Adenovirally形質分離されたげっ歯類膵島におけるレプリケーションおよびβ細胞機能を評価する

要約

このプロトコルは1つが糖尿病の治療のための潜在的な治療標的を見つけるために機能的なβ細胞量を調節する因子を同定することができます。プロトコルは、アデノウイルスによる遺伝子発現の操作後に膵島の複製と分離されたラット膵島のβ細胞機能を評価するための効率的な方法で構成されています。

要約

グルコース恒常性は、主にそれぞれ、膵臓のβとα細胞から分泌され、内分泌ホルモンのインスリンとグルカゴンによって制御されます。機能β細胞塊を解剖ベータ細胞塊など栄養素の負荷に対応するβ細胞の能力によって決定されます。機能β細胞量の減少は、糖尿病^1-3の両方の主要な形態の中心となります。 1型糖尿病の自己免疫攻撃から減少し、機能β細胞塊の結果に​​対し、2型糖尿病では、この減少は、適切なインスリンを分泌するβ細胞の無力とメカニズムの幹部からベータ細胞の破壊の両方から開発しています。従って、機能β細胞量を復元するための努力は、より良い治療と糖尿病の潜在的な治療に最も重要なことです。

努力は複製を刺激し、β細胞の機能を強化するために悪用される可能性が分子経路を特定するために進行中です。理想的には、治療の目標は、β細胞の増殖と機能の両方を向上させるだろう。しかしおそらくもっと重要なβ細胞の増殖を刺激する戦略は、β細胞機能（例えば、いくつかの遺伝子と同様に）、およびその逆を損なうことの代償かどうかを識別することである。

単離したラット膵島 ​​における標的遺伝子の発現を体系的に抑制または過剰発現することによって、人が増えて、機能のベータ細胞塊^4-6の潜在的な治療標的を識別することができます。アデノウイルスベクターは、単離されたラット膵島^​​4,7-15で効率的に過剰発現やノックダウンの蛋白質に用いることができる。ここでは、アデノウイルス形質導入を利用して遺伝子発現を操作し、膵島の複製と分離されたラット膵島 ​​のβ細胞機能（ 図1）を評価する手法を提案する。このメソッドは、β細胞の複製または関数^{5,6,8,9,16,17を}調節^する新たな標的を識別するために以前に使用されています。

プロトコル

1。ラット膵島のアデノウイルス形質導入と培養

1. 必要な数にメディアの2ミリリットル（8 mMグルコース、10％ウシ胎児血清、50ユニット/ mlペニシリン、50μg/ mlのストレプトマイシンを含むRPMI 1640培地）を添加することにより、6ウェル非組織培養コーティングしたプレートを準備します。井戸。無ウイルスの制御のためのそれぞれ、ウイルス制御（例えば、GFPを発現するアデノウイルス）、および実験群 - 例えば、典型的な実験は、3つのウエルが必要な場合があります。
2. 少なくとも30分間組織培養インキュベーターにそれを置くことによって37℃にプレートを温める。
3. すぐに6ウェル非組織培養コーティングしたプレートの各ウェルに、ラットの膵島分離^18,19、場所100から200島を後に。シックス膵島インスリン分泌とチミジン取り込みアッセイに必要とされる。残りの島は、遺伝子発現の研究​​や免疫ブロット法のためのタンパク質分離のためのRNAの分離に使用することができます。

[注：この時点から、バイオハザード物質の取扱い、使用、廃棄のための制度のプロトコルに従ってください。]

4. 優しくスワールウェルの中央に島をもたらすプレート。
5. 皿の中央にある小島に直接アデノウイルスをピペット。感染症の100から500多重度（MOI、ウイルスのプラーク形成単位に標的細胞の比）を使用します。
6. 5分間島の残りをしましょう​​。
7. 組織培養インキュベーター（37℃、5％CO _2）のプレートを置きます。
8. 24時間後、優しくスワールプレートのウェルの中心に島を持ってきても新鮮な培地を含む新しいP200にマイクロピペットを用いて膵島を転送することができます。島がプレートに取り付けられなくなった場合、それらは静かにピペットチップで外れすることができます。

[注：適切な伝達すると効率を確認するには島はその後、膵島コアにアデノウイルスの侵入を確認するには、共焦点顕微鏡を介して撮像することができるようにCY、コントロールウイルスを発現するGFPの使用は、有益である。]

9. 最適化のパイロット研究から実験の所望のタイミングに応じて追加の24〜72時間の培養では、膵島、。たとえば、増殖反応の誘導は、目的の遺伝子の24〜72時間またはノックダウンに至るまで時間が48時間または72時間が必要になる場合がありますが必要な場合があります。毎日新鮮なメディアへの膵島を転送します。
10. 実験の最後の24時間、文化1μCiの[メチル- ³ H] -thymidine/mlメディア（一般的には1μlのチミジン/ mlのメディア）を含むメディアの小島。

[注：この時点から、放射性物質の取扱い、使用、廃棄のための制度のプロトコルに従ってください。]

2。インスリン分泌アッセイ

1. 準備する分泌アッセイバッファー（SAB）10Xストック溶液（1.14 MのNaCl、47 mMの塩化カリウム、12mMのKH ₂ PO _4、11.6 mMのMgSO _4）し、CaCl _2の 100Xストック溶液（0.25MのCaCl _2）。これらのストック溶液は、前もって準備し、室温で保存することができます。
2. 新鮮で作業SAB（10X SAB、1 MのHEPES、100XのCaCl ₂ 0.5mlの35％BSA、0.11グラムのNaHCO ₃ 0.28ミリリットルの1ミリリットルと、滅菌水に50ミリリットルの5 mL）中の50ミリリットルを準備50 mlコニカルチューブと37℃の水浴中で配置することにより、37°C​​に暖かい。
3. ピペットで15 mlのコニカルチューブに作業SABの10mlと高グルコース（16.7 mM）のSABを準備する2.5 M D-グルコースの66.8μlを追加します。
4. 低グルコース（2.8 mM）のSABを準備する作業SABの残りの40 mlの2.5 M D-グルコースの44.8μlを添加します。
5. ラベル6ウェルプレートの各ウェルの3つの1.7 mlマイクロチューブおよびリン酸緩衝生理食塩水（PBS）1 mlを加える。

[注：小島は放射性であるので、放射性物質の取扱い、使用、廃棄のための制度のプロトコルに従ってください。]

6. それぞれのマイクロ遠心チューブに20の島を配置します。各遠心管に比較的大型の膵島を追加するには、あらゆる試みを行います。たとえば、各チューブは、5小、10中期、5大型の膵島（ 図1を参照）を含めることができます。

[注：ランゲルハンス島では、解剖立体または標準的な顕微鏡のいずれかを使用して可視化することができます。]

7. 膵島は重力（〜2分）でチューブの底に定住した後、マイクロピペットでPBSを吸引除去し、廃棄します。

[注：重力により沈降する代わりに、チューブは1分間300×gで遠心分離することができます。]

8. プレインキュベーションのために、低GLU 400μlのCOSE SABは、組織培養インキュベーター（37℃、5％CO _2）にチューブを（それらのキャップを開いた状態）に置き、60分間プレインキュベートします。プレインキュベーション低グルコースSABと廃棄を吸引除去する。
9. 基礎インスリン分泌、低血糖SAB 400μlを加えるために、組織培養インキュベーター（37℃、5％CO _2）にチューブを（それらのキャップを開いた状態）に置き、60分間インキュベートします。低グルコースSABを収集し、インスリンラジオイムノアッセイのために保存します。
10. 刺激インスリン分泌については、高グルコースSAB 400μlを加え、組織培養インキュベーター（37℃、5％CO _2）にチューブを（それらのキャップを開いた状態）に置き、60分間インキュベートします。高グルコースSABを収集し、インスリンラジオイムノアッセイのために保存します。

3。チミジン取り込みアッセイ

1. 小島は重力によってチューブの底に定住した後、破棄され、マイクロピペットでPBSを吸引除去し、これを繰り返し、1 mlのPBSを追加します。一度ステップ実行します。
2. 500μlの氷冷トリクロロ酢酸（TCA、10％w / v）の追加し、氷上で30分間インキュベートします。
3. 4℃で3分間16 000 XG℃でチューブを遠心
4. TCAを吸引し、0.3 N NaOHの80μlを加え、室温で30分間インキュベートする。この間、5〜10秒間激しくボルテックスサンプルごとに10分。
5. 7ミリリットルの液体シンチレーション計数管にエコノセーフ計数カクテルの4ミリリットルを追加します。
6. シンチレーション計数管に試料の50μlを添加し、チューブのキャップを簡単に振ると、液体シンチレーションカウンターでカウントします。
7. 製造元のプロトコールに従ってビシンコニン酸（BCA）アッセイとサンプル10μlを用いてタンパク質濃度を測定します。

4。データ解析

1. 製造業者のプロトコルに従ってインスリンラジオイムノアッセイを実行します。
2. タンパク質の濃塩酸でインスリン分泌とチミジンの取り込みデータを正規化するentration。

5。代表的な結果

ラット膵島 ​​では膵島複製およびβ細胞機能を評価する実験の例を図2に示されています。この例では、架空の "ジーン＃6"そのアデノウイルスの過剰発現を示しています。確実にβ細胞機能を変更せずに膵島複製を刺激する。トップパネルには、チミジン取り込みアッセイの結果から、 "遺伝子第6位"の発現を増加させるようにチミジンの取り込みによって測定しDNA合成を増加させることを示している。ラット膵島の細胞のほとんどがβ細胞であるので、チミジンの取り込みの増加は、β細胞複製の増加を示している可能性があります。しかし、確証実験はしっかりとこれを確立するために実行する必要があります。下部のパネルに、インスリン分泌アッセイからの結果は "遺伝子＃6"の過剰発現を示して私は、すなわち、主なβ細胞の機能のいずれかを変化させなかった低域と高グルコースでnsulin分泌。アデノウイルスによる治療後に膵島の膵島分離と健康の質が低く、高グルコース濃度でのインスリン分泌倍に増加によって示されます。 "ジーン＃6"障害β細胞機能の発現を増加させる場合、これは可能性が高く、刺激グルコース濃度（16.7 mm）で分泌されるインスリンの減少として反映されます。グルコース濃度を変化させるための用量反応曲線も行うことができます。

図1遺伝子発現のアデノウイルス媒介性の変化を以下の単離ラット膵島 ​​膵島複製およびβ細胞機能を評価するためのプロトコルの概要。新たに単離したラット膵島を24時間アデノウイルスにさらされ、その後96時間まで培養されています。チミジン取り込みにおけるインスリン分泌の測定に続いて、最後の24時間で評価される低および高グルコース。

図2コントロールアデノウイルスおよびアデノウイルスを過剰発現する"遺伝子第6位"としてラベル付けされ架空の遺伝子を用いた実験からの結果。上部パネルには、インスリン分泌をチミジンの取り込みとボトムパネルを示しています。

ディスカッション

複製を刺激し、β細胞の機能を強化するために調節することができる確立する経路は、糖尿病の両方の主要な形態に関連しています。機能β細胞塊は、これらの決定を評価し、インスリン分泌細胞の存在と機能に依存しているため、同時にその利点を持っています。このプロトコルは、タンパク質の過剰発現または抑制し、in vivoでの有効性をテストすることができ、in vitroで機能...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
試薬の名前	会社	カタログ番号	コメント
RPMI 1640培地	ギブコ	11879
ペニシリン/ストレプトマイシン	ギブコ	15140
6ウェルプレート	BD-ファルコン	35から1146	非TC扱わ
[メチル- 3 H] -チミジン	パーキンエルマー	NET027Z001MC	1 mCiの/ mlの
マイクロ遠心チューブ	デンヴィル	C2170	1.7ミリリットル
NaClを	シグマ	59888
塩化カリウム	アクロス	42409
KH 2 </ SUB> PO 4	アクロス	20592
MgSO 4で	アクロス	41348
CaCl 2を	アクロス	34961
HEPES	シグマ	H0887	1 M溶液を
35パーセントBSA	シグマ	A7979
NaHCO 3を	アクロス	42427
D-グルコース	シグマ	G8769
TCA	フィッシャー·サイエンティフィック	SA9410-1	の10％w / vの
NaOHで	アクロス	12426
シンチレーション計数管	ザルスタット	58.536	7ミリリットル、PP
シンチレーション計数管のキャップ	ザルスタット	65.816
エコノセーフカウントカクテル	RPI	111175
インスリンRIA	ジーメンス	TKIN2
BCAアッセイキット	サーモフィッシャーサイエンティフィック	23250
			機器
遠心分離	エッペンドルフ	5415R
シンチレーション計数管ラック	ザルスタット	93.1431.001
液体シンチレーションカウンター	パーキンエルマー	トライ炭水化物2910TR