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要約

This video shows the basic steps for performing whole transcriptome analysis on dissected chick embryonic spinal cord samples after transfection with in ovo electroporation.

要約

In ovo electroporation of the chick neural tube is a fast and inexpensive method for identification of gene function during neural development. Genome wide analysis of differentially expressed transcripts after such an experimental manipulation has the potential to uncover an almost complete picture of the downstream effects caused by the transfected construct. This work describes a simple method for comparing transcriptomes from samples of transfected embryonic spinal cords comprising all steps between electroporation and identification of differentially expressed transcripts. The first stage consists of guidelines for electroporation and instructions for dissection of transfected spinal cord halves from HH23 embryos in ribonuclease-free environment and extraction of high-quality RNA samples suitable for transcriptome sequencing. The next stage is that of bioinformatic analysis with general guidelines for filtering and comparison of RNA-Seq datasets in the Galaxy public server, which eliminates the need of a local computational structure for small to medium scale experiments. The representative results show that the dissection methods generate high quality RNA samples and that the transcriptomes obtained from two control samples are essentially the same, an important requirement for detection of differential expression genes in experimental samples. Furthermore, one example is provided where experimental overexpression of a DNA construct can be visually verified after comparison with control samples. The application of this method may be a powerful tool to facilitate new discoveries on the function of neural factors involved in spinal cord early development.

概要

OVOエレクトロポレーション部分的にDNAが1-5を構築して、in vivoでの胚の構造をトランスフェクトするための迅速かつ安価な方法を表しているので、ライブ生物に関する遺伝学的研究は、頻繁にモデルとしてニワトリ胚を使用しています。このようpCIG 6または7のPMEとして目的の遺伝子と一緒に蛍光レポーターを含むもの転写物をコードするシストロン性発現ベクターは、下流の分析のための胚を処理する前に、立体顕微鏡下で所望の領域でのトランスフェクションの質の迅速な検証を可能にする。

DNA配列決定における最近の進歩により、これは、RNA配列8,9を用いて、RNAサンプルからデジタル全トランスクリプトーム発現プロファイルを得ることが可能である。したがって、代わりにそのようなin situハイブリダイゼーション 、免疫組織化学および定量PCR、cDNAライブラリーの調製のためよう並列に少数の遺伝子産物の解析を可能にする時間のかかる方法のハイスループットシークエンシングは、全トランスクリプトームの情報を提供することができる。一つ一つの遺伝子の発現レベルに対する影響の実験的観察は、次に使用される構築物によって改変経路に対する強力な洞察を提供してもよい。使用される生物ゲノム....

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プロトコル

1.エレクトロポ卵内 HH12-13鶏胚の神経管への関心のコンストラクト

トランスフェクションの満足できるレベルを有する個体の迅速な同定を可能にするために、好ましくはシストロン性転写物に、蛍光レポーターを使用するか、またはインターカレーウイルス2Aペプチド11で目的のタンパク質に融合した。注:この段階のための典型的なインキュベーション時間は37.8℃で、周りの48時間である。

  1. ×1 1/2針18のGに結合された注射器でアルブミンの3ミリリットルを取り除いた後、卵に小さなウィンドウを開きます。胚の可視化を強化するために、胚1-4の下の滅菌リンゲル液中で1:50に希釈インド少量のインクを噴射する。
  2. 無菌のリンゲル液で胚をカバーした後、それが満杯になるまで神経管の後端を通しての2.5μg/μlのDNAを含む10mMのTris-HCl、pHが8.2と0.1%の食品色素(F、D&C)溶液を注入後脳領域まで。 、腹部に沿って4ミリメートル1離れた位置の白金電極(直径0.5mm)をエレクトロポレーションし、それら4の間に100ミリ秒の間隔で5〜50ミリ秒のパルス及び20 Vを送達する。
  3. エレクトロポレーション後、彼らはステージHH23に達するまでより48時間操作された胚をインキュベートし、蛍光実体顕微鏡下に横腹領域において、トラ....

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結果

記載された方法を検証するために、2つの対照サンプルは、空のベクターのPME 7とインサートニワトリSCRT2 18のジンクフィンガードメインをコードSCRT2-ZNFの構築を含む同じベクターでトランスフェクトされた胚から1つのサンプルを用いてエレクトロポレーション胚から生成した。各11-22μgのトータルRNAを得た試料は、8〜12の胚のプールから得た。すべての3つのサンプルは、高品.......

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ディスカッション

ここでは、鶏脊髄のエレクトロポレーション後の効果を分析するためのガイドラインを提供する。 DNAベクターのエレクトロポレーションは、より頻繁に目的の遺伝子を過剰発現するために使用されるが、一方はまた、遺伝子機能のノックダウン条件19-21を生成するために、siRNAのためのドミナントネガティブ、quimericタンパク質または前駆体をコードする構築物を使用することができ?.......

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開示事項

The authors have nothing to disclose.

謝辞

CYIY is supported by FAPESP (2012/14421-5) and FMV is supported by a fellowship from FAPESP (2009/53695-0). We thank the DNA Technologies Core at University of California, Davis for preparation and sequencing of the RNA-Seq libraries used in this work, the Galaxy team for providing an excellent and free interface for high-throughput sequencing data analysis tools and Dr. Marianne Bronner for allowing us to film in her laboratory space.

....

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資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Indian inkAny supplier
18G x 1 1/2 needleBD305196
3 ml syringeBD309657
TrisMP Biomedicals819620
F D & C Blue 1Spectra Colors Corporation5.FC.0010P0Food Dye used to visualize DNA injection
Ringer's solution (1 L)
     - 7.2 g NaClSigma-AldrichS-9888
     - 0.37 g KClSigma-AldrichP-4504
     - 0.225 g CaCl2•2H2OFisher Scientific10043-52-4
     - 0.217 g Na2HPO4.7H2OSigma-AldrichS-9390
     - 0.02 g KH2PO4Sigma-AldrichP-5379
     - ddH2O to 800 ml and adjust pH to 7.4
     - ddH2O to 1 L
     - Filter and autoclave
PBS (Phosphate Buffered Solution) (1 L)
     - 8 g NaClSigma-AldrichS-9888
     - 0.2 g KClSigma-AldrichP-4504
     - 1.15 g Na2HPO4•7H2OSigma-AldrichS-9390
     - 0.2 g KH2PO4Sigma-AldrichP-5379
     - ddH2O to 800 ml and adjust pH to 7.2
     - ddH2O to 1 L and filter
     - 1 ml DEPC (Diethylpyrocarbonate)Sigma-AldrichD-5758
     - Shake vigorously and let stand overnight at room temperature
     - Autoclave
Sieved spoonAny supplier
Sterile 60 x 15 mm polystirene Petri dishesCorning Life Sciences351007
RNaseZap RNase decontamination solutionLife TechnologiesAM9780
Fine point surgical scissorsAny supplier
Straight fine point tweezersAny supplier
Pulled glass needle made from 1.1 x 75 mm glass capillary tubesKimble Chase40A502
9'' glass Pasteur pipetteAny supplier
Manual pipette pumpAny supplier
Clear 1.5 ml microcentrifuge polypropilene tubesCorning Life SciencesMCT-150-C
MicrocentrifugeAny supplier
RNAlater solution for RNA stabilizationLife TechnologiesAM7020
RNAqueous total RNA isolation kitLife TechnologiesAM1912
Molecular Biology Grade EthanolAny supplier
RNA 6000 Nano KitAgilent Technologies5067-1511
2100 Electrophoresis Bioanalyzer InstrumentAgilent TechnologiesG2939AA
Truseq RNA Sample Preparation Kit v2IlluminaRS-122-2001/RS-122-2002

参考文献

  1. Itasaki, N., Bel-Vialar, S., Krumlauf, R. Shocking' developments in chick embryology: electroporation and in ovo gene expression. Nat. Cell Biol. 1 (8), 207-20 (1999).
  2. Krull, C. E. A primer on using in ovo electroporation to analyze gene function. Dev. Dyn....

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