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要約

gDNA enrichment for NGS sequencing is an easy and powerful tool for the study of constitutional mutations. In this article, we present the procedure to analyse simply the complete sequence of 11 genes involved in DNA damage repair.

要約

次世代シーケンシングの普及は、癌研究および診断のための新たな道を切り拓いてきた。 NGSは巨大な癌に対する新たなデータの量、特にがんの遺伝学をもたらすでしょう。現在の知識と未来の発見は、それが必要な癌の遺​​伝的素因に関与することができる遺伝子の膨大な数を研究するようになります。この点では、DNA損傷の修復に関与する11の完全な遺伝子を研究するためにエラ·デザインを開発した。このプロトコルは、安全に、同時に24人の患者に11個の遺伝子（ATM、BARD1、BRCA1、BRCA2、BRIP1、CHEK2、PALB2、RAD50、RAD51C、RAD80、およびTP53）プロモーターからの3'-UTRに研究するために開発されました。トランスポザーゼ技術とgDNAの濃縮に基づくこ​​のプロトコルは、多重化をサンプリングする遺伝子診断のおかげで時間の面で大きな利点を提供します。このプロトコルは、安全に、血液のgDNAと共に使用することができる。

概要

2010年にはほぼ150万人（基本的に女性は）世界的に乳癌を開発しました。なお、これらの症例の5〜10％が遺伝性であったと推定される。ほぼ20年前、BRCA1およびBRCA2は 、遺伝性乳癌および卵巣癌1に関わると同定された。約15年前から、BRCA1およびBRCA2コード領域は、乳癌および卵巣癌の遺伝的素因を決定するために配列決定されている。 BRCA1およびBRCA2の変化は、これらの領域の分析は、効果的なスクリーニングのために十分ではないことを示唆して選択された家族2 10〜20％で検出される。最近では、BRCA1およびBRCA2の非コード配列（プロモーター、イントロン、3 - 'UTR）の分析は、新たな変異/バリエーションが乳癌3-6のリスクが高いにリンクすることができることを強調した。

BRCA1およびBRCA2タンパク質は、相同組換え修復に関与している（多数のパートナー企業7によって完成さHHR）。 BRCA1またはBRCA2の変化は、DNA修復における欠陥を誘発するが、他のパートナーはまた、乳癌のリスクに影響を及ぼし得る。この仮説はBRIP1 8以来確認されているように見えるとPALB2 9は、それぞれ、子宮頸および乳癌に対する実績のある影響を与えます。さらに、2つの他の「中程度リスク」乳癌感受性遺伝子、ATMおよびCHEK2は 、また、日常的に10研究することができる。

これらの研究に続いて、私たちは非常に簡単で、比較的を用いて同時に24人の患者に11個の遺伝子（ATM、BARD1、BRCA1、BRCA2、BRIP1、CHEK2、PALB2、RAD50、RAD51C、RAP80、およびTP53）を分析するためのプロトコルを開発することを決定中スループットデバイス上の濃縮およびシーケンシングとトランスポザーゼ技術に基づく高速プロトコル。感謝この技術は、2,500塩基対のイントロン領域をカバーされなかったRAP80、（：176,381,588-176,390,180 Chr5）を除いて、3'-UTRの端に対するプロモーターの開始から完全な遺伝子を配列決定した。これは2,734プローブを用いて研究し、約1000300塩基対の合計を表します。通常、BRCA1およびBRCA2エキソン配列は、20未満の患者について1.5カ月を必要とするサンガー配列決定によって分析される。現在のプロトコル（ 図1）を使用すると、同じ時間で、75以上の患者のための11の完全な遺伝子を解析することができた。

プロトコル

1 gDNAの評価（ゲノムDNA）収率

  1. ライブラリー作製の前に新鮮に抽出されたgDNAを定量化する。 （gDNAの収率を評価するための分光光度計を使用しないでください）​​は、無傷のgDNAを定量化するために、蛍光歩留まり評価方法を使用します。 （260/280 nm）の比を測定し、それが1.8の間と2注であることを確認：gDNAの50 ngの実験のために必要とされる。

2 gDNAのエンリッチメント：1日目、朝

  1. 始める前に
    1. DNA濃縮キット（材料/機器の表を参照）を、解凍のDNAバッファ（TD）と氷上でのDNA酵素（TDE1）ソリューションから。少なくとも30分間、使用前に精製磁気ビーズをもたらし、標的（ST）を停止し、室温（RT）にバッファリングする。よくサンプルあたり1、2〜2.5 ngの直接96ウェルプレートに/ウェルでのgDNAサンプルの20μl添加する。重要：プロトコル（既知の配列変異を有するサンプル）を検証するためにポジティブコントロールを使用します。
  2. Tagmentation
    1. MIX徹底的にすべての試薬5回反転させて、簡単にスピンダウン。 RTで、TDE1バッファの各ウェルのgDNA 50ngの（20μl）を含む、その後、5μlにTDバッファー25μlを加える。優しく上下に10倍のボリューム全体をピペットで、50μlにピペットを設定します。
    2. 20℃で280×gで1分間接着フィルムや遠心分離機でプレートをカバー。その後、サーモプレートを配置（カバーが100℃で加熱）し、次のプログラムを実行します。無制限の時間のために5分間、10℃、55℃を。
    3. このインキュベーションの間、使用される索引を定義するために、実験·マネージャー·ソフトウェアを使用してサンプルシートを作製。
  3. Tagmentation精製
    注：この手順は非常に重要です。十分注意してください。
    1. 精製磁気ビーズおよびSTバッファ内の沈殿物がないことを確認してください。析出物が存在する場合には、手の中に解決策を温める。氷上で解凍再懸濁緩衝液（RSB）。
    2. RTで、渦のSTソリューションを追加各ウェルを含む試料に15μlの。優しく上下に10倍のボリューム全体をピペットで、65μlにピペットを設定します。 RTで5分間インキュベートする。 20℃で280×gで1分間プレート遠心分離をカバー。
    3. 各ウェルに、以前に混在精製磁性ビーズ52を添加する。優しく、117μlにピペットを設定し、上下10倍のボリューム全体をピペット。 RTで10分間インキュベートする。 20℃で280×gで1分間プレート遠心分離をカバー。
    4. 接着フィルムを取り外します。室温で2分間、磁気スタンド上で96ウェルプレートを置きます。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。
    5. （24サンプルについて、8ミリリットルのエタノールを蒸留水2mlを加える）新鮮な80％エタノール溶液を調製する。ビーズを乱さないように注意しながら上清を除去し、廃棄する。
    6. 磁気スタンドにプレートを維持しながら、ビーズを乱すことなく、各ウェルに新たに調製した80％エタノールを200μlを追加し、少なくとも30秒間静置し室温で加えた。上澄みを捨て、この洗浄をもう一度繰り返します。エタノールが除去されていることを確認してください。 10分間またはエタノールが完全に蒸発するまで室温で乾燥してみましょう。
    7. 磁気スタンドからプレートを取り外し、RSBバッファーの22.5μlを加える。優しく上下に10倍のボリューム全体をピペットで、22.5μlにピペットを設定します。磁気スタンド上で96ウェルプレートを置き、2分間インキュベートする。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。静かに新しい96穴プレートに20μlの上清を移す。
      注：必要に応じて、フラグメント分析を使用することによりtagmentedサンプルのサイズを決定する。代わりに、上述した手順で、高解像度アクリルアミドゲル電気泳動を使用する。断片は150 bpおよび千塩基対の間であるべきである。
  4. 1回目のPCR増幅
    1. 氷上でポリメラーゼ（LP-PMM）、インデックス1プライマー、およびインデックス2プライマー溶液を含む解凍PCRマスターミックス。組み合わせoを一致させ実験マネージャのサンプルシートとfのインデックス。多重化のために、各サンプルのインデックス1（i7の、N7xx）とは異なるi7プロセッサーを用意。
    2. 各ウェルには、静かに上下に10倍のボリューム全体をピペットで、インデックス1、インデックス2の5μlと5μlを50μlにピペットを設定し、LP-PMM20μlのを追加します。接着剤マイクロシールフィルムでプレートをカバー。 20℃で280×gで1分間遠心します。
    3. サーモ、プレート（カバー100℃で加熱）し、実行プログラム1（ 表1）を配置します。
      注：手順はこの時点で停止することができ、反応はサーモサイクラーで、または2〜8℃の間で2日間一晩保存した。

3 gDNAのエンリッチメント：1日目、午後

  1. 始める前に
    1. 解凍オリゴ（CSO）、キャプチャ対象のバッファ1（NCT1）、そして氷上でRSBソリューション。使用前に少なくとも30分間、RTに精製磁気ビーズをもたらす。
  2. PCR精製
    1. 20℃で280×gで1分間遠心操作ステップ2.4​​からプレート。
    2. RTで、各ウェルに混合、精製磁気ビーズの45μlを加える。 95μlにピペットを設定して、静かに上下に10倍のボリューム全体をピペット。 RTで10分間インキュベートする。室温で2分間、磁気スタンド上で96ウェルプレートを置きます。
    3. 上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。 （24サンプルについて、8ミリリットルのエタノールを蒸留水2mlを加える）新鮮な80％エタノール溶液を調製する。ペレットを乱さないように注意しながら、上清を捨てる。
    4. 磁気スタンド上でプレートを維持しながら、ビーズを乱すことなく、各ウェルに、新たに調製した80％エタノール200μlを添加し、室温で30秒間静置します。上澄みを捨て、この洗浄をもう一度繰り返します。エタノールが除去されていることを確認してください。 15分間室温で乾燥させる。
    5. 磁気スタンドからプレートを取り外し、RSBバッファー40μlのを追加します。パイプを設定します40μlのにTTEは、優しく上下に10倍のボリューム全体をピペット。
    6. 磁気スタンド上で96ウェルプレートを置き、2分間インキュベートする。上清を完全に明確に表示されます。静かに新しい96ウェルプレートに上清の38μLを移す。
    7. 蛍光法により各サンプルの収量を決定します。査定利回りが30および50ng /μlの間にある場合に、プロトコルのこの最初の部分は検証されます。
  3. 第 1回ハイブリダイゼーション
    1. 新しい96ウェルプレートに各サンプルの500 ngのを混合することにより、この段階でプールあたり12サンプルまでのプール。各プールの最終容量は40μlのを超えていないことを確認してください。
      注：必要に応じて、RT（：加熱DNAの分解を引き起こすようにDNAの濃度があっても、30℃で、加熱することにより変更することができない注意）、真空濃縮器デバイスを使用してプールの容積を減少させる。 RSB溶液を添加することによって40μlの最終的な音量を調整します。
    2. 完全に混合するNCT1ソリューション。プールされたDNAサンプルの入った各ウェルを40μlのために、NCT150μlの、とCSOの10μlを加える。 100μlにピペットを設定して、静かに上下に10倍のボリューム全体をピペット。 20℃で280×gで1分間プレート遠心分離を密封。
    3. サーモ、プレート（カバー100℃で加熱）し、実行プログラム2（ 表1）を配置します。

4。gDNAのエンリッチメント：2日目、朝

  1. 始める前に
    1. DNA濃縮キット（材料/機器の表を参照）を解凍2NのNaOH（HP3）から、溶出バッファー1 ET2、ストレプトアビジン磁気ビーズ（SMB）、洗浄溶液1（WS1）を標的、溶出バッファー1（ET1）を標的、ウォッシュRTで溶液2（WS2）、洗浄溶液3（WS3）、CSO、およびNCT1ソリューションを提供しています。
  2. 第 1回ハイブリダイゼーションウォッシュ
    1. 20℃で280×gでサーモ遠心1分〜96ウェルプレートを取り外します。非常にcarefu接着剤カバーを取り外しLLY。
    2. 新しいMIDI 96ウェルプレートにプレートから100μlの反応ミックスを移し、十分にボルテックスのSMBソリューションを250μlを追加。優しく上下に10倍のボリューム全体をピペットで、350μlにピペットを設定します。プレートをシールし、室温で30分間インキュベートする。
    3. 20℃で280×gで1分間遠心操作し、接着剤、シールを削除し、2分間の磁気スタンドにプレートを置く。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。上澄みを捨て、磁気スタンドからプレートを取り外します。
    4. よく含むビーズによく混合WS1溶液200μlを追加します。 200μlにピペットを設定して、ゆっくりと気泡/泡の形成を回避し、上下15倍ボリューム全体をピペット。
    5. 2分間の磁気スタンドにプレートを置きます。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。上澄みを捨て、磁気スタンドからプレートを取り外します。
    6. ウェルコンタによく混合WS2溶液200μlを追加します。iningビーズ。 200μlにピペットを設定して、ゆっくりと気泡/泡の形成を回避し、上下15倍ボリューム全体をピペット。
    7. 2分間の磁気スタンドにプレートを置きます。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。上澄みを捨て、磁気スタンドからプレートを取り外します。
    8. ビーズを含有するウェルによく混合WS2溶液200μlを追加します。 200μlにピペットを設定して、ゆっくりと上下に15倍ボリューム全体をピペット。
    9. 新しい96ウェルプレートにボリューム全体を転送します。プレートを密封し、サーモ（カバーは100℃で加熱）でプレートを配置。 30分間、42℃でサーモを起動します。
    10. Imediately 2分間磁気スタンドにプレートを置く。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。シールを取り外して、直ちにすべての上清を捨てる。その後、磁気スタンドからプレートを取り外します。
    11. ビーズを含有するウェルにWS2を200μlを追加。 200にピペットを設定する優しくμL及び気泡/泡の形成を回避し、上下15倍ボリューム全体をピペット。プレートを密封し、サーモ（カバーは100℃で加熱）でプレートを配置。 30分間、42℃でサーモを起動します。
    12. すぐに2分間の磁気スタンドにプレートを置く。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。シールを取り外して、直ちにすべての上清を捨てる。その後、磁気スタンドからプレートを取り外します。
    13. ビーズを含有するウェルによく混合WS3溶液200μlを追加します。 200μlにピペットを設定して、ゆっくりと上下に15倍ボリューム全体をピペット。
    14. 2分間の磁気スタンドにプレートを置きます。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。すべての上清を破棄し、磁気スタンドからプレートを取り外します。
    15. 二回目を洗うWS3を繰り返します。
    16. 上清を除去した後、残留上清をプルダウンプレートと簡単に遠心分離器を密封する。上のプレートを置き2分間の磁気スタンド。残留上澄みを捨てる。
    17. 0.2ミリリットルチューブでは、ET1の28.5μlのとHP3ソリューションの1.5μLを混ぜる。このミックスは、よりプールが用意されている場合には、1プール用で、準備プールの数によってこれらのボリュームを掛けます。
    18. 磁気スタンドからプレートを取り外します。上記プレミックスの23を添加する。 23μlにピペットを設定して、ゆっくりと上下に15倍ボリューム全体をピペット。プレートを密封し、室温で5分間放置する。 20℃で280×gで1分間遠心します。
    19. 2分間の磁気スタンドにプレートを置きます。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。接着フィルムを取り外し、新しい96ウェルプレートに上清の21μLを移す。
    20. 各ウェルにET2液4を添加する。 25μlにピペットを設定して、ゆっくりと上下に10倍のボリューム全体をピペット、プレートをシール。
      注：手順はこの時点で停止することができ、反応は-15℃で最長7日間保存。プレートが凍結されている場合は、完全に2 番目のハイブリダイゼーションを開始する前に解凍。
  3. 2 回目のハイブリダイゼーション
    1. 20℃で280×gで1分間プレートを遠心。接着フィルムを取り外し、ライブラリの25μlにNCT150μlの、CSOを10μl、およびPCRグレードの水15μlのを追加します。 100μlにピペットを設定して、ゆっくりと上下に10倍のボリューム全体をピペット。
    2. 20℃で280×gで1分間プレート遠心分離を密封。
    3. サーモ、プレート（カバー100℃で加熱）し、実行プログラム2（ 表1）を配置します。

5。gDNAのエンリッチメント：2日目、午後

  1. 始める前に
    1. 雪解けET1、ET2、SMB、WS1、WS2、WS3とハイブリダイゼーション洗浄のためのRTでHP3ソリューションを提供しています。 DNA濃縮キットから、PCR増幅のための氷上でのPCRマスターミックスを含むポリメラーゼ（TC-PMM）、PCRプライマーカクテル（PPC）、およびRSBソリューションを解凍。
  2. 第2 回ハイブリダイゼーションウォッシュ
    1. 1 番目のハイブリダイゼーション洗浄- 4.2の場合とまったく同じプロトコルに従ってください。
  3. PCR増幅
    1. 新しい96ウェルプレートでは、ステップ5.2からの溶出液20μl、TC-PMM25μlの、とPPCの5μLを混ぜる。 50μlにピペットを設定して、ゆっくりと上下に10倍のボリューム全体をピペット。 20℃で280×gで1分間プレート遠心分離を密封。
    2. サーモ、プレート（カバー100℃で加熱）し、実行プログラム3（ 表1）を配置します。

6。gDNAのエンリッチメント：3日目

  1. 始める前に
    1. 氷上で解凍RSBソリューション。使用前に少なくとも30分間、RTに精製磁気ビーズをもたらす。
  2. PCR精製
    1. 20℃で280×gで1分間ステップ5.3からプレートを遠心し、接着剤のカバーを取り外します。
    2. RTで、pは90μlを加えるreviously各ウェルに精製磁気ビーズを混合した。優しく上下に10倍のボリューム全体をピペットで、140μlにピペットを設定します。 RTで15分間インキュベートする。室温で5分間磁気スタンド上で96ウェルプレートを置きます。上清を完全にクリア表示されていることを確認してください。
    3. （2サンプルのために、800μlのエタノール蒸留水200μlを加える）、新鮮な80％エタノール溶液を調製する。ペレットを乱さないように注意しながら、上清を捨てる。
    4. 磁気スタンドにプレートを維持しながら、ビーズを乱すことなく、各ウェルに新たに調製した80％エタノールを200μl添加し、室温で30秒間静置します。上澄みを捨て、この洗浄をもう一度繰り返します。エタノールが除去されていることを確認してください。プレートは磁気スタンド上にある間に15分間以上のエタノールを完全に蒸発するまで室温で乾燥させてください。
    5. 磁気スタンドからプレートを取り外し、RSB緩衝液30μlを加える。トンピペットを静かに30μlにピペットを設定し、彼ボリューム全体の上下に10倍。室温で2分間静置します。
    6. 磁気スタンド上で96ウェルプレートを置き、5分間または上清が完全に透明になるまでインキュベートする。静かに新たな96ウェルプレート（：TCYプレートタイプ）への上清28μLを移す。
      注：手順は、この段階で停止することができ、反応は7日間まで-15℃で保存した。
  3. ライブラリ検証と定量化
    1. フラグメントアナライザーを使用して、ライブラリの質を決定します。高分解能アクリルアミドゲル電気泳動は、上記のステップを置き換えるために使用されるかもしれないが、推奨されない。断片は150 bpおよび千塩基対の間であるべきである。
      注：推奨：シーケンス処理中にクラスターの最高数を取得するためにqPCRによりライブラリを定量化。
    2. 参考として、検証済みライブラリ（2 nM）を使用しています。最初のライブラリが用意されている場合、sequencの較正のために提供PHIXファージDNA（10 nM）を使用しデバイスをる。
    3. 、20で7点を得るために、陽性対照の連続希釈液を調製し16、8、6、4、2、およびEBTで1pMの（EB溶出バッファー+ 0.1％ツイーン20）。 1/1000〜1/2000での関心のあるライブラリを希釈する。各点は三重に分析しなければならない。
    4. 、ウェル1のためのqPCRマスターミックス（2倍）を含むSYBRグリーン10μlの、フォワードプライマー0.2μlの（10μM、AATGATACGGCGACCACCGAGAT）、リバースプライマー0.2μLを追加します（使用する井戸の数を乗算したボリューム）は、次のミックスを調製（10μM、CAAGCAGAAGACGGCATACGA）、および7.650μlのPCRグレード水。
    5. 混合した後、各ウェルに陽性対照とライブラリの希釈液を2μlに、96ウェルプレートにミックス18μLを解任。 20℃で280×gで1分間プレート遠心分離を密封。その後、定量PCRサーモサイと実行プログラム4（ 表1）にプレートを配置。
    6. 各Lの収量を得るために、従来の絶対的定量として結果を分析しますibrary。定量PCRの利点は、それが唯一のフローセルと相互作用するDNAを定量化することである。
      メモ：試薬の1つでのDNA模倣分子の存在に、DNAの蛍光定量化を使用しないでください。この定量法は、ライブラリの収量を過大評価し、その結果、クラスタリングスコアを過小評価だろう。
  4. シーケンシング発射
    1. 溶出緩衝液（EB）の30μlの最終容量で4 nmの各ライブラリを希釈して、すべてのライブラリをプールし、よく混ぜる。
    2. EB緩衝液中で新鮮な0.2NのNaOH溶液を準備し、プールされたライブラリを10μlのこの水酸化ナトリウム溶液10μlを混ぜて。よく混合し、室温で正確に5分間インキュベートする。
    3. 5分後、すぐに（シーケンシングカートリッジから）ハイブリダイゼーションバッファー980μLを加え、よく混ぜる。次に、ハイブリダイゼーション緩衝液600μlのこの混合物の400μLを混ぜる。よく混合し8の注入のために300サイクルカートリッジ（2×150）に600μlのを転送pMで。シーケンシングを起動します。

7。データ解析

  1. デバイスがデータを処理した後は、新しいコンピュータに.bamとの.vcfファイルを転送する。
    注：トランスポザーゼの断片化が足跡を内蔵しています。その結果、ソフトウェアは自動的にこれらのデータをトリムします。
  2. デバイス解析で得られた遺伝的変異を収集します。
  3. メーカーの指示に従って、別のソフトウェア（Alamut）でエクスポートしたファイル（.bam、の.vcf）を分析します。その後、両方の分析で得られた遺伝的変異を比較します。二回検出された唯一の変更は、本と考えられている。

表1のPCR条件

プログラム 温度 時間 テンキー。リピート
1 72℃ 3分 1
98°C 30秒 1
98°C 10秒 10
60°C 30秒
72℃ 30秒
72℃ 5分 1
10°C 無制限の
2 95°C 10分 1
93℃ 1分 1
91°C 1分 1
89℃ 1分 1
87℃ 1分 1
85°C 1分 1
83°C 1分 1
81℃ 1分 1
79℃ 1分 1
77℃ 1分 1
75°C 1分 1
71℃ 1分 1
69°C 1分 1
67℃ 1分 1
65°C 1分 1
63℃ 1分 1
61°C 1分 1
59℃ 1分 1
58℃ 1分 16〜18時間
3 98°C 30秒 1
98°C 10秒 10
60°C 30秒
72℃ 30秒
72℃ 5分 1
10°C 無制限の
4 95°C 10分 1
95°C 15秒 40
60°C 1分

結果

サンプルQC結果

標的遺伝子の配列を決定するためのこの方法の能力は、gDNAの品質（ 図2A）とtagmentation工程の品質に基づいている。 tagmentationが（ 図2B、上部パネル）が十分でない場合には、シークエンシングは満足できなくなります。上述したように、tagmentation精製後に、gDNAを、300塩基対の周りの断片の大部分（ 図2B、下のパネル）で1...

ディスカッション

NGS機器や技術の普及は、がんや遺伝性疾患の研究に新たな機会を提供してきました。全ゲノムシーケンシングまたはRNA配列決定に加えて、多数の患者では、選択したgDNAシーケンスを多量の分析は、同時に診断に大きな展望を提供しています。ここでは、ミディアムスループットシークエンシングデバイス（材料/機器の表）と同時に24人の患者の11の完全な遺伝子を研究するためにネクストエ...

開示事項

The authors have no conflicts of interest to declare.

謝辞

We thank the Ligue contre le Cancer de Côte d’Or and the Centre Georges-François Leclerc for their financial support. We thank Philip Bastable for the editing of the manuscript.

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
MiSeqIlluminaSY-410-1001Sequencing/medium throughput device
Nextera Enrichment kitIlluminaFC-123-1208Transposase based technology
300 cycle cartridgeIllumina15033624
AMPure beadsBeckman CoulterA63881Magnetic purification beads
Magnetic standAlpaquaA32782
96-well PlatesLife Technologies4306737
MIDI 96-well platesBioradAB0859
Microseal ABioradMSA-5001This seal is necessary only for PCR amplification. Other standard seals can be used throughout the experiment
MiSeqIlluminaProvided with the sequencing device
Experiment Manager software
Internet adress: http://designstudio.illumina.com/NexteraRc/project/new
Manufacturer website tool

参考文献

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