JoVE Logo

サインイン

このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

Here we describe a simplified protocol for microRNA (miRNA) expression analyses in archived Formalin-Fixed, Paraffin-Embedded (FFPE) or fresh frozen prostate cancer (PCa) clinical tissues employing quantitative real-time PCR (RT-PCR) and in situ hybridization (ISH).

要約

前立腺癌(PCA)臨床管理における重要な課題は、疾患のスクリーニング、診断、予後および治療のために現在使用されているバイオマーカーの不足によってもたらされています。近年では、マイクロRNA(miRNA)は、前立腺癌の診断および予後のための有望な代替バイオマーカーを浮上しています。しかし、前立腺癌のための有効なバイオマーカーとしてのmiRNAの開発が重く、臨床組織におけるそれらの正確な検出に依存しています。 miRNAは、多くの場合、腫瘍の不均一性、サンプリングエラー、間質汚染などのmiRNAは、組み合わせのを使用して、アーカイブFFPEや新鮮凍結前立腺癌臨床検体で分析するために、この記事の目的は、単純化されたワークフローを記述することであるために挑戦された前立腺癌臨床検体で分析します定量的リアルタイムPCR(RT-PCR)、およびインサイチュハイブリダイゼーション (ISH)。このワークフローの中で、私たちは、FFPEからのmiRNA抽出のための既存の方法論や凍結前立腺TISSUを最適化ESおよび発現は、タックマン・プローブベースのmiRNA RT-PCRにより分析します。ベースのプローブ - 加えて、我々は、ISHのための最適化された方法は、ロックされた核酸(LNA)を使用して、前立腺組織においてformiRNA検出を分析記述する。我々の最適化されたmiRNAのISHプロトコールは、前立腺癌組織スライドまたは前立腺癌組織マイクロアレイ(TMA)に適用することができます。

概要

前立腺がんは男性の癌関連死亡率の主要な原因の一つである一般的に診断男性悪性腫瘍です。米国では、推定220800新たな症例と27540人の死亡は2015年1に報告されます。

前立腺癌は、腫瘍が無痛または非常に積極的であることができcourse-非常に可変性疾患を有する不均質な疾患です。前立腺癌の臨床管理における重要な課題は、疾患のスクリーニング、診断、予後および治療​​2のために現在使用されている方法/バイオマーカーの不足によってもたらされています。現在のスクリーニング方法は、前立腺生検3に続く前立腺特異抗原(PSA)試験及び直腸指診(DRE)が挙げられます。前立腺特異抗原(PSA)は、有意に臨床管理及び改善された生存率4に革命をもたらした最も広く使用されている前立腺癌のバイオマーカーです。しかし、LACを含むPSAの固有の制限のために特異性、PSAに基づくスクリーニングのkは診断の上、および疾患の治療の上につながっています。このビューでは、集中的な取り組みは、特に疾患の攻撃を予測し、より良い治療法の決定に4,5を駆動することができる、別の前立腺癌バイオマーカーの探索に向けられています。過去数年にわたり、マイクロRNA(miRNA)は、有望な代替前立腺癌バイオマーカーとして浮上しています。

マイクロRNA(miRNA)は、同族のmRNA標的の3 '非翻訳領域(UTR)との配列特異的相互作用を介して転写後の遺伝子発現を抑制する小さな非コードRNAの進化的に保存されたクラスを構成します。これは、mRNAの> 60%が6のmiRNAの標的を保存していると推定されます。 miRNA遺伝子は、遺伝子間領域内またはタンパク質/非タンパク質コード遺伝子のイントロン7またはエクソン内に位置しています。これらの遺伝子は優先的プリマに、RNAポリメラーゼIIによって転写されますヘアピン状のステムループ二次構造を形成RYのmiRNA(数キロベースの長いPRI-miRNAは、)。これらのpri-miRNAは、細胞質に輸送し、さらに成熟miRNA(18〜25ヌクレオチド長)8-10に加工された前駆体のmiRNA(プレmiRNAは、60〜75ヌクレオチド長)に加工されています。 miRNAは、増殖、発生、分化およびアポトーシスを11などの主要な細胞プロセスを調節します。研究では、前立腺癌12-15を含む種々のヒト悪性腫瘍におけるmiRNA発現プロファイルの広範な調節不全を示唆しています。 miRNA発現プロファイルは、広く原発性および転移性前立腺癌において異常調節されることが報告されています。改変されたmiRNAの発現は、前立腺癌の進行、攻撃性とのmiRNA 12,14,16-19の予後の可能性を強調再発とリンクされています。証拠の成長体は、miRNAが、前立腺癌の発生、発達、進行中の重要な機構的な役割を果たしていることを示していますイオンおよび転移。全体的に、miRNAは、前立腺腫瘍12の層別化に正常組織および癌組織と援助とを区別することができる前立腺癌の診断および予後のための有望な代替のバイオマーカーを浮上しています。また、miRNAは、前立腺癌20に対する有効な治療薬の開発のための重要な標的です。

その小さなサイズと、内因性RNase活性に対する抵抗性のために、miRNAは、容易に、ホルマリン固定組織21及び22の前立腺生検で検出することができる安定したバイオマーカーです。さらに、miRNAの発現プロファイルは、凍結およびホルマリン固定組織で比較されており、21強く相関することが見出されています。しかし、前立腺癌臨床組織においてmiRNA発現プロファイリングはしばしば重くRELI前立腺癌のための有効なバイオマーカーとしてなど、エラーをサンプリングする、腫瘍の不均一性に起因するmiRNAの開発を間質汚染を挑戦され臨床組織における自分の正確な検出にES。ここでは、アーカイブFFPEまたは新鮮凍結前立腺癌臨床検体でmiRNA発現プロファイリングのための私たちの研究室で使用される単純化されたワークフローについて説明します。我々は、定量的リアルタイムPCRの組み合わせを採用したmiRNAのためのin situハイブリダイゼーション旧得、より定量的な情報および組織の配列に潜在的なmiRNAバイオマーカーの発現差異を可視化するため、後者で、臨床検体の分析。このワークフローの中で、私たちはFFPE、凍結前立腺組織からのmiRNA抽出のための既存の方法論を最適化し、式はロックされた核酸(LNA)を用いたin situ ハイブリダイゼーション技術でのTaqmanプローブベースのmiRNA RT-PCRおよびmiRNAの分析により、プローブ23をベース。 LNAベースのプローブは、DNAまたはRNA-ベースのプローブと比較して増加した感度と特異性を提供し、すべてのmiRNA配列のロバストな検出を可能に関係なく、GC含量のもdiscriminaを許可miRNAファミリーのる。我々の最適化されたmiRNAのISHプロトコールは、miRNAバイオマーカーの発見を加速する可能性を提供し、後者で、前立腺癌組織スライドまたは前立腺癌組織マイクロアレイ(TMA)に適用することができます。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

プロトコル

ホルマリン固定パラフィン包埋(FFPE)または新鮮な凍結前立腺癌試料はSFVAMCから得ました。サンプルはSFVAMCで根治的前立腺切除術を受けた前立腺癌患者からのものでした。書面によるインフォームドコンセントがすべての患者から得られたものであり、研究はヒト研究に関するUCSF委員会により承認されました。代替的に、前立腺癌組織マイクロアレイは、商業的供給源から入手し、miRNAはISHによって分析のために使用しました。分析前立腺癌患者のための臨床病理学的およびフォローアップ情報を収集しました。

1.組織サンプル

  1. 製造業者のプロトコルに従ってH&Eとのミクロトームや染色を用いて10μmの切片に前立腺癌組織サンプルをカットします。
  2. 前立腺がん病巣の同定のための染色スライドだけでなく、隣接する正常な腺上皮を確認します。
    注意:ボード認定病理医は、H&E染色スライドとミリアンペアを確認する必要があります腫瘍および正常領域に対するRK。 miRNAのための後続のセクションのガイドが通常のエリア対腫瘍から分析するとマークされたスライドを使用してください。

定量的リアルタイムPCRによる2 miRNA発現解析

注意:レーザーキャプチャーマイクロダイセクション、(miRNAおよびmRNAを含む)全RNAを単離し、次のセクションで説明するようにTaqMan(登録商標)マイクロRNA発現アッセイを用いて、成熟miRNAのアッセイ:このワークフローは、以下の工程を含みます。

  1. RNA抽出
    1. 前立腺癌FFPE組織からのmiRNAの単離
      1. レーザーキャプチャーマイクロダイセクション(LCM)
        注:化学ヒュームフードの手順2.1.1.1.1- 2.1.1.1.4を実行します。
        1. LCMのための組織スライド(10μmのセクション)を準備します。 10分ごとに、(2×)キシレンに浸してDeparrafinize組織切片を、蒸留に続く段階的エタノール(100%、95%、90%、80%、70%)で各5分間、スライドをインキュベートすることにより組織を再水和水(5分)。
        2. 再水和後、30秒間ヘマトキシリン​​で染色のセクションでは、続いて水。
        3. 段階的なエタノール(70%、95%、90%、80%、70%)(各5分)およびキシレン(5分)に入れ組織。
        4. その後、ドライヒュームフード内スライドとは、顕微解剖用のLCM器に置きます。
        5. 製造元の指示24に従ってLCMシステムとmicrodissectionsを実行します。病理医が前立腺がん病巣だけでなく、隣接する正常組織の同定のためのガイドとしてスライドをマークアップされた使用します。 70〜90ミリワットの電力で10〜20ミクロンの直径のパルスのレーザービームを使用してください。
        6. LCMキャップ上に赤外線レーザーパルスで関心領域をキャプチャします。サンプルあたりのmiRNA抽出に2-5キャップから細胞を組み合わせます。抽出したRNAの完全性を確保するために、すぐにmiRNAの抽出のために捕獲された細胞を処理します。
        7. 代替的に、miRNAの抽出緩衝液中の溶解細胞(メーカーのプロトコールに従って)およびSTO-80ºCで溶解物の再。
      2. LCMマイクロダイセクション組織からのmiRNA抽出と分析
        1. 製造者の指示に従って市販のキットを使用して、顕微解剖FFPE組織から全RNAを抽出します。
          注:レーザーキャプチャーmiscrodissectionからのRNAの収量は、典型的には低いです。したがって、RNAは、少量(20〜30μL)中に溶出し、製造業者の指示に従ってタックマンマイクロRNA発現アッセイを用いた発現プロファイリング(また、セクション2.2に記載されている)のために使用されます。成熟miRNAのリアルタイムPCR検出のための入力RNAの最適化は、溶出されたRNAの5マイクロリットルを各miRNA特異的逆転写反応のために最適であることを示唆しています。内因性の対照として、RNU48 / RNU24が使用されます。コントロール反応のために、溶出されたRNAの2μlの逆転写反応に使用されます。
    2. 前立腺癌凍結組織からのmiRNAの単離
      1. Homoge乳鉢と乳棒を用いて液体窒素中で組織を粉砕することにより凍結切除した前立腺組織をnize。冷却されたスパチュラを用いてマイクロチューブにホモジナイズした組織を転送します。組織は簡単に転送することができるように均質化し、液体窒素中に浸漬することにより、同じ温度で、乳鉢/乳棒とへらを維持します。
      2. ホモジナイズした組織に商業グアニジンイソチオシアネート - フェノール試薬(組織を1ml / 0.1 g)を加え、室温で5分間インキュベートします。
        注:商業グアニジンイソチオシアネート - フェノール試薬中でホモジナイズした組織は、数ヶ月間-80ºCで保存することができます。
      3. ホモジネート(0.2ミリリットルのクロロホルム/ mlの)にクロロホルムを加え、30秒間激しく振ります。 4ºCで20分間10,000×gで遠心分離し、3〜5分間、室温でサンプルをインキュベートします。
      4. 新しい滅菌RNaseフリー1.5mlチューブに上部の水相を転送します。
      5. イソプロピルアルコールを等量加えます。 10マイルのために混合し、インキュベートnはRTでRNAをペレットに4ºCで20分間12,000×gで遠心分離しました。
      6. 上清を吸引し、70%エタノール1mLでRNAペレットを洗浄します。 4ºCで10分間12,000×gで遠心分離します。
      7. 慎重に上清を吸引。 5〜10分間室温で乾燥RNAペレット。 50〜100μlのヌクレアーゼフリー水でRNAを溶解します。
      8. ナノドロップ分光光度計を用いてRNAの定量化を行い、バイオアナライザーとRNAの完全性を決定します。 10 NG /μlにRNA濃度を調整します。 PCR分析リアルタイム(2.2節)に続いてmiRNA-特異的cDNA反応のために10〜50 ngのRNAを使用してください。
  2. miRNA発現解析のための定量的リアルタイムPCR
    注:以下に記載されるように、二段階RT-PCRプロトコルを用いて成熟miRNAをアッセイ。
    1. 逆転写(RT)
      1. 製造者の指示に従い、miRNAの逆転写キットを用いてRNAからcDNAを逆転写。マイクロRNAアッセイおよびRTキットからのmiRNA特異的プライマーを用いて全RNAの10〜50 ngのを使用してください。コントロールとしてRNU48 / RNU24 / RNU6Bを使用してください。 (分析miRNAの豊富さに応じて)1:10 5次のステップで説明するように、リアルタイムPCR検出に使用します。cDNAの1を希釈します。
    2. 成熟miRNAの検出のためのリアルタイムPCR
      1. 製造者の指示に従い、高速ユニバーサルマスターミックスを用いてマイクロRNAアッセイを用いてcDNA試料からPCR産物を増幅します。 RNU48 / RNU24 / RNU6Bコントロールにサンプルを正規化します。高速リアルタイムPCRシステム上の遺伝子発現の相対的変化を計算するために、比較Ct(閾値サイクル)メソッドを使用します。三連で各サンプルを分析します。

in situハイブリダイゼーション (ISH) では 3. miRNA発現解析

  1. 組織の前処理
    1. ミクロトームを用いてFFPE前立腺癌組織ブロックから5μmの切片をカットします。
    2. は1時間56℃でスライドをインキュベートすることにより、組織切片を固定してください。
      注:スライドは、miRNA分析のために数週間室温で保存することができます。
    3. 15分ごとに、キシレン(2×)でスライドを浸すことによって、組織をDeparrafinize。
    4. 蒸留水(5分間)、続いて段階的なエタノール(100%(2倍)、95%、90%、80%、70%)中で5分間ずつスライドをインキュベートすることにより組織を再水和します。
    5. 室温で20分間PBS中の4%パラホルムアルデヒドでスライドを修正しました。
    6. それぞれ5分間、室温でPBS(2×)でスライドを洗浄します。
    7. 予熱したプロテイナーゼKバッファー中で10分間(5 mMのトリス塩酸pH7.4の、1mMのEDTA、1 mMのNaCl)で、37ºCで10 / mlのプロテ​​イナーゼKでスライドを扱います。
    8. プロテイナーゼK処理後、30秒間、PBS中0.2%グリシンを有するスライドをすすぎます。
    9. 5分間室温でPBS(1×)でスライドを洗浄します。
    10. 15分間PBS中の4%パラホルムアルデヒドでスライドを修正しました。
    11. スライドをすすぎで5分間、PBS。
  2. ハイブリダイゼーション
    1. 加湿チャンバー内55ºCで3〜4時間、プレハイブリダイゼーション溶液でスライドをプレハイブリダイズします。加湿チャンバーを維持するために、50%ホルムアミド/ 50%5×SSCに浸した組織ラボワイプを使用してください。
    2. ハイブリダイゼーション緩衝液中の20〜50 nMの濃度で5 'ジゴキシゲニン標識プローブを使用してください。 、miRNA特異的プローブ(20〜50 nM)を、小さな核RNA U6コントロールプローブ(20 nM)を希釈して4分間90ºCでの熱、氷の上に置き、冷ハイブリダイゼーション緩衝液(2-4 NG /μLを氷に追加)。
    3. プローブ特異的ハイブリダイゼーション温度で12〜16時間インキュベート、ハイブリダイゼーション溶液(プローブ+ハイブリダイゼーション緩衝液、スライドあたり100μl)を追加し、プレハイブリダイゼーション溶液を除去(ハイブリダイゼーション温度= Tmのプローブ-21ºC)。加湿チャンバー(50%ホルムアミド/ 50%5×SSC)でハイブリダイゼーションを行います。
  3. 洗浄工程
    1. 45ºCで10分間の2×SSCでスライドを洗浄します。
    2. ウォッシュトン彼は45ºCで10分間1.5×SSCでスライドします。
    3. 20分ごとに37ºCで0.2×SSCの(2×)でスライドを洗浄します。
    4. 室温で1〜2時間、1×ブロッキング溶液でスライドをインキュベート
  4. 発見
    1. 1でスライドをインキュベート:100 PBSを1-4時間、または一晩、4ºCでAP結合抗ジゴキシゲニン抗体を希釈しました。
    2. 10分ごとに、室温でPBS(3×)でスライドを洗浄します。
    3. 5分ごとに室温でアルカリホスファターゼバッファー(100 mMトリスpHは9.5、50のMgCl 2、100mMのNaCl、0.1%のTween-20)とスライド(2×)で洗浄します。
    4. 1-20時間室温で暗所でのBMパープルAP基質でスライドをインキュベートします。
    5. PBSは、水中0.1%のTween-20および洗浄(2回)を含むでスライドを洗浄します。
    6. メディアのマウント水溶液を使用してスライドをマウントし、顕微鏡で調べます。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

結果

RT-PCRによってLCM原発性前立腺癌臨床検体におけるmiR-203の発現プロファイリング分析(図1)

RT-PCRは、LCM原発性前立腺癌組織中のmiR-203の相対的発現の分析及びコントロールとして使用したSAINI RNU48 15で説明したようにマッチした隣接する正常領域を行いました。以下の表は、隣接する正常組織に比べて前立腺癌腫瘍組織における相対的なのmi...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

ディスカッション

本稿では、アーカイブされたFFPEまたは新鮮凍結前立腺癌臨床組織中のmiRNA発現プロファイリングのための単純化されたワークフローについて説明します。前立腺癌では、いくつかの研究は、前立腺癌の開始、進行および転移におけるマイクロRNAの重要な役割を示唆しています。しかし、矛盾する結果は、多くの場合、miRNAを抽出するので、特定のmiRNA 22で得られると方法は広く異なっ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

開示事項

The authors have no financial disclosures.

謝辞

私たちは、原稿の準備と彼のサポートと支援のための博士ロジャーエリクソンに感謝します。

この作品は、 国立衛生研究所の国立癌研究所によってサポートされていました

(認可番号RO1CA177984; RO1CA138642)、前立腺癌(BX001604)のVAプログラムプロジェクト。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
MicrotomeLeica Biosystems RM2255
Arcturus Autopix for LCMArcturus/ Life TechnologiesLCM1621/LCM1110Alternatively, Arcutus Xt system from Life Technolgies can be used. 
CapSure Macro LCM CapsLife TechnologiesLCM0211
miRNeasy FFPE Kit Qiagen217504
7500 Fast Real-time PCR System Applied Biosystems/ Life Technologies4351106
Taqman MicroRNA Reverse Transcription kit Applied Biosystems/ Life Technologies4366596
Taqman Fast Universal PCR master mix Applied Biosystems/ Life Technologies4352042
DIG labeled LNA probe for U6Exiqon99002-01
BM Purple AP substrateRoche11442074001
Pre-hybridization solution BiochainK2191050-1
Hybridization solution BiochainK2191050-2
Blocking solution BiochainK2191050-8
AP-conjugated anti-digoxigenin antibodyBiochainK2191050-7
Aqueous mounting media Vector Laboratories H-5501  
Trizol (guanidine isothiocyanate-phenol reagent) Life Technologies15596-018
Harris hematoxylinStatlabSL200
Eosin StatlabSL201 

参考文献

  1. Siegel, R. L., Miller, K. D., Jemal, A. Cancer statistics. CA Cancer J Clin. 65 (1), 5-29 (2015).
  2. Shen, M. M., Abate-Shen, C. Molecular genetics of prostate cancer: new prospects for old challenges. Genes Dev. 24 (18), 1967-2000 (2010).
  3. Sequeiros, T., et al. Molecular markers for prostate cancer in formalin-fixed paraffin-embedded tissues. Biomed Res Int. 2013, 283635(2013).
  4. Cary, K. C., Cooperberg, M. R. Biomarkers in prostate cancer surveillance and screening: past, present, and future. Ther Adv Urol. 5 (6), 318-329 (2013).
  5. Sartori, D. A., Chan, D. W. Biomarkers in prostate cancer: what's new. Curr Opin Oncol. 26 (3), 259-264 (2014).
  6. Friedman, R. C., Farh, K. K., Burge, C. B., Bartel, D. P. Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs. Genome Res. 19 (1), 92-105 (2009).
  7. Rodriguez, A., Griffiths-Jones, S., Ashurst, J. L., Bradley, A. Identification of mammalian microRNA host genes and transcription units. Genome Res. 14 (10A), 1902-1910 (2004).
  8. Borchert, G. M., Lanier, W., Davidson, B. L. RNA polymerase III transcribes human microRNAs. Nat Struct Mol Biol. 13 (12), 1097-1101 (2006).
  9. Cai, X., Hagedorn, C. H., Cullen, B. R. Human microRNAs are processed from capped, polyadenylated transcripts that can also function as mRNAs. RNA. 10 (12), 1957-1966 (2004).
  10. Lee, Y., et al. MicroRNA genes are transcribed by RNA polymerase II. EMBO J. 23 (20), 4051-4060 (2004).
  11. Bartel, D. P., et al. MicroRNAs: target recognition and regulatory functions. Cell. 136 (2), 215-233 (2009).
  12. Gordanpour, A., Nam, R. K., Sugar, L., Seth, A. MicroRNAs in prostate cancer: from biomarkers to molecularly-based therapeutics. Prostate Cancer Prostatic Dis. 15 (4), 314-319 (2012).
  13. Hurst, D. R., Edmonds, M. D., Welch, D. R. Metastamir: the field of metastasis-regulatory microRNA is spreading. Cancer Res. 69 (19), 7495-7498 (2009).
  14. Saini, S., Majid, S., Dahiya, R. Diet, microRNAs and prostate cancer. Pharm Res. 27 (6), 1014-1026 (2010).
  15. Saini, S., et al. Regulatory Role of mir-203 in Prostate Cancer Progression and Metastasis. Clin Cancer Res. 17 (16), 5287-5298 (2011).
  16. Ambs, S., et al. Genomic profiling of microRNA and messenger RNA reveals deregulated microRNA expression in prostate cancer. Cancer Res. 68 (15), 6162-6170 (2008).
  17. Martens-Uzunova, E. S., et al. Diagnostic and prognostic signatures from the small non-coding RNA transcriptome in prostate cancer. Oncogene. 31 (8), 978-991 (2012).
  18. Porkka, K. P., et al. MicroRNA expression profiling in prostate cancer. Cancer Res. 67 (13), 6130-6135 (2007).
  19. Schaefer, A., et al. Diagnostic and prognostic implications of microRNA profiling in prostate carcinoma. Int J Cancer. 126 (5), 1166-1176 (2010).
  20. Maugeri-Sacca, M., Coppola, V., De Maria, R., Bonci, D. Functional role of microRNAs in prostate cancer and therapeutic opportunities. Crit Rev Oncog. 18 (4), 303-315 (2013).
  21. Xi, Y., et al. Systematic analysis of microRNA expression of RNA extracted from fresh frozen and formalin-fixed paraffin-embedded samples. RNA. 13 (10), 1668-1674 (2007).
  22. Lucas, S. M., Heath, E. I. Current challenges in development of differentially expressed and prognostic prostate cancer biomarkers. Prostate Cancer. , 640968(2012).
  23. Singh, S. K., Kumar, R., Wengel, J. Synthesis of Novel Bicyclo[2.2.1] Ribonucleosides: 2'-Amino- and 2'-Thio-LNA Monomeric Nucleosides. J Org Chem. 63 (18), 6078-6079 (1998).
  24. Suh, S. O., et al. MicroRNA-145 is regulated by DNA methylation and p53 gene mutation in prostate cancer. Carcinogenesis. 32 (5), 772-778 (2011).
  25. Shukla, C. J., Pennington, C. J., Riddick, A. C., Sethia, K. K., Ball, R. Y., Edwards, D. R. Laser-capture microdissection in prostate cancer research: establishment and validation of a powerful tool for the assessment of tumour-stroma interactions. BJU Int. 101 (6), 765-774 (2008).
  26. Nelson, P. T., et al. RAKE and LNA-ISH reveal microRNA expression and localization in archival human brain. RNA. 12 (2), 187-191 (2006).
  27. Chen, C., et al. Real-time quantification of microRNAs by stem-loop RT-PCR. Nucleic Acids Res. 33 (20), e179(2005).
  28. Hanna, J. A., et al. Quantitative analysis of microRNAs in tissue microarrays by in situ hybridization. Biotechniques. 52 (4), 235-245 (2012).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

103 RNA PCR

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

個人情報保護方針

利用規約

一般データ保護規則

研究

教育

JoVEについて

Copyright © 2023 MyJoVE Corporation. All rights reserved