単一のタンパク質解像度で高並列ナノ細孔チップシステムにより分析膜輸送プロセス

要約

The presented protocol describes the analysis of membrane protein mediated transport on the single transporter level using pore-spanning solvent-free lipid bilayers. This is achieved by the creation of bulk produced nanopore array chips, combined with highly parallel data acquisition and analysis, enabling the future establishment of membrane protein effector screenings.

要約

転位した基板は、非起電性である場合、単一のタンパク質レベルでの膜タンパク質の輸送はまだ、詳細な分析を忌避します。かなりの努力がこの分野で行われているが、膜トランスポーターの解析に必要な溶媒を含まない脂質二重層の技術と組み合わせて、自動化ハイスループットトランスポート分析を可能にする技術はまれです。トランスポーターのこのクラスは、しかし、細胞の恒常性において非常に重要なので、薬剤開発や新たな洞察を得るための方法論における重要な目標は必死に必要です。

ここで紹介する原稿は、単一のトランスポーター解像度で膜タンパク質媒介輸送プロセスの分析のための新規バイオチップの確立と取り扱いについて説明します。バイオチップは、その設計において非常に平行であり、工業用グレードおよび量で製造することができるナノポアで囲まれたマイクロキャビティから構成されています。プロテイン保有するリポソームは、直接に適用することができますSSM-技術（固体担持脂質膜）を用いた自己組織化細孔スパニング脂質二重層を形成するチップ表面。膜のポア貫通部分は、中またはリアルタイムでマルチスペクトル蛍光読み出しを続けることができ、キャビティ空間のうち基板転位のためのインターフェースを提供し、自立しています。標準作業手順書（SOP）の設立は、機能的に再構成することができる事実上すべての膜タンパク質のチップ表面上のタンパク質-保有脂質二重層の簡単な設置を可能にします。唯一の前提条件は、非起電輸送基質用の蛍光読み出しシステムの確立で​​す。

ハイコンテンツスクリーニング用途は、並行して複数のチップを記録し、自動化倒立蛍光顕微鏡を使用することによって達成できるです。大きなデータセットを自由に利用できるカスタム設計解析ソフトウェアを用いて分析することができます。三色のマルチスペクトル蛍光読み出し、さらに、偽陽性の結果を排除し、別のイベントクラスに公平なデータ判別を可能にします。

チップ技術は、現在のSiO ₂表面に基づいているが、金でコーティングされたチップ表面を使用してさらに官能化することも可能です。

概要

膜タンパク質の分析は、過去20年間で基礎および医薬品の研究のための関心が高まっになっています。新規薬剤の開発は、現在、制限要因の一つである、新たな標的の同定および詳細な特性に依存します。すべての薬物標的の約60％が膜タンパク質¹であるという事実は、最も重要なその機能を解明するための技術の開発を行います。

^{4 -}過去には、起電チャンネルおよびトランスポーターの研究のための技術は、多数の²で開発されてきました。逆における非起電性基板は、より多くの困難な課題を提示します。彼らはカスケード^5のシグナル伝達に重要な受容体などの細胞膜と機能を横切る溶質および栄養素のフラックスを制御するように、彼らは、しかしプライム薬物標的としての特別な関心のです。

かなりの努力がトンの開発に置かれていますechniques膜輸送タンパク質^6、7の機能を研究します。いくつか例を挙げると固体担持脂質二重層、繋留二重層^{11、12、microblack}の脂質膜^13、14およびネイティブベシクルアレイ^15、16を含む^{10、 -}固体支持膜を用いたシステムでは、このフィールド⁸として最も有望なツールを浮上しています。それらのいくつかは、市販のセットアップ^17、18のようにしてもご利用いただけます。いくつかの実施例は、高度に並列に^14、19、スクリーニング用途のための前提条件で単一の膜タンパク質を研究する能力を組み合わせること公開されています。しかし、これらの方法はほとんどの産業環境への基礎研究から橋渡しません。困難は、多くの場合、自動化するシステムの能力は、コストのかかる生産および/または面倒な準備にあります。アプローチoを上記の全ての障害をvercomingすることは、最終的な目標です。

^{22 -}ここで紹介する手法は、単一のタンパク質レベル²⁰に制御された環境で、in vitroで膜チャネルおよびトランスポーターを研究するために開発されました。 ²⁶または黒色脂質膜^{27 -} LUVをに精製された膜タンパク質の再構成は、はるかにGUVs ²³で同等のアプローチよりも確立されています。二重層の形成は自己集合プロセスを介して行われている場合、それらは直接チップ表面に適用することができます。ナノ多孔性チップ（ 図 1）のガラスボトム設計により、システムの簡単な自動化を可能にする空気顕微鏡を可能にします。電動ステージとの組み合わせで複数のチップを、分析のために密封された空洞の数千人を含むビューの各フィールドで、同時に測定することができます。

図 1。多重化されたナノ細孔のバイオチップの設計 A）は、シリコン・オン・インシュレータ（SOI）ウエハを反応性イオンエッチングにより構成されています。約1150個々のチップは、同一の特性と品質。B）各チップは、ナノ開口を備え25万個々のマイクロキャビティを備えるとともに、各ウェハから製造されます。スケールバー：200μmのC）各キャビティは、マルチスペクトル蛍光読み出しを経由してアドレス可能です。 intransparent上層倒立蛍光顕微鏡とバイオチップの互換性行うブロックバッファリザーバからの蛍光シグナルを、D）原子間力顕微鏡（AFM）イメージングが均一に配置された孔の開口部および3.6ナノメートルの二酸化ケイ素層の表面粗さを（明らかに、N = 40）小胞の融合のために最適。スケールバー：5μmのE）走査型電子マイクroscopy（SEM）画像は、シリコンチップ内のフェムトリットルの空洞へのアクセスを可能にするナノ細孔の断面を示しています。この数字は²¹から許可を得て再利用した。 この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。

すべてのデータ分析は、エンドユーザのための無制限のアクセスを保証するためにフリーウェアを使用して実行されます。時系列は、フリーの画像処理ソフトウェアとバッチ処理と曲線の複数の蛍光チャネルおよび何千も大きなデータセットの単純な相関関係を可能にするカスタムビルド曲線分析ソフトウェアを用いて分析します。

このプロトコルで使用されるモデルタンパク質は、E由来大コンダクタンス（MSCL）チャネルタンパク質の機械受容チャネルであります大腸菌 。それは、本質的に浸透圧ショックを放出する弁として機能するが、合理的にSYNT設計ように変更されましたhetic機能は、共有チャネルの収縮側に取り付けることができます。共有結合した活性化剤（MTSET）の電荷反発を経由してチャンネルがナノバルブを作成、開くようにトリガされます。イオン、水、小さなタンパク質だけでなく、小型の蛍光団のような小分子は、チャネルを介して透過することができます。ここでは、タンパク質は、タンパク質媒介転座を検出するシステムの能力を実証するためのモデルとして使用されます。

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プロトコル

大型単層小胞（LUVを）の調製

1. ほこりの粒子を除去するために窒素ガスで丸底フラスコ（10ミリリットルボリューム）清掃してください。エタノールで丸底フラスコをすすぎます。
   注：残留エタノールを許容することができ、その後の工程に支障をきたしません。
2. 任意の汚染を除去するために、クロロホルムで1ミリリットルガラスシリンジの4倍を洗ってください。丸底フラスコにを4ml SoyPC20（クロロホルム中25 mg / mlで）を加え、0.1モル％の最終濃度まで追加のドープ^{ATTO 390}と脂質溶液をドープします。
   注：代わりDOPE ^{ATTO 390、}他のフルオロフォアで標識された脂質または親油性染料も使用することができ、利用可能な励起源に応じ。
3. ロータリーエバポレーターに丸底フラスコを接続します。フラスコのガラス壁上に均一な脂質フィルムを形成するために、300ミリバール、30℃の水浴温度および最大回転速度で40分間、脂質薄膜を乾燥させます。
4. TRANSFER室温でさらに30分間、高真空ポンプ及び乾燥脂質フィルムにフラスコ。
5. そしてフラスコに8ガラスビーズ（2.7 mmの直径、エタノール洗浄し、乾燥させた）; 5ミリリットルバッファー（滅菌濾過した20 mMトリス、150mMのNaCl、pH8.0）に追加します。ロータリーエバポレーターにフラスコを接続し、最大速度で50℃の真空ずに回転させます。
   注：ガラスビーズは、機械的に（多層）小胞の形成をもたらす、ガラス壁に脂質膜を変位。 45分間の回転後、溶液は乳白色表示され、残留脂質フィルムは、フラスコの壁で見えてはいけません。代わりにガラスビーズのフラスコまたは穏やかな再水和法をボルテックスし、水浴ソニファイアーフラスコを超音波処理のような他の方法も適用可能です。
6. 室温で4分間、超音波浴超音波処理に不活性ガス（アルゴン）下でフラスコを転送します。
   注：超音波衝撃波はそれらを単層作り、リポソームを崩壊させます。
7. LUVソリューションを分割します1ミリリットルのアリコートに。
8. 液体窒素中でLUV溶液を凍結することにより5回の凍結/融解サイクルを実行し、水浴中40℃で解凍しました。
   注：これは、破壊につながり、互いに個別のリポソームの自発的な再配置、サイズの増加につながります。
9. -80℃での最後の凍結ステップストアで​​すべてのサンプル。
   注：LUVを、少なくとも6ヶ月間安定です。

2.タンパク質の再構築

1. 氷上で1ミリリットルのLUVアリコートを解凍します。直接再構成する前に、ミニ押出機を用いて400nmのポリカーボネートフィルター膜を通してリポソーム17Xを押し出します。
   注：脂質凝集体が除去され、最終の均一なサイズ分布が達成されます。
2. 0.25％（v / v）の最終濃度（v / v）の4％のTriton X-100の添加によりたLUVを不安定化し、50℃で5分間インキュベートします。
   注：このステップで使用されるリポソームの量は、精製の​​MsCl ^Gの質量に依存します ^{22 Cは （ステップ2.3参照）を使用します。 28に詳細に記載されるように（ 大腸菌由来）のMsCl G 22 Cを精製します 。}
3. 1時20分（w / w）の割合で精製したMSCL ^{G 22 C}と洗剤飽和リポソームを混合し、50℃でさらに30分間インキュベートします。
4. 中のリポソームを不安定化するために使用さμlの洗剤当たり16ミリグラム（湿重量）バイオビーズを用いて、タンパク質/リポソーム溶液に、界面活性剤除去のためのトリス緩衝液（滅菌が濾過さ20mMトリス、150mMのNaCl、pH8.0）にバイオビーズを追加ステップ2.2。
5. 回転板上で4℃で一晩界面活性剤の除去（16時間）を行います。
   注：液の一定の混合は、最適な界面活性剤の除去を確実にします。
6. 4℃での界面活性剤除去ストアのプロテオ後と同じ日に実験に使用します。

3.活性アッセイ

1. タンパク質の再構成時にはdetergent-の100μlのアリコートを取りますステップ2.3を終えた後の不安定化プロテオリポソー​​ム液。
2. タンパク質 - リポソーム溶液にカルセインの1容積（30 mm）を追加し、50℃でさらに5分間インキュベートします。
3. 2.6 - ステップ2.4​​で説明したように、溶液から界面活性剤を除去。
4. 界面活性剤を除去した後、トリス緩衝液（ベッド容積3x）でサイズ排除カラム（20 mlのベッドボリューム以上）平衡化。
   注：プロテオリポソー​​ムの分離は、しかし、分別した後、最高のタンパク質の活性を確保することをお勧めし4°Cで一定のサンプルを保持しながら、室温で行うことができます。
5. サイズ排除カラムに全体の一部（200μl）を適用することにより、自由カルセインから独立したプロテオリポソー​​ム。混合物は重力流を使用して上に連続バッファアプリケーションを介してカラムからプロテオリポソー​​ムの溶出に続いて、カラムに浸透することを可能にします。溶出前にある離散的なオレンジ色のバンドとしてプロテオリポソー​​ムを含むカルセインを観察します。 500＆＃の画分を収集181;それぞれリットル。
   注意：無料カルセイン色素が完全な分離とプロテオリポソー​​ム画分後に溶出します。
6. ピペットのためのマイクロウェルプレート上に各画分の80μlの蛍光アウトを読んで、蛍光発光を経由してカルセイン含むプロテオリポソー​​ムの最高額を含む画分を識別します。 490 nmでの励起と520 nmで蛍光を検出します。以下の活性アッセイのための最高のシグナルでプロテオリポソー​​ム画分を使用してください。
7. 1ミリリットルの蛍光キュベット中で980μlのトリス緩衝液でプロテオリポソー​​ム含有画分を20μlを混ぜます。
8. 分光蛍光光度計を用いて520 nmの（励起490 nm）における蛍光発光を測定します。 1分間記録し、その後、原液（160 mM）のからMTSET25μlの（[2-（トリメチルアンモニウム）エチル] methanethiosulfonate）を加えてよく混ぜます。混合中の記録に保管してください。必ず直接使用前に新鮮なストック溶液を準備します。
   注意：一度バッファMTSET加水分解しで解決30分以内に、Sと非反応性であろう。 MTSETを秤量し、使用するまで-20℃で乾燥粉末としてのアリコートを維持することができます。
   注：一度MSCL ^{G 22 C}チャンネルは、蛍光発光の増加をもたらす、プロテオリポソームと染料のその後の脱消光を流出する際にカルセインの局所濃度の減少につながる、閉じ込められたカルセインを開き、リリース活性化しました。
9. 蛍光発光は、再び安定したプラトーに到達した後、50μlのトリトンX-100（4％v / v）を添加することによりリポソームを可溶化します。
   注：理想的にはそれ以上の蛍光の増加が観察されないことができ、すべてのリポソームに活性なタンパク質を意味します。

ナノ粒子の追跡を使用したLUVの4サイズ分布測定

1. リポソームまたはプロテオリポソー​​ム溶液を最小限のサンプルは、ナノ粒子のトラッカーを使用して、サイ​​ズ分布分析のために必要であることに注意してください。 5ミリグラム/メートルのリポソーム溶液を希釈Lの脂質濃度1：5,000（v / v）の緩衝液（20mMのTris、150mMのNaCl、pH8.0の;滅菌濾過）、1 mlの最終容積に分析しました。サイズ分布測定を乱す塵のような懸濁粒子を除去するために、0.2μmの膜を用いて希釈し、前LUVの準備および再構成するために使用されるすべてのバッファをフィルタリングします。
2. 超純水で流れ室を洗ってください。
3. 光ビームに集中する表面マーカーを使用してください。希釈されたリポソーム試料の約300μLを注入し、すぐに気泡を導入することなく、フローチャンバ内の流れを停止するために、出口弁を閉じます。
4. 検出用試料の十分な散乱信号を確実にするために、焦点とカメラのシャッター/ゲイン設定を調整します。
   注：20から80までの信号が視野ではっきりと見えるはずです。ソフトウェアが重複するときに個々の信号を追跡することができなくなりますように過密状態（> 80信号）を防ぎます。
5. 「キャプチャー」SCRに行きますEEN。 25℃に温度制御およびソフトウェアのコントロールを使用して90秒にキャプチャ持続時間を調整します。時系列の記録を開始するために押して「記録」。
   注意：新しいウィンドウが開き、時系列が完了します。
6. 指定された形式で時系列を保存します（* .AVI）。バッチ分析中に実用的な理由から単一のフォルダ内のすべてのファイルを保存します。
7. 出口バルブを開き、フローチャンバ内に別の300μlを注入。バルブを閉じて、リピートは4.3手順 - 二回4.6。
8. 完了後、すべてのサンプルのランを5mlの超純水を用いてフローチャンバーを洗浄します。 「プリプロセス」画面に移動します。このプロトコルで使用されるトリス緩衝液のためのキャリブレーション・パラメータ温度= 25℃、粘度= 0.91を設定します。
9. バッチ処理ウィンドウを開き、記録された時系列（アドバンスト/バッチプロセス/設定ファイル1-3）をロードします。プレスサイズ分布分析を開始するには「GO」。
   注：分析ソフトウェアの電話交換的には、単一粒子を追跡し、ステップ4.8で設定したパラメータを用いて、それらの移動行動に基づいてそれらの直径を計算します。
   注：結果のサイズ分布の分析は、時系列ファイルと同じフォルダに自動的に保存されます。
10. さらに、（エクスポート/レポートPDFの作成）の結果を要約するレポートファイルを作成します。

5.チップホルダーの準備

1. MDX4医療グレードのエラストマーベース、50mlの反応チューブに硬化剤0.1グラムMDX4を1.0g秤量します。ガラス棒で十分に両方をブレンド。
2. 脱ガス接着剤に1時間デシケーターにチューブを入れてください。接着剤が硬化して動作するようにあまりにもハードになるようにその後、チップ接着のために30分以内にそれを使用。
3. エラストマー脱ガス（ステップ5.1）の間、チップボンディングの前に任意の汚染物質を除去するためにクロロホルムで徹底的に客観スライドガラスを清掃してください。ガラスシリンジを使用して、クロロホルム5mlでスライドを洗浄します。集めます下に位置し、ビーカー内のクロロホルム。洗浄後、スライドを乾燥させて。
   注：ヒュームフードの下で、この手順を実行します。クロロホルムの代わりに、アセトンのような他の有機溶媒を使用することもできます。
4. （10μlのピペット用結晶のヒント）ピペットチップを使用したカバーガラス上に接着接合材料の少量を堆積させます。チップは後に8チャンバースライドホルダーに適合しなければならないし、それに応じてスライド上に配置する必要があることに注意してください。
5. 慎重に先端の細いピンセットを用いてウエハ基板から一度に一つのチップを取り外し、カバーガラス上の接着剤の降下にチップを付着させます。チップのコーティング面が上向きに直面していることを確認してください。
6. 静かに鈍いPEピンセットの背面とカバーガラスの上にチップを押してください。接着剤は、チップの下に均等に分配されることを保証するために、慎重に前後にチップをスライドさせます。重要なステップ：それは光学イメージングを乱すように、空気の泡がチップの下に閉じ込められていないことを確認します後で上のチップキャビティの。また、全く接着材がチップ表面を汚染しないことを確認してください。
7. キャビネット乾燥機中で65℃で2時間、完成したカバーガラスを乾燥します。
   注意：チップはまだ除去される必要があるそれらの製造に由来する保護層で被覆されます。
8. 保護層を除去するために、シーケンシャル溶剤洗浄工程を行います。チップの硬化中に、54℃の水浴を予熱。
9. 水浴、イソプロパノール及びアセトンを充填した1つで満たされ、それらの2に3ガラスビーカーを置きます。
10. スライドホルダーにチップカバーガラスを挿入し、10分間の最初のイソプロパノール満たされた皿にそれを沈めます。その後、アセトン満たされた皿にそれを転送する第二イソプロパノール皿に最後の洗浄工程のためにそれを転送する前に、再び10分間インキュベートし、さらに10分間インキュベートします。
11. 皿からスライドホルダーを外し、慎重にultrapurで広範囲にそれを洗います窒素ガスの穏やかな気流でチップを乾燥させ、E水、。
12. 8ウェルスティッキースライドからラミネートシートを-脱いでベンチに後方に置きます。慎重にカバースライドをピックアップし、優しく井戸に面したチップを搭載した粘着性のスライド上に押してください。使用前に数分間、完成したチップホルダーの残りをしましょう​​。

6.アッセイの準備

注：ナノ細孔チップカバーガラスに接着し、8ウェルスティッキースライドで区切って、複数のチップがチップが完全に分離されて、単一の実験で対処することができ、利益を有しています。

1. チップホルダーの準備の後、純粋なエタノールで各チップを洗浄し、塵のような汚染物質を除去するために、窒素ガスでブロー乾燥。
2. 空気、酸素または窒素プラズマでチップ表面を清掃してください。プラズマ洗浄の時間期間のタイプに依存して変化：1分間酸素プラズマ処理を行い、空気およびNIT80％の出力設定（RFパワー媒体または高い）で0.3ミリバールで5分間ローゲンプラズマ。
3. プラズマ洗浄した後、キャビティの濡れ性を確保するために10〜15分間純エタノールでチップをインキュベートします。
4. トリス緩衝液400μlの添加することにより、バッファのための段階的な交換エタノール（20 mMトリス、150mMのNaCl、pH8.0のは、滅菌濾過）、気泡や400μlとその後の除去を導入することなく溶液を混合しました。エタノールの除去を確実にするために、この手順を12回繰り返します。
   注：エタノールは、リポソーム懸濁脂質二重層のために有害であろう。
5. 5 mMのCaCl ₂を1μMOy647染料と、ドープトリス緩衝液（滅菌が濾過さ20mMトリス、150mMのNaCl、pH8.0）に。完全にチップからの洗浄緩衝液を除去し、直ちにチップにドープされたバッファを追加します。注意：チップは空洞の一定湿潤およびチップ表面を確保し、空気と直接接触しないので、チップは、洗浄緩衝液を除去した後、薄いバッファ膜で覆われます。
6. トリス緩衝液中1mg / mlのLUVをまたはプロテオLUVを追加（20 mMトリス、150mMのNaCl、pH8.0の、滅菌濾過したもの）を各ウェルに。
   注：各ウェルの最終容量は300μlです。ドープしたトリス緩衝液の添加時の制御染料と化学修飾剤MTSETのその後の追加を検討してください。
7. チップ表面の気孔スパニング脂質二重層の形成のためにリポソーム溶液を用いて室温で1時間、チップをインキュベートします。その後^の Ca ²⁺を含まないトリス緩衝液の4倍の400μlの各チップを洗います。
8. 5μMの最終濃度で、各ウェルに制御染料を追加します。チップは現在、転座アッセイの準備ができています。

7.アッセイのセットアップ

1. 落射蛍光顕微鏡（20Xエア目的、長作動距離）にチップホルダーをマウントします。より簡単にマイクロキャビティの焦点面を見つけるために、ナノ細孔チップの縁に焦点を当てています。空洞が焦点になったら番目の領域のためのナノポア・アレイをスキャンディスプレイで最も高い比率を封止します。
   注：すべての倒立落射蛍光顕微鏡は、チップアッセイを実施するために使用することができます。対物倍率（20X - 60X）によってアッセイされた空洞の数は20倍の倍率を使用して、1つの視野で最大9,000空洞で、異なります。長作動距離と空気の目標が好ましいです。倒立共焦点レーザー走査顕微鏡（CLSM）を使用することも可能であるが、画像取得起因焦点の制限された深さに制限要因であるかもしれません。
2. チップ照明を最適化します。
   注：変更を観察することができないように、両方の色素チャネルは最大のグレースケール値を超えていないことを確認。輸出実験のために最大の信号容量の90％に転染料の照明を調整します。明らかに任意の漏出性の膜シールを検出するために、最大信号容量80〜90％までオープンキャビティ内の制御染料を調整します。
3. 一度全てのチャンネルは、時系列を開始して調整されます。画像を取るごとに10-20 SE90分間℃。
   注：これは、同様に特定し、非特異的流出のイベントに従うことが適切です。
4. システイン固有の添加によって蛍光基質の流出を初期化し、積極的に3 mMの最終濃度に複合MTSET荷電。後に開口部をチャンネルにベースライン前に安定した蛍光シグナルを確立することができるようにMTSET添加前実験ランタイムの少なくとも5分を許可します。必ず使用前に新鮮な直接MTSET溶液を調製。

8.データ解析

1. ImageJの標準バージョン（ファイル/インポート/イメージシーケンス）で時系列画像スタックを開きます。
2. 蛍光チャネルが積層されている場合は、各チャネル（画像への画像/スタック/スタック）のために個々のスタック内のチャンネルを分割します。
3. ROI（関心領域）の識別（イメージ/複製）のための転基板チャネルの最初のイメージを複製します。
4. バイナリイメージ（画像/調整/しきい値）に画像を変換します。確保使用されるアルゴリズムはピクシレーションを重複することなく、すべての密封された空洞のための信号を示しています。
5. 自動的に粒子アナライザーツール（粒子を分析/分析）で関心領域を定義します。粒子ノイズを回避するために、定義された最小粒径を規定します。 「エッジの除外」オプションをチェックし、「穴が含まれます」。結果としてのROIは、マイクロキャビティアレイパターンを反映していることを確認してください。介在するのROIは、したがって、それらを削除し、成果物です。 ROIのリストを保存します。
   注：測定パラメータは、（/セット測定/エリアの分析）粒子解析の前に「エリア」に設定する必要があります
6. 時系列分析プラグイン（http://rsb.info.nih.gov/ij/plugins/time-series.html）、同じサイズに自動的にすべてのROIのサイズを変更開きます。再サイズ6×6ピクセルと楕円形（タイマシリーズアナライザ/ AutoROIProperties）の幅/高さにすべての既存のROI。 「既存のROISのサイズを変更する」オプションをチェックしてください。得られたリサイズROIのリストを保存します。
7. ROIマネージャを開きます。（/ツール/ ROIマネージャーの分析）し、時系列（ROIマネージャ/詳細/オープン）の各チャネルのリサイズROIリストをロードします。 ROIが重畳されます。 「すべてのスライスを測定」と「スライス当たり1行」と開始マルチメジャーを選択し、マルチ計測]ツール（ROIマネージャ/詳細/マルチメジャー）を起動し、各ROIのための信号の変化を分析するために。
   注：測定パラメータは、（/ /セット測定分析グレイ平均値）この手順は、「グレイ平均値」に設定されなければなりません
8. * .txtファイルまたは* .xls形式で各ROIの平均グレー値を与え、結果のテーブルを保存します。
9. 「インポートファイル」オプションを使用してNanoCalcFXに各撮像チャンネルのROI分析をインポートします。 」シリーズを命名するための最初の行を使用する」に設定します。時系列画像取得期間に応じて画像間のステップサイズを設定し、対応する列と小数点記号を選択します。
10. 自動的に個々のfluoのグラフを相関させるために「複数のシート」オプションを使用しますrescentチャンネル。
    注：イベントは、現在分析し、3色スペクトル情報によって与えられた情報を用いて分類することができます。
11. ビルドでフィット関数（フィットオプション）を使用して、選択したカーブにフィット。
    注：すべての単一指数拡散駆動イベントとフィット感の境界を設定することができるために実装流出と流入式が適しています。得られた速度定数は、ヒストグラムツールを使用してプロットまたはさらなるデータ改善のためにエクスポートすることができます。

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結果

ポア貫通膜は容易に自己集合したようにナノ構造チップ表面上に作成することができます。しかし、根本的なプロセスはまだ繊細でリポソームのサイズ、リポソーム集団の単分散性、ラメラ、脂質や塩分濃度と化学的表面特性のような多くのパラメータの影響を受けています。これらのパラメータのほとんどは、慎重に特徴付けられ、上記のプロトコルで標準化され?...

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ディスカッション

ここで紹介する手法は、膜タンパク質輸送の高度な並列分析を可能にします。再構成された膜タンパク質系は、直接、理論的にすべての膜輸送体またはチャネル可能の適応を行う、バイオチップに適用することができます。輸送解析は、唯一の直接蛍光変化（蛍光体の転座または蛍光標識された基質）または間接的な蛍光変化（pH感受性色素、二次酵素反応）のいずれかを介して、蛍光読み?...

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資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Reagent
[2-(Trimethylammonium)ethyl] methanethiosulfonate	Toronto Research Chemicals Inc.	T792900	MTSET; hydrolized by water. Keep as dry pouder aliquot at -80 °C. Use immediately (30 minutes) after solubilization in buffer.
1 ml gas-tight syringe	Hamilton	#1001
10 ml round flask	Schott Duran
2.7 mm glas beads	Roth	N032.1
2-Propanole	Roth	9866.5
30 cm Luer-Lock Extension Tube	Sarstedt	744304
Acetone	Roth	5025.5
Bio-Beads SM-2 Adsorbent	Bio-Rad	152-3920	need to be activated before first use
CaCl2 Dihydrat	Roth	HN04.3
Calcein	Sigma	C0875	store dark at -20 °C
Chloroform reagent grade	VWR Chemicals	22711324
DOPEATTO390	ATTO-TEC	AD 390-165	store dark at -20 °C
Ethanol absolute	Sigma-Aldrich	32205
Injekt Single-use syringe	Braun	460 60 51V
Injekt-F single-use syringe	Braun	91 66 017V
Keck clips	Schott	KC29
L-α-Phosphatidylcholine, 20% (Soy)	Avanti Polar Lipids	5416016	store under inert gas at -20 °C
NaCl 99.5% p.a.	Roth	3957.2
Nanopore E100 wafer/chips	Micromotive (Mainz/Germany)		available on request
Nucleopore Track-Etch Membrane 0.4 µm	Whatman	800282
Oregon Green Dextran 488 (70 kDa)	life Technologies	D-7173	store dark at -20 °C
Oy647	Luminartis (Münster/Germany)	OY-647-T-1mg	store dark at -20 °C
Rotilabo-syringe filtration, unsterile, pore-size 0.22 µm	Roth	P 818.1
Sephadex G-50	Sigma-Aldrich	G5080	column material for size exclusion chromatography
Silastic MDX4-4210	Dow Corning		curing agent for chip fixation onto cover glass support
sticky-Slide 8-well	ibidi	80828	multi-well chamber for the mounting onto glass slides (chip holder)
Three-way stopcock blue	Sarstedt	744410001
Tris Pufferan 99.9% Ultra Quality	Roth	5429.2
Triton-X 100	Roth	6683.1
Whatman 0.2 µm cellulose nitrate membrane filter	Roth	NH69.1
Name	Company	Catalog Number	Comments
Equipment
Büchi 461 water bath	Büchi
Büchi Rotavapor RE 111	Büchi
Cary Eclipse Fluorescence Spectrophtometer	Varian
LiposoFast Mini Extruder	Avestin
Membrane pump	Vaccubrand	15430
Nanosight Nanoparticle Tracking Microscope	Malvern / Nanosight	LM 14C
NyONE microscope	Synentec		available on request
Pump control	Vaccubrand	CVC 2II
Sonicator bath Sonorex RK100H	Brandelin electronic	31200001107477
Vaccum pump RC5	Vaccubrand	1805400204
Water bath W13	Haake	002-9910
Plasma Cleaner PDC-37G	Harrick Plasma	PDC-37G
Name	Company	Catalog Number	Comments
Software
ImageJ	Open Source	http://imagej.nih.gov/ij/	scientific image processing software
NanoCalcFX	Freeware	http://sourceforge.net/projects/nanocalc/	data analysis/evaluation software for massive transport kinetic datasets
NTA 2.3 Analytical Software	Nanosight		data acquisition and analysis software for nanoparticle tracking microscope
NTA 2.3 Temperature Comms	Nanosight		temperature controle software for nanoparticle tracking microscope