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Method Article
ここでは、繊維のグラデーション組織とのエレクトロスピンナノファイバー足場を作製し、細胞形態/方向を調節することでアプリケーションを探求するプロトコルを提示する。ナノファイバー足場の物理的および化学的性質に関して勾配が生物医学分野での幅広い用途を提供する。
The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible applications in controlling cell morphology/orientation. Nanofiber organization is controlled with a new fabrication apparatus that enables the gradual decrease of fiber organization in a scaffold. Changing the alignment of fibers is achieved through decreasing deposition time of random electrospun fibers on a uniaxially aligned fiber mat. By covering the collector with a moving barrier/mask, along the same axis as fiber deposition, the organizational structure is easily controlled. For tissue engineering purposes, adipose-derived stem cells can be seeded to these scaffolds. Stem cells undergo morphological changes as a result of their position on the varied organizational structure, and can potentially differentiate into different cell types depending on their locations. Additionally, the graded organization of fibers enhances the biomimicry of nanofiber scaffolds so they more closely resemble the natural orientations of collagen nanofibers at tendon-to-bone insertion site compared to traditional scaffolds. Through nanoencapsulation, the gradated fibers also afford the possibility to construct chemical gradients in fiber scaffolds, and thereby further strengthen their potential applications in fast screening of cell-materials interaction and interfacial tissue regeneration. This technique enables the production of continuous gradient scaffolds, but it also can potentially produce fibers in discrete steps by controlling the movement of the moving barrier/mask in a discrete fashion.
ナノファイバーは、その構造および相対的な大きさ1で、細胞外マトリックスを模倣する能力の組織工学のための人気のユーティリティである。しかし、このような腱から骨挿入部位のようないくつかの天然の組織界面は、腱に向かって整列して増加し、骨部位2-5で減少する可変の組織構造を示すコラーゲン線維を含む。そこで、効果的な組織再生のための効果的な構造勾配を模倣し得る足場を作製する必要がある。
以前は、具体的には、ミネラル含有量6ファイバー組成が徐々に変化に行われた研究があった。しかし、結合組織の構造成分を再現することは、主に未踏のまま。以前の研究は、ラット頭蓋冠骨芽細胞の増殖に対する表面のシリカ粒子密度の効果を研究することによって、形態学的勾配を調べ、インバーを発見シリカ粒子密度及び細胞増殖7とそれの関係。しかし、以前の研究では、細胞増殖を媒介する形態学的変化は、繊維組織変更7,8を模倣で能力を欠いている粗さを表面主に関連していた。最近の研究では、9をエレクトロスピニングするための新規なコレクタを使用して、ユニークなコラーゲン繊維の配向を模倣する足場を作製することを試みた。この研究は、両方の整列とランダム繊維と足場を生産することに成功したが、それはネイティブの組織に展示漸進的な変化を模倣することができなかった。また、ランダムな向きに整列からの即時変更で、個別のコ....
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ソリューションの調製
2.装置の準備
3.エレクトロ
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このプロトコルを使用して、組織的な勾配を有する繊維マットを形成した。 図3は、ナノファイバー足場上の様々な位置で撮影したSEM像を示す。定性的には、これは6mmで( 図3D)でのランダム繊維品揃え0ミリメートル( 図3A)で一軸整列した繊維からの進行があると判断することができる。 FFTは繊維配列に定量値を与え、定量的なプロセスに関する詳細.......
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The most critical part of the protocol is generation of the gradient scaffold. It is imperative that the mask covering the collector moves at a constant velocity so there is a gradual change within the fiber scaffold. The correct preparation of PCL solution is also important to ensure electrospinning success. Checking the fiber morphology prior to electrospinning is recommendable, especially after the encapsulation of Coumarin-6, which may require a higher voltage to electrospin correctly.
Fu.......
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The authors have nothing to disclose.
この作品は、ネブラスカ大学医療センターと国立衛生研究所(助成金番号1R15 AR063901-01)からスタートアップ資金から部分的にサポートされていました。
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Name | Company | Catalog Number | Comments |
Polycaprolactone | Sigma-Aldrich | 440744 | |
N,N-Dimethlyformamide | Fisher Chemical | D-119-1 | |
Dichloromethane | Fisher Chemical | AC61093-1000 | |
Coumarin 6 | Sigma-Aldrich | 546283 | |
Adipose Derived Stem Cells | Cellular engineering Technologies | HMSC.AD-100 | |
Fetal Bovine Serum | Life Technologies | 26140-111 | |
Fluorescein Diacetate | Sigma-Aldrich | F7378 | |
Ethanol | Sigma-Aldrich | E7023 | |
Trypsin-EDTA | Invitrogen | 25300-054 | |
α-Modified Eagle's Medium | Invitrogen | a10490-01 | |
Acetone | Fisher Scientific | s25120a | |
Phosphate Buffered Saline | Invitrogen | 10010023 | |
Glass Slides | VWR international, LLC | 101412-842 | |
Syringe Pump | Fisher Scientific | 14-831-200 | Single syringe |
Ultrasonic Cleaner | Branson | 1510 | |
High Voltage DC Power Supply | Gamma High Voltage Research | ES30 | |
Scanning Electron Microscope | FEI | Nova 2300 | |
Fluorescence Microscope | Zeiss | Axio Imager 2 |
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