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Erratum Notice

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要約

動的な縦イメージングレポータートランスジェニックマウスにおける神経終末の選択的レーザ病変のためのプロトコルが提供される。

要約

皮膚の神経終末、例えば神経因性疼痛2のような1を感知するように、ならびに病理学的過程における生理学的プロセスに関与している。彼らの近くに対地位置決めが無傷動物の生体における皮膚の神経終末の顕微鏡イメージングを容易にします。多光子顕微鏡を使用して、皮膚組織の強い光散乱の問題を克服精細な画像を得ることができる。 (末梢感覚ニューロンを含む)ニューロンでのThy-1プロモーターの制御下にEYFPを発現するレポータートランスジェニックマウスは、数ヶ月、あるいは生涯までの長期間にわたって個別の神経終末の縦断研究に適しています。さらに、イメージングと同じフェムト秒レーザーを用い、それは神経線維の再構築の研究のために神経線維の高度に選択的な病変を生成することが可能である。ここでは、in vivoイメージング縦多するための簡単で信頼性の高いプロトコルを提示しマウス皮膚の神経終末上のレーザーベースのマイクロサージェリー。

概要

皮膚の神経終末は、異なる病態生理学的状態の下での動的な変化を受ける。神経線維は末梢神経障害2またはモートン神経腫3のような疾患の過程で変性および再生や再編のプロセスを経ることができます。外傷後に、皮膚の神経終末ダイナミクスの重要な部分は、損傷を受けた領域の再神経支配である。しかし、神経終末の調査のための一般的なアプローチは、進行中の処理4に関するリアルタイム情報を欠いてex vivoでの組織学的の切片である。遺伝的にコードされた蛍光マーカーを用いて、このように構造変化リッチと有意に関連する情報を取得し、生きている動物の皮膚における神経終末を追跡することが可能である。皮膚の神経終末の調査は、従来の蛍光顕微鏡法を使用して可能であるが、皮膚組織の強い光散乱が強く品質を損なうデータの5を取得した。多光子顕微鏡は、対物レンズの焦点位置からの蛍光の発光をもたらす励起光の光子のエネルギーの非線形和に起因する強散乱組織において高解像度画像の取得を可能にする。この効果は、皮膚組織6の測定のためのロバストな侵入深さの増加および信号対雑音比の向上につながる。イメージングの場合と同じレーザを用いて、神経線維7の選択的な切開を作製することが可能である。以下のプロトコールでは、市販の多光子顕微鏡システムを用いて選択的レーザー病変と組み合わさレポータートランスジェニックマウスにおけるin vivoでの皮膚神経終末の長手方向のイメージングの方法を示す。

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プロトコル

動物を対象とする手順は、国立動物実験委員会、フィンランドによって承認されている。

イメージングのための1。動物の準備

  1. intraperitionalケタミン(IP)注射(体​​重あたり0.08 mg)およびキシラジン(体重あたり0.01 mg)を、マウスを麻酔。リアつま先ピンチ反射麻酔をチェックしてください。
  2. 脱水から目を保護するために目薬(Viscotears)に動物の目を浸し。
  3. 低体温症を防ぐために、37℃で加熱パッド(SUPERTECH)上にマウスを置きます。
  4. 70%エタノールで画像化のために指定されたフットパッドを清掃してください。
  5. 皮膚とカバーガラスの間に液浸カップリングのためのフットパッドの皮膚上の水滴を追加します。
  6. カバークラスで金属リングの下に位置している後足の下にプラスチック包装材を入れてください。
  7. 皮膚を平らにするプラスチック包装材料の厚さを調整する。
  8. カバーGLASに一滴の水を入れてカバーガラスと客観の間に液浸用の。

2メタル固定器リングの準備

  1. 皮膚の安定化のために金属固定器を利用する。私たちは、金属リング(Neurotar社、フィンランドの礼儀)とまちづくりで保護された二羽の固定器を使用しています。 、瞬間接着剤で注射器を埋めるリング上の針を介して瞬間接着剤の小滴を入れて、静かにリング表面の均一なカバレッジを接着剤を広げた。接着剤の過剰量が視野を低減し、その後の画像化を妨害することができるので、唯一の均一な被覆のために必要とされる接着剤の最小量を置くことが重要である。
    注:または(下から)金属棒および(カバーのような)標準的な顕微鏡用スライドガラスの組み合わせは、皮膚を平らにし、アセンブリ14の適切な光結合を確実にするために使用することができる。二つのペーパークリップがガラスと金属棒表面との間の足を固定するために使用することができた( 図4 )。
  2. 顕微鏡カバースライド(直径5 mm、電子顕微鏡学)と共に環を覆います。
  3. 電動顕微鏡ステージ上montagedされ、剛性金属棒にリング固定器にねじ込みます。

3イメージング手順

  1. THY1-YFP-Hマウスを用いる場合には、神経線維を可視化する蛍光ランプスペクトルの青色部分を選択する。落射蛍光モードでの関心の神経を見つけて、それに関心を持っている。
  2. 縦イメージングのためのスポットの座標を書き留めます。基準点として手根パッドを使用してください。以下の画像化セッションの間、第手根パッドを検出し、同じアップストリーム大きな神経線維を見つけ、保存された座標を使用して戻ります。なお、基準の同じシステムを維持するために金属棒に垂直な同じ方向にフットパッドを配置することが不可欠である。
  3. 二光子モードをオンにします。 THY1-YFP-Hマウスの場合は、レーザ放射の950 nmの波長を使用するのに適している神経線維を可視化した。
  4. (YFP蛍光や髪の自家蛍光を検出するためにYFP標識された神経のイメージングのために580から630 nmの520から550nmの第2高調波発生検出のために450〜480nmの)レーザー波長と発光チャンネルを選択し、で始まる光損傷と漂白を防止するために、低レーザパワー(3-5%)。光電子増倍管での典型的な電圧は、イメージングのこの種の600〜700 Vです。
  5. 所望の解像度(512×512または高速イベントの測定のための640×640、800×800または1,024×1024形態学的画像化のために)、軸方向のステップ(1-3ミクロン)、試料の厚さと時間間隔(1〜10を設定してください分)。露光時間は、一画素当たり1ミリ秒のオーダーである。
  6. まずソフトウェアにおける撮像ボリュームの上下の境界をマークします。
  7. 病変前の基準のための参照画像スタックを取得します。必要なときに、それは数分の間にベースラインを記録することができる。
  8. 繰り返し(少なくとも10〜15分毎)​​麻酔薬の追加量を適用する必要なときに、動物の呼吸数や反射神経をチェックしてください。
  9. ティッシュできれいなパッドを撮像した後、それが完全に目を覚ましになるまで36℃での回収箱にマウスを入れた。
    注記:通常、レーザ誘起病変と組み合わさつの撮像セッションの期間(以下を参照)1時間を超えない。私たちは、動物が深く10〜15分毎に麻酔をかけていることを検証することをお勧めします。これは、画像自体を妨害してはならないが、実験手順が計画されている間考慮されるべきである。シングルケタミン/ xylazyne投与量の効果の持続時間は、このように私たちは25〜30分後に投与量を1/2¼追加適用することを推奨し、約30〜40分程度である。
    注:実験は個別の動物用のイメージングセッションの周波数再の悪影響を避けるために、2日ごとに1セッションを超えてはならないことを計画しているときにも同様に考慮されるべきである競争麻酔。

4。レーザー病変

  1. 参照画像スタックを取得した後、マイクロ病変を作るために漂白プロトコルを使用。
  2. 100%にレーザーパワーを大きくしてください。
  3. 関心領域ごとに100〜1,000ミリ秒(標準撮像の場合より100-1,000x以上)に露光時間を増やします。
  4. 病変のための領域を概説。
  5. 漂白に切り替えることにより、病変を行います。
  6. 定期的な撮像モードに切り替えとタイムラプス録画を続行します。

5。データ処理と解析

  1. ImageJの8(ヨアヒムウォルター、スペクトルアンミキシングプラグインを使用してアンミキシングを続行http://rsbweb.nih.gov/ij/plugins/spectral-unmixing.html )。
  2. 画像スタックを開いて、チャンネルを分割します。
  3. バックグラウンド測定のための神経や髪の空き領域を検索します。領域Oを入れてその領域でのF関心。
  4. 慎重に神経から明確に区別され、髪の一部を概説しています。
  5. それは髪から分離している画像の一部の神経概要。
  6. 行列をアンミキシング保存します。
  7. スタック全体のために測定された分離行列を適用します。
  8. * tifファイル形式の新しい処理された画像スタックを保存します。

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結果

記載された技術を使用して、病変後に同じファイバを追跡し、損傷した神経末端( 図1)の分解を研究することが可能である。 120〜150ミクロンの厚さのスタックの取得は、視野内の全繊維を維持するために数日の間に繰り返しの画像化のための通常適切である。

プラスチック包装材料は、皮膚を平らにするように調整されている場合、病変は、典型的には、...

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ディスカッション

このビデオプロトコルでは、単一の神経終末の非侵襲的な縦二光子イメージングのための方法を実証する。

皮膚神経支配の力学は、乾癬及び末梢神経障害2、のような疾患および外傷9に影響されます。二光子イメージングは​​、コラーゲンマトリックス中の神経線維構造の詳細な分析を可能にする。トランスジェニックレポーターマウスの使用は、神?...

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開示事項

著者は、彼らが競合する金融利害がないことを宣言します。

謝辞

著者は、財政支援のための技術支援のためのNeurotar株式会社CIMO財団とFGSNに感謝したいと思います。

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資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Round cover glass Electron Microscopy Science72296-055 mm diameter #1.5 thickness
Eye drops ViscotearsNovartis2 mg/g
Superglue Loctite 401Henkel135429
KetaminolIntervetKetamine 50 mg/ml, working solution 10 mg/ml (use it 80 µg per gram of animal weight)
RompunBayer HealthcareXylazine 20 mg/ml, working solution 1.25 mg/ml (use it 10 µg per gram of animal weight)
Ethanol 70%
Distilled water or Milli-Q water
Syringes 1 mlBD300013
30 G 1/2" needlesBD304000
Plastic packaging materialCould be purchased from general hardware store
FV-1000MPE microscopeOlympusFV-1000MPEMicroscope with motorized stage and rigid metal bar for fixation
25X XLPlan objectiveOlympusXLPLN 25XWMPWater immersion objective optimized for multiphoton imaging
Mai-Tai DeepSee laser (2 W)SpectraPhysics
Heating padSupertechTMP-5bHeating pad with a temperature controller
Metal ring fixatorNeurotar Ltd.
ImageJNIHOpen source software for image processing and analysis, http://rsbweb.nih.gov/ij/ 
Thy1-YFPH mice strainJaxLab003782

参考文献

  1. Lumpkin, E. A., Caterina, M. J. Mechanisms of sensory transduction in the skin. Nature. 445, 858-865 (2007).
  2. Kennedy, W. R., Wendelschafer-Crabb, G., Johnson, T. Quantitation of epidermal nerves in diabetic neuropathy. Neurology. 47, 1042-1048 (1996).
  3. Wu, K. K. Morton's interdigital neuroma: a clinical review of its etiology, treatment, and results. J. Foot Ankle Surg. 35, 112-119 (1996).
  4. Lauria, G., Lombardi, R. Skin biopsy: a new tool for diagnosing peripheral neuropathy. BMJ. 334, 1159-1162 (2007).
  5. Cheng, C., Guo, G. F., Martinez, J. A., Singh, V., Zochodne, D. W. Dynamic plasticity of axons within a cutaneous milieu. J. Neurosci. 30, 14735-14744 (2010).
  6. Wang, B., Zinselmeyer, B. H., McDole, J. R., Gieselman, P. A., Miller, M. J. Non-invasive Imaging of Leukocyte Homing and Migration in vivo. J Vis Exp. (46), e2062(2010).
  7. Sacconi, L., O'Connor, R. P., Jasaitis, A., Masi, A., Buffelli, M., Pavone, F. S. In vivo multiphoton nanosurgery of cortical neurons. J Biomed Opt. 12, 050502(2007).
  8. Rasband, W.S., ImageJ. , US National Institutes of Health. Bethesda, Maryland, USA. Available from: http://rsb.info.nih.gov/ij (1997).
  9. Robinson, L. R. Traumatic injury to peripheral nerves. Muscle Nerve. 23, 863-873 (2000).
  10. Feng, G., Mellor, R. H., Bernstein, M., Keller-Peck, C., Nguyen, Q. T., Wallace, M., Nerbonne, J. M., Lichtman, J. W., Sanes, J. R. Imaging neuronal subsets in transgenic mice expressing multiple spectral variants of GFP. Neuron. 28, 41-51 (2000).
  11. Marinkovic, P., Reuter, M. S., Brill, M. S., Godinho, L., Kerschensteiner, M., Misgeld, T. Axonal transport deficits and degeneration can evolve independently in mouse models of amyotrophic lateral sclerosis. Proc Natl Acad Sci U.S.A. 109, 4296-4301 (2012).
  12. Amit, S., Yaron, A. Novel systems for in vivo monitoring and microenvironmental investigations of diabetic neuropathy in a murine model. J Neural Transm. 119, 1317-1325 (2012).
  13. Yu, H., Fischer, G., Jia, G., Reiser, J., Park, F., Hogan, Q. H. Lentiviral gene transfer into the dorsal root ganglion of adult rats. Mol Pain. 7, 63(2011).
  14. Yuryev, M., Khiroug, L. Dynamic longitudinal investigation of individual nerve endings in the skin of anesthetized mice using in vivo two-photon microscopy. J Biomed Opt. 17, 046007(2012).

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Erratum


Formal Correction: Erratum: In Vivo Two-Photon Microscopy of Single Nerve Endings in Skin
Posted by JoVE Editors on 9/01/2014. Citeable Link.

A correction was made to In Vivo Two-Photon Microscopy of Single Nerve Endings in Skin.

Leonard Khiroug was removed as an author.

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