brain: Role of CCR2 and CX(3)CR1 in myeloid cell entry in the CNS. J Neuroimmunol. , (2010).
  7. Mildner, A. Microglia in the adult brain arise from Ly-6ChiCCR2+ monocytes only under defined host conditions. Nat. Neurosci. 10, 1544-1553 (2007).
  8. Djukic, M. Circulating monocytes engraft in the brain, differentiate into microglia and contribute to the pathology following meningitis in mice. Brain. 129, 2394-2403 (2006).

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