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要約

A multi-compartment dynamic phantom is used to simulate some biology of interest for metabolic studies using hyperpolarized magnet resonance agents.

要約

磁気共鳴による過分極基質のイメージングは​​、リアルタイムでの重要な生化学的プロセスの評価のための偉大な臨床約束を示しています。過分極状態によって課される基本的な制約のために、エキゾチックなイメージングおよび再建技術が一般的に使用されています。ダイナミック、マルチスペクトルイメージング法の特性評価のための実用的なシステムは、批判的に必要とされています。このようなシステムは、再現性正常および病的な組織の関連する化学ダイナミクスを再現する必要があります。これまでで最も広く利用されている基板は、がん代謝の評価のための[1- 13 C]ピルビン酸を過分極されています。私たちは、乳酸へのピルビン酸への変換を媒介する酵素ベースファントムシステムを説明します。反応は、反応速度を制​​御する試薬の濃度を変え含ま各々が、ファントム内の複数の室に過分極剤の注入によって開始されます。複数の区画は、IMAを確保するために必要です銀杏の配列は、忠実に組織の空間的および代謝不均一性をキャプチャします。このシステムは、 生体内では不可能である化学従来のファントムからは入手できませんダイナミクスだけでなく、制御と再現性を提供することにより、高度なイメージング戦略の開発と検証を支援します。

概要

13 C標識化合物の過分極磁気共鳴画像(MRI)の臨床的影響は、リアルタイム磁気共鳴分光法及び分光イメージング1-5を介して化学変換率を測定する能力に決定的に依存します。配列開発および検証中に、動的な化学変換は、一般に、 インビボまたは制限された制御および再現性を提供するin vitroモデル6-9 することによって達成されます。堅牢なテストと品質保証のために、この測定に流行して化学変換を維持し、より制御システムが好ましいであろう。我々は、動的単一の酵素のファントムを用いて、再現可能な方法で、この変換を達成するための方法を概説します。

過分極13 C剤とほとんどの研究は、機能生物学的環境で、超偏極基板を画像化に焦点を当てます。目標は、生物学を研究することである場合、これは当然の選択でありますアル・プロセスまたは臨床ケアへの影響の可能性を決定します。いくつかの測定システムまたはデータ処理アルゴリズムの特性が所望される場合には、生物学的モデルは、固有の空間的および時間的可変10のような多数の欠点を有します。しかしながら、従来の静的なファントムは、過分極基質のMRIの主要な臨床的関心を駆動化学変換を欠き、かつ変換率または他の動的パラメータ11の検出を特徴付けるために使用することができません。単一酵素系を使用して、我々は、動的画像化戦略の厳密な検査を可能にする、制御可能かつ再現可能な化学変換を提供することができます。

このシステムは、超偏極基板用のイメージング戦略を開発し、代替的なアプローチとの比較のための性能を特徴づけるために希望している研究者を対象としています。静的測定は、所望の終点である場合には、静的な13 C-標識さ代謝物ファントムのwi11で十分でしょう。もう一方の端に、より複雑な生物学的特徴付けは、実際の生物学的モデルは12月14日を必要とされる方法(配達、細胞密度、 など )にとって重要である場合。このシステムは、見かけ上の化学的変換率の定量的尺度を提供することを目的とイメージング戦略の評価のために理想的です。

プロトコル

注:(ファントムデザイン)2 3ミリリットル室はウルテムから機械加工、射出と排気用のPEEKチューブ(1.5875ミリメートル外径および0.762ミリメートルのID)を装着しました。チャンバは水( 図1)を充填した50mLの遠心分離管に入れました。気泡によって作成された信号の空隙を回避するために、チャンバおよびラインは、脱イオン水(のdH 2 O)を充填した事前ました。

1.溶液の調製

  1. 1 L緩衝液(81.3 mMトリスpHは7.6、203.3のNaCl)を準備します。うち11.38グラムのTrizmaプリセット結晶pHは7.6と11.88グラムのNaClを計り、 dH 2 Oの1 Lに溶解します
  2. 50 mMのNADH溶液を調製します。 β-ニコチンアミドアデニンジヌクレオチド(NADH)、還元ジカリウム塩の17.8ミリグラムを秤量し、ステップ1で調製した緩衝液の280μlの溶解。
  3. 250 U / mlの酵素溶液を調製します。乳酸デヒドロゲナーゼ(LDH)の78.75活性単位を秤量およびSから315μlの緩衝液中に溶解TEP 1。
  4. ピルビン酸ミックスを調製します。 21.4 mgのOx063トリチルラジカルを秤量し、1.26グラム(〜1ミリリットル)[1- 13 C]ピルビン酸に溶解します。
  5. 溶解媒体を準備します(40 mMトリスpHは7.6、40mMのNaOHを、0.27 mMのEDTAおよび50mMのNaCl)。トリズマプリセット結晶性pH 7.6の5.96グラム、NaOHを1.6グラム、0.1グラムエチレンジアミン四酢酸二ナトリウム塩の水和物(EDTA)および2.9グラムのNaClを秤量し、1 LののdH 2 Oに溶解します
  6. 1時10ガドテリドール溶液(50 mm)を準備します。 dH 2 Oの9μlのガドテリドール1μlのミックス8 M [13 C]尿素の調製。 1.465 5 [13 C]尿素を秤量し、3ミリリットルのdH 2 Oに溶解します

過分極ピルビン酸の調製

  1. 動的核分極(DNP)システム、ピペットガドテリドール液の0.3μlのピルビン酸溶液の13ミリグラム(〜10μl)をするためのサンプルカップで。
  2. 簡単に言うとピペットチップでサンプルカップにこの混合物を攪拌。
  3. DNPシステムにサンプルを挿入します。
    1. DNPシステムへの扉を確認してください閉じています。 DNPシステム・コンソールに挿入サンプルボタンをクリックすることにより、サンプルの挿入プロセスを開始します。サンプル・ウィザードでは次の通常のサンプルを選択し、を押します。
    2. サンプルカップを維持する垂直優しくサンプルカップの上に挿入ロッドを配置します。プロンプトが表示されたら、DNPシステムを開き、挿入ロッドを使用して、温度可変インサート(VTI)にカップを挿入します。
    3. 温度可変インデックスにサンプルを解放するために、サンプル挿入ロッドの終わりにプランジャーに引き出します。システムからのサンプル挿入ロッドを取り外し、DNPシステム・コンソールに次のボタンをクリックします。
  4. 偏光を開始します。
    1. DNPシステムのコンソール上でスタート分極ボタンをクリックします。偏光監視ソフトウェアを起動するRINMRソフトウェアで型.HYPERSENSENMR。 1に設定を構築し、Enterキーを押します設定します。次に、固体のビルド]をクリックしますuのP。
    2. 保存ファイルの場所と名前を設定します。 DNPシステムのコンソール上のタブのドロップダウンで13-C用のプロファイルを選択し、次へ]をクリックします。 300秒に、ビルドアップ時に設定サンプル時間をサンプリングし、[完了]をクリックするチェックボックスをオンにします。
  5. 3.85グラムを測定する(〜4ミリリットル)溶解媒体のいずれかの5ミリリットルの注射器との体積やスケールを使用して重量。

酵素ファントムの調製

  1. 〜3ミリリットル[13 C]尿素水溶液でマイクロ遠心チューブを記入し、50ミリリットルの遠心分離管に入れてください。 dH 2 Oで50mlの遠心分離管を埋めます
  2. 形成された泡を洗い流すように注意しながら、ファントムの注入ラインへ〜3ミリリットルのdH 2 Oを注入することによって、2つの酵素室とのdH 2 Oを持つ行を事前に記入してください。
  3. 注入ラインに簡単にアクセス磁石の中心にファントムを置きます。トンに出ベントます液体をキャッチするためにいくつかのコンテナがあることを確認してください排気ラインを彼。
  4. 高活性の酵素混合物(17.14 mMのNADH、44.57 U / mLのLDH)を準備します。一緒に240μlのNADH溶液を、125μlのLDH溶液および335μlの緩衝液を混合し、注入ラインに結合させることができる3ミリリットル注射器に保ちます。
    注:DNPシステムからの40mMピルビン酸500μlのと合わせたら、最終的なファントム量は16.7 mMのピルビン酸、10 mMのNADHの​​濃度が1.2ミリリットルであること、およびpHを有するトリス緩衝溶液中で26 U / LのLDHます〜 7.5。
  5. 低活性酵素混合物(17.14 mMのNADH 26.79 U / mLのLDH)を一緒に240μlのNADH溶液を、75μlのLDH溶液および385μlの緩衝液を混合し、注入ラインに取り付けることができる別個の3ミリリットル注射器に保管を準備します。
    注:DNPシステムからの40mMピルビン酸500μlのと合わせたら、最終的なファントムのボリュームは16.7 mMのピルビン酸、10 mMのNADHの​​濃度が1.2ミリリットルであること、およびpH約7.5でトリス緩衝溶液中で15.625 U / LのLDHます。
jove_title "> 4。任意の品質保証(QA)とポジショニングスキャンを実行します。

  1. 最初のポジショニング。
    1. 動作モード[1 H] TX / RXボリュームモードで新規FLASH位置決めスキャンをロードします。 2に設定さ寸法を変更します。分光計コントロールツールを - >編集GS - >セットアップ寸法 - > 2.分光器制御に関するGSPと磁石の中央までのファントムを移動します。分光器制御上を押してSTOPを押しGOP。
  2. パイロットスキャン。
    1. 動作モード[1 H] TX / RXボリュームモードで新規TriPiolt位置決めスキャンをロードします。位置スライス:スキャン制御 - >スライス工具類 - >は(;スライスパッケージスライダーで移動するには、スライスを選択し、Mキーをクリックしてドラッグを保持)スライスを移動します。
    2. ウォブル1 Hコイル:分光計コントロールツール- > ACQ - >ぐらつき。磁石と押してSTOP背後にある1 Hコイルをチューニングし、一致します。シフトキーを押しにスキャンコントロールウィンドウ上のトラフィックの光を保持したまま。
5。ラジアルエコープラナー分光イメージングスキャンの設定

  1. 動作モードの[13 C] TX / RXボリュームモードをスキャンし、新しいラジアルエコープラナー分光イメージング(radEPSI)をロードします。位置スライス:スライスツールスキャン制御上のスライスを移動(Mキークリックとドラッグを保持し、スライスパッケージスライダーで移動するには、スライスを選択します)。
  2. 分光計コントロールツールをクリックしてウォブル13 Cコイル- > ACQ - >ぐらつき。スペクトロメーター上で1,000〜2,000に受信ゲインを設定します。
  3. 最終的なシステムチェックを実行します。配列に依存して、スカウトプロトコルにおける尿素室から炭素13の信号を観察します。
    注:これは、システムが不可逆的な溶解プロセスを開始する前に適切に設定されることを保証します。

6.ファイル名を指定して実行解散

  1. ピルビン酸は、> 90%の偏光(〜1時間)を達成した場合には、ソリューションおよびファントムは準備ができている、とスキャンがDNP SY上で実行溶解ボタンをクリックして構成されていますコンソールを食い止めます。
  2. その動作位置への溶解スティックを移動し、溶解媒体を注入するプロンプトが表示されたら。 DNPシステムを閉じ、DNPシステム・コンソールに完成したボタンをクリックします。 [完了]をクリックし、プロンプトが表示されたら休止位置に戻す溶解スティックを移動します。
  3. (加熱開始後〜2分)DNPシステムは、過分極ピルビン酸を配信する場合、それぞれ高いおよび低い酵素濃度溶液をシリンジにピルビン酸溶液500μlを撤回。ゆっくりと(〜10秒)注​​入ラインにそれぞれ注射器を注入します。
    注:スキャンは、注射前に、またはいつでも使用するスキャンプロトコルに応じて3分後に注射まで開始されている可能性があります。

7.画像処理

注:このファントムは、多くのイメージング戦略で使用するために設計されました。 RAD-EPSIの画像はMATLABを使用して処理した方法の例として、 図2を参照してください。

  1. FIDファイルから生データをロードします。 Resha実部と虚ペアとして格納されたデータのためのポイント、エコーやアカウントを読み出し、突起の数と一致するデータをPE。偶数と奇数エコーポイントを分離。
  2. フーリエ変換は、エコー次元に沿って偶数か奇数エコーのいずれかを変換します。視覚ピルビン酸および乳酸のための周波数帯域を特定します。簡単にするために、スペクトルの絶対値を用いました。
  3. 各代謝産物のバンドを分離し、フーリエ変換は、各代謝物のために孤立したサイノグラムを生成する周波数エンコード方向に沿って変換します。逆ラドンは、乳酸やピルビン酸のいずれかの画像を生成するために別個のサイノグラムを変換します。

結果

スライス選択2D画像は、スナップショットradEPSIシーケンスを用いて取得しました。代謝物の画像はフィルタ逆投影を使用して再構築しました。代謝産物の画像が良く、図2に見られるように、プロトン画像と整列させた。このシステムでは過分極乳酸塩の信号のみが過分極ピルビン酸塩の酵素的変換から生成することができます。 図4は 、下?...

ディスカッション

過分極代謝産物のリアルタイムイメージングシーケンスの設計、検証、および品質管理のための多くの固有の課題を有しています。時空間およびスペクトル不均一性を解決する能力はかなりの臨床的可能性を提供していますが、従来のMRIに関連したQAおよび検証方法を排除します。複雑な撮像シーケンスまたは再構成アルゴリズムは、撮像実験の外側を特徴付けるか検証するためにそれらが?...

開示事項

このビデオ - 記事の出版は、Bruker社によってサポートされています。

謝辞

この作品は、CPRITグラント(RP140021-P5)とジュリア・ジョーンズ・マシューズがん研究奨学生CPRIT研究研修賞(RP140106、CMW)によってサポートされていました。

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
BioSpect 7TBrukerBioSpec 70/30 USR7 Tesla Pre-Clinical MRI Scanner
HyperSenseOxford InstrumentsHypersense DNP PolarizerDynamic Nuclear Polarizer for MRI agents
1-13C-Pyrvic AcidSigma Aldrich677175Carbon 13 labled neat pyruvic acid
Trityl RadicalGE HealthcareOX063Free radical used in Dynamic Nuclear Polarization
NaOHSigma AldrichS8045
EDTASigma AldrichE6758Ethylenediaminetetraacetic acid
LDHWorthingthonLS002755Lactate Dehydrogenase from rabbit muscle
NADHSigma AldrichN4505β-Nicotinamide adenine dinucleotide, reduced dipotassium salt
TrizmaSigma AldrichT7943Trizma Pre-set crystals
NaClSigma AldrichS7653

参考文献

  1. Merritt, M. E., et al. Hyperpolarized 13C allows a direct measure of flux through a single enzyme-catalyzed step by NMR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America 104. 104, 19773-19777 (2007).
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  3. Day, S. E., et al. Detecting tumor response to treatment using hyperpolarized 13C magnetic resonance imaging and spectroscopy. Nature medicine. 13, 1382-1387 (2007).
  4. Keshari, K. R., et al. Hyperpolarized 13C dehydroascorbate as an endogenous redox sensor for in vivo metabolic imaging. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 108, 18606-18611 (2011).
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  9. Mayer, D., et al. Application of subsecond spiral chemical shift imaging to real-time multislice metabolic imaging of the rat in vivo after injection of hyperpolarized 13C1-pyruvate. Magnetic resonance in medicine : official journal of the Society of Magnetic Resonance in Medicine / Society of Magnetic Resonance in Medicine. 62, 557-564 (2009).
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