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要約

マウスの肝門脈や肝内胆管の3次元構造を可視化し、定量化する方法が記載されている。このレジンキャスト技術は、他の管または血管系に適用し、可能にすることができますその場でシステムの完全な通信アーキテクチャの可視化や定量化。

要約

臓器、血管および腺管構造の正しいアーキテクチャーは、適切な生理的機能のために不可欠であり、これらの構造体の形成と維持には、高度に制御されたプロセスである。これらの複雑な3次元構造の解析が大幅にセクションまたは染料注入試験のいずれかで2次元検査に依存してきた。これらの技術は、しかし、彼らは明らかにすることを意図している乳管や血管構造の完全かつ定量的な表現を提供することができません。あるいは、3次元プラスチック樹脂キャストの性質は、システムの永続的なスナップショットを作成し、3次元構造とネットワークを可視化し、定量化するための新規かつ広く有用な技術である。

樹脂鋳造システムの重要な利点は、血管やダクトの無傷と接続、または通信し、構造を決定する機能です。血管とDUCの構造TALネットワークは臓器の機能に不可欠であり、この手法にはいくつかの方法で、血管や管網の研究を支援する可能性を秘めています。レジンキャストは、管腔構造の正常な形態と機能アーキテクチャを分析発達形態形成の変化を識別し、正常と病気の状態間の組織構造の形態学的差異を明らかにするために使用することができる。前の仕事は、たとえば、勉強する注型用樹脂を利用している、構造1,2の2次元解析に反映されませんでしたマウスの肝内胆管系内のアーキテクチャと機能の欠陥、アルツハイマー病マウスモデル3の脳血管系の変化、門脈圧亢進性と肝硬変マウス4、未熟と大人の肺の間のラットのリンパ成熟の発達のステップ5、薬害への応答におけるラット肝臓、膵臓、腎臓の即時微小変化で門脈の異常6。

ここでは、門脈と肝内胆管に特に焦点を当て、マウスの血管や管網の3次元レジンキャストを生成する方法を提示します。これらのキャストは、組織をクリアしたり、マセレーションにより可視化することができますし、分析することができます。この手法は、実質的に任意の血管や管システムに適用することができ、3次元の乳管や血管構造の開発、機能、保守、または傷害に問い合わせるどんな研究に直接適用できるであろう。

プロトコル

1。カニューレを準備

  1. 指先でPE10チューブの1インチの長いセクションを温めるとチューブが薄くなるように、それを伸ばす。
    注意:カニューレを挿入する血管やダクトのサイズが必要なストレッチの度合いを決定します。カニューレを胆管キャストのためによく伸ばさなければなりませんが、適度に大きい門脈内に収まるように延伸することが必要になることがあります。
  2. ベベルチップを生成するために対角線で延伸チューブをカットします。
  3. 5から6インチのセグメントを作成するためにチューブのもう一方の端をカットします。
  4. チューブの非傾斜端に32ゲージ、½インチの皮下注射針を挿入します。

2。 PBSでシリンジを準備

  1. PBSで3ミリリットル注射器を埋める。
  2. 先に調製したPE10チューブを引っ張っ添付で注射針にシリンジをねじ込みます。
  3. フリックシリンジとプッシュシリンジプランジャPBSは針やチューブを埋めていることを保証し、シリンジ内に気泡がありません。
  4. 粘土から出状シリンジホルダにPBSを用いてプリペアドシリンジを置きます。チューブがダクト内に挿入されながら、このホルダーは、注射器を安定に保つでしょう。

3。他のセット·アップ

  1. 小さ ​​な容器、 例えば 、24ウェルプレートのウェル1に触媒0.1gを計量する。
  2. 3ミリリットル注射器に1ミリリットル樹脂を引き出します。
    注意:触媒と樹脂の相対量は、硬化時間を変更するように調整することができる。触媒05の量を減少させる一方、鋳造収縮を増加させ、あまり望ましくキャストにつながる。
    注:樹脂を取り扱う際に、樹脂ヒュームの樹脂または吸入との接触を避けるための予防措置を取る。常に手袋を着用し、そのような化学ヒュームフードなど換気の良い場所で樹脂を含む手順を実行します。
  3. 字として使用される約5インチの5.0絹縫合糸の部分を切り取ります。

4。マウスを準備

  1. 成体マウスを生け贄に捧げる。その裏にマウスを置き、腹腔を開く。
  2. スコーププラットフォームを解剖にマウスを置きます。肝臓への可視性とアクセス可能性を高めるためにマウスの下に垂直に15 mlコニカルチューブを置きます。
  3. PBSで綿棒を湿らせ、肝門脈または総胆管と一緒に肝臓の背部ビューを公開することから上方に離れて肝臓を反転するためにそれを使用。
  4. 門脈キャストでは、室温でPBSで静脈をフラッシュすることによって血液凝固を防ぐことができます。 PBSで満たされた3 mlの注射器に針を取り付け、限りすることができますように、肝臓から肝門静脈に針を挿入します。そっと門脈を介してPBSを押してください。血液を排出するために総主静脈内にニックネームを作成します。血液の排水性を高める、マッサージ肝臓にぬれた綿棒を使用してください。このステップは、胆管にはお勧めしませんし、すべての血管系に必要でないかもしれません。
    注:このステップはまたperfoすることができます代わりにPBSの4%パラホルムアルデヒドでrmed。 4%パラホルムアルデヒドの使用は、特に小さな血管構造の、より正確なキャストで血管の整合性と結果を高める可能性があります。

5。肝外門脈または総胆管カニューレを挿入

  1. 肝臓から約¼インチ、門脈や胆管の下に外科的縫合結紮を渡すように湾曲したピンセットを使用しています。
  2. 緩い共通の結び目に糸を結びます。結び目を締めないでください。
  3. あなたはオープンエンドのシステムで作業している場合、それはシステムのもう一方の端に合字を結ぶ締めすると便利かもしれません。あなたは門脈から血液を排出するために総主静脈を開いている場合、門脈内の圧力を増加させ、中央の肝静脈への樹脂漏れを防止するために、その周りに合字を結ぶ。
  4. 縫合糸の結び目の下約¼インチ、門脈や胆管に小さなカットをする春のはさみを使用しています。このCutは中途半端な門脈や胆管の直径を通じ以上のものを貫通するべきではありません。
  5. 第5ピンセットを用いて、カットのサイトで門脈や胆管を保持し、胆管にチューブの傾斜端を挿入します。
  6. プリタイドリガチャー過ぎ、肝臓に向かってチューブの先端を押してください。
  7. カニューレを介してPBSを注入し、それは門脈や胆管に入っているかどうかを観察することで、カニュレーションの精度をテストします。
  8. 代わりにカニューレを保持するために字を締めます。

6。樹脂は門脈や​​肝内胆管をキャスト

  1. 予め測定された0.1グラムの触媒に予め測定された1ミリリットル樹脂を加え、よく混ぜる。気泡を発生させることは避けてください。
  2. 3 mlの注射器に戻す樹脂触媒混合物を描画します。優しくシリンジをフリックし、気泡を追い出すことにより、任意の気泡を除去する。
    注:小さな構造をキャストするために、それは目から非常に小さな気泡を除去するために真空チャンバーを使用すると便利かもしれませんeは樹脂とキャストの質を向上させる。この手順を実行するための時間を考慮するためには、樹脂の硬化を遅くするために、上記示唆から触媒/樹脂比を低下させることが必要である。
  3. 慎重にカニューレに取り付けられた32ゲージの針を残して、樹脂含有注射器を含むPBS含有注射器を交換してください。
  4. 抵抗が増加し、肝臓がいっぱいになるまでゆっくりと優しく門脈や胆管に樹脂を押してください。
  5. 優しく肝臓をマッサージしても塗りつぶしを奨励するためにぬれた綿棒を使用してください。
  6. 構造からカニューレを取り外し、速やかに樹脂漏れを防ぐために字を締め直してください。
  7. マウスは樹脂が硬化しながら20分間室温で平らにすることができ、その後、肝臓を削除します。
  8. どちらかの肝臓をクリアしたり、マセレーションを続行します。

7。 その場で可視化するための明確な肝

  1. 4℃、ロッキングで一晩、4%パラホルムアルデヒド中で肝臓を修正しました。
  2. 肝臓を洗うPBS中で少なくとも4時間、ロッキングのために。必要であればこの時点では、肝葉を分離することができる。
  3. 室温で揺らし、少なくとも4時間ごとに50%メタノールにした後、100%メタノールで脱水する。
  4. ロッキング、少なくとも24時間ベンジルアルコールと安息香酸ベンジル(Babbの)の1:2溶液中で肝臓をクリアします。長い洗浄時間が必要になることがあります。肝臓は2-3日後には完全にクリアされない場合は、24時間、100%メタノールに戻って移動し、Babbのクリアを繰り返す。
  5. 上皮内イメージング用ガラスシャーレ内に沈めBabbの肝

8。肝臓組織を柔らかく

  1. マウスから肝臓を取り出して、水で50 mlコニカルチューブに入れた。完全に樹脂硬化で1時間待ちます。必要に応じて独立した肝葉。
  2. 水を捨て、ガラスボトルに肝臓に移動します。 15パーセントのKOHに沈め。室温で一晩にしておきます。動かさないでください。
  3. 慎重にKOHを捨て、蒸留水でキャストを洗う。注:キャストは、verです壊れやすいとyは、細心の注意を払って取り扱ってください。管から流体を追加または削除するときにキャストを中断することは避けてください。
  4. レジンキャストがきれいになったら、そっと格納するコンテナに転送して、乾燥させるキムワイプ上に横たわっていた。

9。代表的な結果

門脈や胆管の正常なキャストは、へそから肝臓周囲に伸びる徐々に小さく枝の連続的なネットワークが表示されます。

図1は、門脈がBabbのクリア。 図1Aは、全体の左肝葉のキャストとキャストの形状とサイズを示した後、その場で可視化としてキャスト。 図1Bは同じキャストの拡大図を示し、実証を示してい肝周囲で最小の門脈枝への樹脂の浸透。

図2は、KOHミリアンペアを遂げている門脈キャストを示していますceration。 図2Aは、全体の左肝葉と図2Bは末梢小型の枝のクローズアップであることを示している。

この手法はまた、正常肝内胆管に適用され、Babbの清算とKOHマセラシオン手法1,2,7の両方を使用して公開されています。

一般的な問題がいっぱいに不完全含む、周囲のシステムまたは組織への樹脂と、オーバーフローで泡。 図3に門脈からの不完全な充填( 図3A)、気泡( 図3A)、樹脂のオーバーフローを認識する方法を示してい中心静脈( 図3B)。

すべての画像はライカMZ-16のFAステレオスコープを使用していて、RETIGA 4000RカメラをQImaging取られる。

figure-protocol-4689
図1。肝左葉の門脈のレジンキャストをBabbのクリアされた。 A.レジンキャストは門部から肝周囲に伸びる階層的な分岐構造を示しています。レジンキャストは、青みがかった肝葉内に黄色で表示されます。 B.は近くアップ樹脂塗りが肝周囲に小さな枝に及ぶことを示しています。樹脂はクリア肝臓を通して白っぽいです。スケールバーは= 1ミリメートル。

figure-protocol-5006
図2肝臓の組織浸軟樹脂キャストは葉の門脈を残しました。全肝葉のA.レジンキャストは、さまざまなサイズの多くの枝を示しています。 Bのクローズアップは、肝臓の周囲に小さな枝を示しています。小さな枝の外観をフェザリングする正弦スペースの充填樹脂を表し、又は樹脂キャストに表示されない可能性はありますが、存在しなければ明らかに枝の密度が増加します。樹脂の色は白です。スケールバーは= 1ミリメートル。

figure-protocol-5351
図3樹脂キャストの一般的な問題。 A.左葉の門脈の不完全な充填は、肝臓周囲に拡張するために失敗し、一部またはすべてのキャストに分岐によって明らかである。このキャストはまた、連続鋳造(矢印)でブレークなど目に見える気泡が表示されます。いくつかの場所で門脈と中心静脈枝の近さのために、Bを、門脈樹脂は、多くの場合、中心静脈を入力して記入します。二つの異なる肺門枝(矢印)と異なるパターンと重複している2つの分岐構造がある場合にこれを認識することができます。技術的なエラーと真の形態学的変化とを区別するには2つの方法で行うことができます。まず、鋳造組織は、2次元解析、または他の方法に基づいて予想される構造に比較されるべきである。第二に、それはいくつかが複製を実行することが重要であり、可能な場合は、構造体を定量UREと異なる実験群と対照群間で統計学的に有意と内の形態学的変化がある場合には、再現性を決定するとするために統計分析を実行します。

ディスカッション

我々は、肝臓の門脈および肝内胆管系はキャストすることができますが、この技術は若​​干の適応と他のほとんどすべての乳管や血管系にどのように適用できるかの具体例を記載している。前の仕事は10,11子ガモマウス1,2,7-9を含む複数種、、、ウサギ12,13、14、15、および鼻腺14を含む多くの器官における本手法の有効性を実証してきま?...

開示事項

特別な利害関係は宣言されません。

謝辞

この作品は、分子医学におけるHHMI /バンダービルト大学の証明書プログラムを通じてハワードヒューズ医学研究所(HHMI)からTJWにSSHで接続するには、米国立衛生研究所(NIH)からの助成金(R01-DK078640)、(GRDOT56006779)によってサポートされていましたバンダービルト糖尿病研究·研修センター(P30〜DK020593)とコア·サービスを提供するバンダービルト消化器病研究センター(P30〜DK058404)。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
試薬の名称 会社 カタログ番号 注釈
PE10ポリエチレンチューブフィッシャー·サイエンティフィック 1417012P
5から0外科黒編組シルク Roboz外科 SUT-15-1
Steriject 32 G×13 mmの針エアタイト TSK3213
春のはさみファイン科学ツール 15000から08
5番鉗子ファイン科学ツール 91150から20
Mercox IIキットラッド研究 21247
ベンジルアルコールフィッシャー·サイエンティフィック 1816年から1804年 OBabbのクリアリングのために必要nly
安息香酸ベンジル MPバイオメディカル、LLC 154839 唯一Babbのクリアリングのために必要
リン酸緩衝食塩水(PBS)
粘土
スケール
研究所はさみ
15mlのキャップポリプロピレンチューブ
4%paraformaldahyde
15%水酸化カリウム(KOH) 唯一のマセラシオンのために必要
かみそりの刃
100%メタノール
3ミリリットルルアーロックシリンジ

参考文献

  1. Sparks, E. E., Perrien, D. S., Huppert, K. A., Peterson, T. E., Huppert, S. S. Defects in hepatic Notch signaling result in disruption of the communicating intrahepatic bile duct network in mice. Dis. Model Mech. 4, 359-367 (2011).
  2. Vanderpool, C. Genetic interactions between hepatocyte nuclear factor-6 and notch signaling regulate mouse intrahepatic bile duct development in vivo. Hepatology. 55, 233-243 (2012).
  3. Meyer, E. P., Ulmann-Schuler, A., Staufenbiel, M., Krucker, T. Altered morphology and 3D architecture of brain vasculature in a mouse model for Alzheimer's disease. Proceedings of the National Academy of Sciences. 105, 3587-3592 (2008).
  4. Van Steenkiste, C. Vascular corrosion casting: analyzing wall shear stress in the portal vein and vascular abnormalities in portal hypertensive and cirrhotic rodents. Lab Invest. 90, 1558-1572 (2010).
  5. Dickie, R., Cormack, M., Semmler-Behnke, M., Kreyling, W. G., Tsuda, A. Deep pulmonary lymphatics in immature lungs. Journal of Applied Physiology. 107, 859-863 (2009).
  6. Kelly, D. M., McEntee, G. P., McGeenery, K. F., Fitzpatrick, J. M. Microvasculature of the pancreas, liver, and kidney in cerulein-induced pancreatitis. Archives of Surgery. 128, 293-295 (1993).
  7. Sparks, E. E., Huppert, K. A., Brown, M. A., Washington, M. K., Huppert, S. S. Notch signaling regulates formation of the three-dimensional architecture of intrahepatic bile ducts in mice. Hepatology. 51, 1391-1400 (2010).
  8. Carlson, T. R. Endothelial expression of constitutively active Notch4 elicits reversible arteriovenous malformations in adult mice. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 102, 9884-9889 (2005).
  9. Hemmeryckx, B., Emmerechts, J., Bovill, E. G., Hoylaerts, M. F., Lijnen, H. R. Effect of ageing on the murine venous circulation. Histochem. Cell Biol. , (2012).
  10. Hossler, F. E., Olson, K. R. Microvasculature of the nasal salt gland of the duckling, Anas platyrhynchos: quantitative responses to osmotic adaptation and deadaptation studied with vascular corrosion casting. J. Exp. Zool. 254, 237-247 (1990).
  11. Hossler, F. E., West, R. F. Venous valve anatomy and morphometry: studies on the duckling using vascular corrosion casting. Am. J. Anat. 181, 425-432 (1988).
  12. Hossler, F. E., Monson, F. C. Structure and blood supply of intrinsic lymph nodes in the wall of the rabbit urinary bladder--studies with light microscopy, electron microscopy, and vascular corrosion casting. Anat. Rec. 252, 477-484 (1998).
  13. Hossler, F. E., Monson, F. C. Evidence for a unique elastic sheath surrounding the vesicular arteries of the rabbit urinary bladder--studies of the microvasculature with microscopy and vascular corrosion casting. Anat. Rec. 252, 472-476 (1998).
  14. Hossler, F. E., Kao, R. L. Microvasculature of the urinary bladder of the dog: a study using vascular corrosion casting. Microsc. Microanal. 13, 220-227 (2007).
  15. Wischgoll, T., Choy, J. S., Kassab, G. S. Extraction of morphometry and branching angles of porcine coronary arterial tree from CT images. Am J Physiol. Heart. Circ. Physiol. 297, H1949-H1955 (2009).
  16. Hossler, F. E., Douglas, J. E., Douglas, L. E. Anatomy and morphometry of myocardial capillaries studied with vascular corrosion casting and scanning electron microscopy: a method for rat heart. Scan Electron Microsc. , 1469-1475 (1986).
  17. Hossler, F. E., Douglas, J. E. Vascular Corrosion Casting: Review of Advantages and Limitations in the Application of Some Simple Quantitative Methods. Microsc. Microanal. 7, 253-264 (2001).
  18. Mondy, W. L. Micro-CT of corrosion casts for use in the computer-aided design of microvasculature. Tissue Eng. Part C Methods. 15, 729-738 (2009).
  19. Masyuk, T. V., Ritman, E. L., LaRusso, N. F. Quantitative Assessment of the Rat Intrahepatic Biliary System by Three-Dimensional Reconstruction. The American Journal of Pathology. 158, 2079-2088 (2001).
  20. Masyuk, T. V., Ritman, E. L., LaRusso, N. F. Hepatic Artery and Portal Vein Remodeling in Rat Liver: Vascular Response to Selective Cholangiocyte Proliferation. The American Journal of Pathology. 162, 1175-1182 (2003).

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