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Method Article
This video shows the basic steps for performing whole transcriptome analysis on dissected chick embryonic spinal cord samples after transfection with in ovo electroporation.
In ovo electroporation of the chick neural tube is a fast and inexpensive method for identification of gene function during neural development. Genome wide analysis of differentially expressed transcripts after such an experimental manipulation has the potential to uncover an almost complete picture of the downstream effects caused by the transfected construct. This work describes a simple method for comparing transcriptomes from samples of transfected embryonic spinal cords comprising all steps between electroporation and identification of differentially expressed transcripts. The first stage consists of guidelines for electroporation and instructions for dissection of transfected spinal cord halves from HH23 embryos in ribonuclease-free environment and extraction of high-quality RNA samples suitable for transcriptome sequencing. The next stage is that of bioinformatic analysis with general guidelines for filtering and comparison of RNA-Seq datasets in the Galaxy public server, which eliminates the need of a local computational structure for small to medium scale experiments. The representative results show that the dissection methods generate high quality RNA samples and that the transcriptomes obtained from two control samples are essentially the same, an important requirement for detection of differential expression genes in experimental samples. Furthermore, one example is provided where experimental overexpression of a DNA construct can be visually verified after comparison with control samples. The application of this method may be a powerful tool to facilitate new discoveries on the function of neural factors involved in spinal cord early development.
OVOエレクトロポレーションで部分的にDNAが1-5を構築して、in vivoでの胚の構造をトランスフェクトするための迅速かつ安価な方法を表しているので、ライブ生物に関する遺伝学的研究は、頻繁にモデルとしてニワトリ胚を使用しています。このようpCIG 6または7のPMEとして目的の遺伝子と一緒に蛍光レポーターを含むもの転写物をコードするシストロン性発現ベクターは、下流の分析のための胚を処理する前に、立体顕微鏡下で所望の領域でのトランスフェクションの質の迅速な検証を可能にする。
DNA配列決定における最近の進歩により、これは、RNA配列8,9を用いて、RNAサンプルからデジタル全トランスクリプトーム発現プロファイルを得ることが可能である。したがって、代わりにそのようなin situハイブリダイゼーション 、免疫組織化学および定量PCR、cDNAライブラリーの調製のためのように並列に少数の遺伝子産物の解析を可能にする時間のかかる方法のハイスループットシークエンシングは、全トランスクリプトームの情報を提供することができる。一つ一つの遺伝子の発現レベルに対する影響の実験的観察は、次に使用される構築物によって改変経路に対する強力な洞察を提供してもよい。使用される生物ゲノム....
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1.エレクトロポ卵内 HH12-13鶏胚の神経管への関心のコンストラクト
トランスフェクションの満足できるレベルを有する個体の迅速な同定を可能にするために、好ましくはシストロン性転写物に、蛍光レポーターを使用するか、またはインターカレーウイルス2Aペプチド11で目的のタンパク質に融合した。注:この段階のための典型的なインキュベーション時間は37.8℃で、周りの48時間である。
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記載された方法を検証するために、2つの対照サンプルは、空のベクターのPME 7とインサートニワトリSCRT2 18のジンクフィンガードメインをコードSCRT2-ZNFの構築を含む同じベクターでトランスフェクトされた胚から1つのサンプルを用いてエレクトロポレーション胚から生成した。各11-22μgのトータルRNAを得た試料は、8〜12の胚のプールから得た。すべての3つのサンプルは、高品.......
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ここでは、鶏脊髄のエレクトロポレーション後の効果を分析するためのガイドラインを提供する。 DNAベクターのエレクトロポレーションは、より頻繁に目的の遺伝子を過剰発現するために使用されるが、一方はまた、遺伝子機能のノックダウン条件19-21を生成するために、siRNAのためのドミナントネガティブ、quimericタンパク質または前駆体をコードする構築物を使用することができ?.......
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The authors have nothing to disclose.
CYIY is supported by FAPESP (2012/14421-5) and FMV is supported by a fellowship from FAPESP (2009/53695-0). We thank the DNA Technologies Core at University of California, Davis for preparation and sequencing of the RNA-Seq libraries used in this work, the Galaxy team for providing an excellent and free interface for high-throughput sequencing data analysis tools and Dr. Marianne Bronner for allowing us to film in her laboratory space.
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Indian ink | Any supplier | ||
18G x 1 1/2 needle | BD | 305196 | |
3 ml syringe | BD | 309657 | |
Tris | MP Biomedicals | 819620 | |
F D & C Blue 1 | Spectra Colors Corporation | 5.FC.0010P0 | Food Dye used to visualize DNA injection |
Ringer's solution (1 L) | |||
- 7.2 g NaCl | Sigma-Aldrich | S-9888 | |
- 0.37 g KCl | Sigma-Aldrich | P-4504 | |
- 0.225 g CaCl2•2H2O | Fisher Scientific | 10043-52-4 | |
- 0.217 g Na2HPO4.7H2O | Sigma-Aldrich | S-9390 | |
- 0.02 g KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P-5379 | |
- ddH2O to 800 ml and adjust pH to 7.4 | |||
- ddH2O to 1 L | |||
- Filter and autoclave | |||
PBS (Phosphate Buffered Solution) (1 L) | |||
- 8 g NaCl | Sigma-Aldrich | S-9888 | |
- 0.2 g KCl | Sigma-Aldrich | P-4504 | |
- 1.15 g Na2HPO4•7H2O | Sigma-Aldrich | S-9390 | |
- 0.2 g KH2PO4 | Sigma-Aldrich | P-5379 | |
- ddH2O to 800 ml and adjust pH to 7.2 | |||
- ddH2O to 1 L and filter | |||
- 1 ml DEPC (Diethylpyrocarbonate) | Sigma-Aldrich | D-5758 | |
- Shake vigorously and let stand overnight at room temperature | |||
- Autoclave | |||
Sieved spoon | Any supplier | ||
Sterile 60 x 15 mm polystirene Petri dishes | Corning Life Sciences | 351007 | |
RNaseZap RNase decontamination solution | Life Technologies | AM9780 | |
Fine point surgical scissors | Any supplier | ||
Straight fine point tweezers | Any supplier | ||
Pulled glass needle made from 1.1 x 75 mm glass capillary tubes | Kimble Chase | 40A502 | |
9'' glass Pasteur pipette | Any supplier | ||
Manual pipette pump | Any supplier | ||
Clear 1.5 ml microcentrifuge polypropilene tubes | Corning Life Sciences | MCT-150-C | |
Microcentrifuge | Any supplier | ||
RNAlater solution for RNA stabilization | Life Technologies | AM7020 | |
RNAqueous total RNA isolation kit | Life Technologies | AM1912 | |
Molecular Biology Grade Ethanol | Any supplier | ||
RNA 6000 Nano Kit | Agilent Technologies | 5067-1511 | |
2100 Electrophoresis Bioanalyzer Instrument | Agilent Technologies | G2939AA | |
Truseq RNA Sample Preparation Kit v2 | Illumina | RS-122-2001/RS-122-2002 |
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