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要約

ここでは、イメージサイトメトリー、培養中の宿主細胞に対応付けて病原性真菌の定量に使用することができる方法を示す。この技術は、CFU列挙の代替として使用することができる。

要約

例えば、 カンジダ·アルビカンスヒストプラスマカプ 、およびクリプトコッカス·ネオフォルマンスなどの病原性酵母の細胞病原性機構の研究は、一般に、単位分析またはフローサイトメトリーを形成するコロニーを用いて酵母定量化に続いて、哺乳動物宿主又は宿主細胞( すなわち、マクロファージ)の感染を用いる。コロニー形成単位の列挙は、フィールドで最も一般的に使用される方法であったが、この技術は成長を比較するときに特に懸念される固体培地および低および/または可変メッキ効率、上のいくつかの真菌種のゆっくりとした成長を含めて、不利な点と制限があります野生型および変異株である。フローサイトメトリーは、酵母の生存率に関する迅速な定量的情報を提供することができるが、病原性酵母のフローサイトメトリー検出の適用は、その高コスト及び生物学的安全性の考慮を含む実用的な理由の数が限られている。ここでは、イメージベースのデモンストレーションマクロファージとの共培養中の生存病原性酵母の定量化のためのCellometerビジョン(バイオサイエンスNexcelom、LLC)を使用してフローサイトメトリーの方法論。 2人間の真菌病原体の検出に関する我々の研究の焦点: ヒストプラスマカプカンジダH.。カプはマクロファージファゴソーム内で複製することによって肺胞マクロファージコロニーを形成し、ここで、我々は定量H.の成長を評価するイメージサイトメトリーと組み合わせて、アクリジンオレンジ/ヨウ化プロピジウム染色を用いてRAW 264.7マクロファージにおけるカプ酵母。我々の忠実方法従来のコロニー形成単位の列挙によって測定された反復するの成長傾向が、大幅に増加した感度。さらに、我々は直接Cの GFP発現株でライブマクロファージの感染性を評価アルビカンス 。我々の方法論は、アソシエーションのウィットに重要なヒトの真菌病原体の検出および定量のために、迅速、正確、かつ経済的な手段を提供しています時間宿主細胞。

概要

彼らのホストおよび/または宿主細胞に伴う病原性真菌の研究は、多くの場合、時間経過を介して、または別の感染条件下で実行可能な真菌細胞の定量化を必要とする。コロニー形成単位(CFU)の列挙は、生菌数を測定したが、この手法はいくつかの欠点と限界を有することによって標準的な方法である。まず、多くの真菌種は成長が遅いです。固体培地上に見えるコロニーの成長が著しく、研究のペースを遅くする、1〜2週間かかる場合があります。いくつかの希釈がコロニーの可算数を確保するためにメッキしなければならないので、第二に、CFUメッキ中にサンプルの操作は、骨の折れるプロセスです。メッキ効率がよく、100%を下回っているので、第三に、CFU数が蒔い生菌の数よりも一般的に低くなっています。例えば、二形真菌病原体ヒストプラスマカプするめっき効率は90%と高いよいが、日常的な限り低くすることができ30%とは、関連する真菌dimorphのParacoccidioidesのパラゴムノキ 1、2のために(10%)であっても低くなっています。 カンジダ用めっき効率も変動3の対象となります。最後に、固体培地上で成長を確立することができる唯一の​​ライブと活発に分裂する細胞のためのCFU分析アカウントは、多くの状況で、一方、それは死んで、および/または代謝的に不活性な細胞の存在と濃度を決定することは有用であろう。

以前は、いくつかの病原性真菌種の定量化のためのフローサイトメトリーの方法は4-6に記載されている。ただし、共有フローサイトメーター上のバイオセーフティレベル2(BSL2)またはBSL3レベルの病原体の使用に関わるバイオセーフティ封じ込めの問題のために、この手法の採用が限定されている。フローサイトメトリーのように、イメージサイトメトリーは、細胞の定量化の感度かつ迅速な方法である。しかし、画像サイトメトリーを同等の結果7と数分の一のコストで行うことができます-11。ここでは、宿主細胞に伴って病原性真菌のイメージサイトメトリーを実行するための方法が記載されている。我々は2つの人間の真菌病原体を使用して、私たちの方法を実証: ヒストプラスマカプカンジダをH.。カプは、呼吸器疾患を引き起こす二形真菌病原体であり、ヒトでは、出芽酵母として成長し、肺胞マクロファージ内で複製カンジダは時折カンジダ症の原因となる人間の共生種である。我々は、画像メトリが可視化機能と一緒に、これらの酵母の迅速な定量化を可能にすることを示している。

プロトコル

1。 H.とマクロファージの感染カプスラーツム、C.アルビカンス

  1. 16感染前にHR、24ウェルプレート中で所望の密度でシードマクロファージ。このプロトコルでは、ウェル3.0×10 5細胞の密度/を使用した。
  2. 感染の所望多重度(MOI)で対数増殖期における真菌細胞を追加します。このプロトコルは、MOI( - 5.0 0.2)の範囲を収容することができます。 H.とRAW264.7マクロファージの感染カプスラーツム 、私たちは、MOI 0.2を使用していました。
  3. 食作用を可能にするために1.5時間後に、細胞外の菌を除去するためにPBSでマクロファージを三回洗浄する。
  4. 試料分析の前に、所望の数の時間インキュベートする。 (我々の実験では0.2)、低MOIで感染したマクロファージ細胞は数日間生存したままで、そしてサンプルは、およそ12〜24時間を分析することができる。

2。マクロファージ溶解

  1. マクロファージ細胞から真菌を解放するには、メディアを取り出し、PBSで3回洗浄し、0.5ミリリットル滅菌水を追加します。これらの条件下では、マクロファージが溶解され、真菌細胞は、そのまま残ります。
  2. 室温で5分間インキュベートする。
  3. 滅菌チューブにライセートを移し、氷上に保つ。
  4. 別のチューブに20μlのライセートを移し、その後20μlのAO / PIソリューションを追加します。ステップ5に直接進んでください: "画像サイトメトリー分析のためのサンプルの準備"

3。 CFUメッキ

  1. メディアにおける溶解物の10倍希釈(ステップ2.3から)実行します。
  2. HMM-アガロースプレート上重複の各希釈のプレートを100μl、、。 7-8日、5%CO 2で37℃で加湿チャンバー内のプレートをインキュベートする。
  3. 手動で100の最小値と1,000異なるコロニーの最大値を表示するプレート上のコロニーを数える。

4。ライブマクロファージ内の菌の可視化

  1. ライブマクロファージを収集するには、PBSで細胞を3回洗浄する。 4℃で30分、0.5 mlのPBSとインキュベートを追加
  2. 組織培養ウェルからマクロファージを削除するには、軽く数回上下にピペッティングし。滅菌チューブに液体を移し、氷上に保つ。
  3. 別のチューブに20μlのサンプルを転送し、次に20μlのAO / PIソリューションを追加します。 "画像サイトメトリー分析のためのサンプルの準備":ステップ5に直接進んでください。

5。画像サイトメトリー分析のためのサンプル調製

  1. 徹底的にターゲットサンプルをピペットで、その後使い捨て細胞計数室にサンプルを20μlを移す。
  2. 細胞は、30秒のためにチャンバー内に定住することができます。
  3. 画像サイトメーターにカウントチャンバーを挿入します。

6。 Cellometer機器設定

  1. システムにVB-535から402とVB-660から502まで、それらが所定の位置にロックされていることを確認してください:蛍光光学モジュールを挿入します。
    1. VB-535から402(475 nmで励起、535 nmでの発光)がアクリジンオレンジおよびGFPの検出に用いられる。
    2. VB-660から502(excitati上で540nmで、660nmの放射)を、ヨウ化プロピジウムの検出に用いられる。
  2. 画像サイトメーターの電源を入れ、付属のソフトウェアを開きます。

7。 Cellometerソフトウェアのセットアップ

  1. プリセット "アッセイタイプ"とアッセイドロップダウンメニューで "セルの種類"を選択します。
    1. 生存率については、アッセイは、アクリジンオレンジおよびヨウ化プロピジウム検出のために最適化されている。
    2. カンジダ·アルビカンス感染の検出のために、アッセイはGFP検出のために最適化される。
  2. 上部の "オプション"を選択し、 "を取る背景画像"をクリックし、操作を完了することができます。
  3. "プレビュー明視野像"をクリックしてください。

8。画像の取得手順

  1. 画像サイトメーターに準備試料室に挿入します。
  2. フォーカスノブを使用して、フォーカスを調整します。
  3. 一度ピントで、 "カウント"をクリックし、画像取得操作を完了することができます。
  4. レモ使い捨てカウンティングチャンバーをもらって適切に処分する。

9。画像データ解析

  1. 濃度及び生存率測定
    1. カウントが完了すると、標的細胞の濃度及び生存率を結果ページに表示される。
    2. カンジダ·アルビカンス感染実験におけるGFPの細胞集団の解析のためにFCSエクスプレス4にデータをエクスポートするには、 "エクスポート"をクリックしてください。
  2. カンジダ感染細胞のFCSエクスプレス分析
    1. FCSエクスプレス4へ "。NXDAT"ファイルをインポートし、蛍光ヒストグラムの結果をプロットします。
    2. カンジダ·アルビカンス感染細胞の集団のパーセンテージを決定するためにヒストグラムに細胞集団ゲートを適用する。

結果

我々は、H.の成長を監視するCellometerビジョン画像サイトメーターを用いマクロファージ細胞内カプスラーツム 。 RAW 264.7細胞はH.に感染していたカプ酵母細胞及び様々な時点で、サンプルは画像ベースのサイトメトリー解析に続いAO / PI染色を行った。並行して、サンプルは、従来のCFU列挙によって分析した。各時点において、サンプルは、マクロファージを溶解す?...

ディスカッション

イメージサイトメトリーにより、ユーザは高品質の画像をキャプチャし、特殊なソフトウェアを使用して、細胞の迅速な定量化を行うことができる。病原微生物学分野における画像メトリーの適用つの潜在的課題は、カウントされる微生物は、哺乳動物宿主細胞を含む細胞の混合集団中に存在することである。ここでは、イメージサイトメトリーをin vitroマクロファージ感染中?...

開示事項

作家レオ李英ちゃんとベンジャミンパラディはNexcelomバイオサイエンスLLCの従業員です。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
REAGENTS
DMEMLife Technologies11965-084
Fetal Bovine SerumLife Technologies16000044
AO/PI SolutionNexcelom BioscienceCSK-0102
Disposable Counting ChamberNexcelom BioscienceCHT4-SD100
EQUIPMENT
Cellometer VisionNexcelom Bioscience
Cellometer Vision SoftwareNexcelom Bioscience

参考文献

  1. Worsham, P. L., Goldman, W. E. Quantitative plating of Histoplasma capsulatum without addition of conditioned medium or siderophores. J. Med. Vet. Mycol. 26, 137-143 (1988).
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