個々の細胞タイプの転写プロファイリングのためのツールと​​してのレーザ支援顕微解剖（LAM）

要約

Here we present a protocol for laser-assisted microdissection of specific plant cell types for transcriptional profiling. While the protocol is suitable for different species and cell types, the focus is on highly inaccessible cells of the female germline important for sexual and apomictic reproduction in the crucifer genus Boechera.

要約

The understanding of developmental processes at the molecular level requires insights into transcriptional regulation, and thus the transcriptome, at the level of individual cell types. While the methods described here are generally applicable to a wide range of species and cell types, our research focuses on plant reproduction. Plant cultivation and seed production is of crucial importance for human and animal nutrition. A detailed understanding of the regulatory networks that govern the formation of the reproductive lineage (germline) and ultimately of seeds is a precondition for the targeted manipulation of plant reproduction. In particular, the engineering of apomixis (asexual reproduction through seeds) into crop plants promises great improvements, as it leads to the formation of clonal seeds that are genetically identical to the mother plant. Consequently, the cell types of the female germline are of major importance for the understanding and engineering of apomixis. However, as the corresponding cells are deeply embedded within the floral tissues, they are very difficult to access for experimental analyses, including cell-type specific transcriptomics. To overcome this limitation, sections of individual cells can be isolated by laser-assisted microdissection (LAM). While LAM in combination with transcriptional profiling allows the identification of genes and pathways active in any cell type with high specificity, establishing a suitable protocol can be challenging. Specifically, the quality of RNA obtained after LAM can be compromised, especially when small, single cells are targeted. To circumvent this problem, we have established a workflow for LAM that reproducibly results in high RNA quality that is well suitable for transcriptomics, as exemplified here by the isolation of cells of the female germline in apomictic Boechera. In this protocol, procedures are described for tissue preparation and LAM, also with regard to RNA extraction and quality control.

概要

組織レベルで行わ転写の研究では、専門性の高いまれ細胞型のトランスクリプトームは、多くの場合、より豊かな周囲の細胞によってマスクされています。このような専門性の高い細胞型のための例は、植物中の女性の生殖細胞系列（生殖細胞系列）の細胞です。女性の生殖細胞系列は、花の^1,2の雌ずい群内部の種子の前駆体を胚珠を開発内で指定されています。大胞子母細胞（MMC）は、女性の生殖細胞系列の最初のセルです。それを低減大胞子のテトラッドを形成する減数分裂を受けます。合胞体に、 すなわち 、典型的には、これらの大胞子のうちの1つのみが生き残り、細胞質分裂せず、有糸分裂分割します。 3 antipodals、2助細胞、卵、および中心細胞：これらの有糸分裂は、典型的には、4つの細胞タイプで構成されて成熟した配偶体を形成し、細胞化が続いています。卵と中央細胞が堂中に2つの精細胞により受精を受ける女性の配偶子です開発シード^1,2の胚と胚乳に生じさせるBLE受精。 80種子密接に関連属Boecheraで花あたりの開発-約50の一方で性的なモデル系のシロイヌナズナでは、唯一〜50個の種子は、花ごとに開発しています。このように、女性の生殖細胞系列は、このような細胞の仕様や分化などの発達過程を研究するための優れたモデル作り、わずか数専門性の高い細胞タイプで構成されています。

また、植物の再生を支配する遺伝子調節プロセスへの洞察は、印加された値とすることができます。植物では、種子（アポミクシス）を通じて両方有性と無性生殖が発生する可能性があります。有性生殖は、集団における遺伝的多様性を生成しながら、アポミクシスはマザー工場に遺伝的に同一であるクローン子孫の形成につながります。複雑な母系遺伝子型はできる限りそのため、アポミクシスは、農業と種子生産のアプリケーションのための大きな可能性を秘めています数世代^3,4,5にわたって変化していない維持します。アポミクシスが自然にすべての主要な作物種では発生しませんので、作物におけるアポミクシスの工学は大きな関心の^3,4,5です。無配偶生殖の根底にある遺伝的および分子的基礎は十分に詳細⁶で理解されていないため、この長期的な目標を達成することは困難です。

アポミクシス再生を支配する転写基礎への洞察を得るために、細胞型特異的転写プロファイリングレーザ支援顕微解剖（LAM）と次世代シーケンシング（NGS）を使用して、非常に強力なアプローチ^7,8を表し^ます 。 LAMは、最初の動物と生物医学研究のために設立されました。過去数年間にLAMは、植物生物学^6,9,10に適用されています。個々の細胞や組織の種類のプロファイリングを可能にする他の方法とは対照的に、LAMは、マーカーライン^6,9,10の生成を必要としません。したがって、それはアプリすることができます事前の分子の知識なしには、いかなる細胞または組織型に嘘をつきました。 LAMの別の利点は、それがあれば、セル位置および/または構造的特徴に基づいて、乾燥セクションに認識できるように、任意の細胞型に適用することが可能です。 LAMは、処理中の転写プロファイルの変化を防止する、固定された組織を使用するさらなる利点を有します。

目的の組織、 例えば、花の組織は、前パラフィンワックスに包埋した非架橋固定剤で固定されています。パラフィンワックスに埋め込 ​​みが確立されたプロトコル^9,11以下、手動で行うことができます。しかし、ワックスで脱水し、浸潤のための自動化組織プロセッサの使用は、一般に、RNAの品質および組織形態の保全の観点から、より高い再現性をもたらします。樹脂中に組織を埋め込 ​​む別の戦略もうまくLAM ⁸によって細胞型特異的な分析のために使用されてきました。しかし、AUTOMの使用多くのサンプルは一度ハンズオン時間の最小値を必要に処理できるように、ワックスに埋め込むためated組織プロセッサは、非常に時間が効率的です。 RNAの品質の一般的に有意な損失は固定および埋め込み時に発生しませんが、ミクロトームで薄片の製造および、特には、LAMのために使用frameslidesへの実装は、RNAの質の保全のための重要なステップのまま。これは、前述されたテープ移送システムの使用は、このステップ¹²で、より良好なRNAの質をもたらすことが記載されています。しかし、これは、スライドの準備中に追加の時間のかかるステップを追加し、また、特別な装置を必要とします。以下に説明する最適化されたプロトコルは、再現性の遺伝子チップと次世代シーケンシング（NGS）は^{7,11,13,14に}近づくと転写プロファイリングのために十分な品質であるRNAを産生します。また、使用されるレーザ顕微解剖顕微鏡を用いて、単離された細胞型の高純度ROUTありますinely ^{7,11,13,14を}生産^しました 。

属Boecheraはアポミクシス生殖の重要なステップを研究するための優れたモデルシステムです。 Boecheraにおいて、異なる性的及びアポミクシスアク種々の同定されており、比較のために使用することができる^{15,16,17分析します} 。性的シロイヌナズナ及びアポミクシスBoecheraから女性の生殖細胞系列からの細胞の細胞型特異的トランスクリプトームの比較では、我々はそれによって^7をアポミクシス支配する規制プロセスの新たな側面を特定する、示差的に発現している遺伝子および経路を同定しました。さらに、この研究は小さく、まれな細胞タイプの細胞型特異的転写分析のためのLAMの適合性を検証しました。すでに植物種の様々な異なる細胞型の分析のためにこのプロトコルを使用しているが、プロトコルに、種および組織特異的修飾は、特定の場合には必要とされ得ます。

プロトコル

注：このプロトコルは、組織標本、レーザ支援顕微解剖、および転写プロファイリングのためのRNA抽出を説明します。常にプロトコルのすべてのステップを通して手袋を使用しています。使用される各化学物質の安全指示を研究し、検討してください。特に、キシロールは有害であると手袋を貫通することができ、そのメタノールは毒性であることに留意してください。使用されているすべての機器の場合は、それに応じてユーザーマニュアルを参照してください。

1.ガラス製品からのRNA分解酵素活性の取り外しおよびその他の機器

1. 使用前に、RNアーゼフリーの品質を確保するために前に180℃で〜8時間焼成したアルミニウム箔の任意のガラス製品を包みます。
2. 任意の金属表面を処理（ 例えば、ピンセット）だけでなく、作業台と適切なRNA分解酵素除染液と加 ​​熱プレート。その後、除染液を除去するためにRNaseフリー水で表面を洗浄します。その後、70％エタノールでさらに表面を洗浄。
3. すべてのPLAを使用してくださいチック消耗品（ 例えば、チューブ）ブランドの新しい任意の前処理なし。可能な場合は、RNaseフリーすることが認定されているプラ​​スチック製の消耗品を使用します。

2.組織固定

1. （3：1;（v / v）のエタノール：酢酸）農家の固定液の10ミリリットルを準備し、新鮮な15mlチューブに氷の上。 （必ず使用前に新鮮なファーマーズ固定液を準備します）。代替的に、非架橋固定剤のエタノール：酢酸（5：1、v / v）の^18を使用することができます。
2. 関心の発達段階で芽を収集するためにピンセットの罰金のペアを使用してください。直ちに氷冷固定液に芽を沈めます。 シロイヌナズナやBoecheraから〜20芽や花の固定のための固定液の10ミリリットルを使用してください：大きい花と植物種を使用する場合には、固定前に小さな断片を生成するために、かみそりの刃で花を解剖することをお勧めします。
   1. inflorの3最大の花芽 - 成熟した配偶体を得るためには、2を骨抜き収穫前2日escence。
3. 氷と乾燥器の底を埋めます。直接彼らは倒れることができないように氷にそれらを置くことによって、または適切なホルダーを使用することにより、サンプル、 例えば、花を含むチューブを開き、氷の上に置きます。真空は、真空の放出前に15分間浸透させます。
   1. 15分間に一度真空浸透を繰り返します。
4. 氷の上に真空や店舗で一晩（〜12時間）をリリース。蓋やアルミ箔と氷のバケツをカバーし、解凍から氷を防止するために、4℃ルームや冷蔵庫でバケットを格納します。注：固定時間を延長することはお勧めしません。

3.組織の埋め込み、薄い断面化、およびLAMのためのスライドへの取り付け

1. 組織の埋め込み。
   1. 純エタノールおよびRNaseフリー水を用いて調製し、70％エタノールに固定液を交換します。さらなる処理まで氷上でサンプルを残します。 embeを開始サンプルのdding同じ日。何の組織処理機が利用できない場合には、他の場所^9,11を説明するように手動埋め込 ​​みに進み、ステップ3.1.11に進みます。
   2. 静かにピンセットで組織包埋カセットにサンプルを転送します。しっかりとカセットを閉じます。重要なステップ：このステップの間にサンプルの偶数部分的な乾燥を避けてください。ピンセットで試料の圧搾を避けてください。
      注意：鉛筆は、理想的には、カセットの傾斜面に書き込むことによって、使用されるべきであるカセットにラベルを付けるには。
   3. すべての材料がカセットに転送され、埋め込みマシンがロードできるようになるまで70％エタノール中の芽や花を搭載した包埋カセットを保管してください。この目的のために、70％エタノールを充填したガラス染色トラフを使用します。
   4. マシンのレトルトから組織プロセッサのバスケットを取り外し、上部に面した斜面で、同じ方向にバスケットに包埋カセットを移します。 CRITICAL STEP：組織のいずれの乾燥を防ぐために、すぐにこれを実行します。一度に多くの包埋カセットを処理する場合は、前のサンプルをロードする70％エタノールで満たされた適切なRNAseを含まない容器にバスケットを置きます。
   5. バスケットの蓋を置き、レトルトに戻しバスケットを置きます。レトルトを閉じます。
      注：組織プロセッサは自動的にサンプルを脱水、キシロールに溶剤を変更し、溶融したパラフィンワックスで浸潤を行います。典型的には、これは、一晩行われます。
   6. 組織プロセッサのプログラムを起動します。推奨標準設定は浸潤に続いて室温で1時間70％エタノール、3回1時間90％エタノール、3回1時間の100％EtOH、2回1時間100％キシロール、1時間1時間15分100％キシロール、あります1時間および^56℃11で3時間のために1時間のためのパラフィンワックスで2回。
      注：ブロッキングステーションが溶融ワックスで準備ができていることを確実にするために、開始の数時間前にマシンを切り替えますかおおよその開始時間を選択するためにタイマー機能を使用します。
      注：場合、組織は56℃で、直後にパラフィンワックスより長いインキュベーション時間を処理することができないではなく、56°Cで3時間の可能です。機器のマニュアルを参照してください。 「空のレトルト」コマンドが承認されるまでは一般的に、組織とのカセットは自動的に溶けたロウのままになります。組織処理を開始するときに、ワックスが溶融されていない場合は、レトルト70％エタノールで充填し、開始する準備ができるまで、プログラムは保留のままです。
   7. レトルトを空にし、すぐにブロッキング駅に56℃のパラフィンワックス浴にサンプルを転送します。バスケットから蓋を外し、その蓋をブロッキング駅のパラフィン浴をカバーしています。
   8. バスケット内のカセットがあるとして、ブロッキングステーションの表面のパイルのような多くの新鮮なバランストレイは56℃に加熱しました。
      注：エタノール耐性永久マーカーは使用することができますdはバランストレーの底にラベルを付けます。アセトン耐性マーカーが推奨されていません。
   9. ブロッキングステーションを使用して、56℃で溶融パラフィンワックスと予め温めた新鮮なプラスチック分散トレイを満たします。 、パラフィン槽の蓋を持ち上げ、一度に1つのカセットをピックアップし、ピンセットを使用してバランスをとるト​​レイに56℃の流動パラフィンワックスにカセットからサンプルを転送します。
      重要なステップ：すぐに働くことによってカセットの処理中にサンプルを囲むワックスの任意の硬化を避けてください。
      1. ワックスの硬化前の準備針を使用して、必要に応じて位置が全てのサンプル。典型的には、いくつかの花は個別方向に約1cm離間平衡トレイに配置されています。
      2. すべてのサンプルが転送されるまで、ステップ3.1.9を繰り返します。
   10. バック組織プロセッサにバスケットを置き、適切なプログラム（ユーザーマニュアルを参照）を使用してレトルトをクリーニングします。
   11. 組織プロセッサとブロッキングステーションのスイッチをオフにします。ステップ3.1.13に進みます。
   12. ケースではない組織浸潤​​機なし埋め込み局は56℃のパラフィンワックスを溶融する加熱炉を使用し、使用できません。ベンチに、ワックスにサンプルを転送し、プラスチック製のバランストレイに溶けたロウを記入し、サンプルを配置するために準備針を使用します。
   13. 4°Cでサンプルを保存する前に3時間 - パラフィンワックスが〜1、室温で硬化することを可能にします。サンプルは、その後、新たに処理または数ヶ月まで保存することができます。
2. LAMのための薄い切片とスライドの準備。
   1. 下からワックスブロックを照明光テーブルの上に、周囲のプラスチックトレーからのサンプルとパラフィンワックスを除去します。 例えば 、組織を含む二乗ワックスブロックを解剖。、芽や花を、RNAseを含まないカミソリの刃を使用して。この目的のために、常にワックスブロックの上の方のサンプルを配向（も参照してください。 図1）。
      1. 一度にLAMのために使用されるべき全てのサンプルのワックスブロックを準備します。
   2. 硬化パラフィンワックスで満たされたカセットを埋め込む処理するためにブロックをマウント：エタノールランプを使用して、適切なへらの先端の小片またはパラフィンワックスの液滴を溶融し、埋め込まれた組織と（支持体の上にブロックを修正するためにホットワックスを使用一番上）。
      1. ワックスは4℃で少なくとも20分間硬化することができます。
   3. ライトテーブルの上にかみそりの刃でサンプルを周囲の余剰ワックスを削除します。平行なエッジ（ 図1参照）と正方形の表面を維持することを確認します。
   4. 42℃に加熱プレートを設定します。
   5. 安全にミクロトームにサンプルをマウントし、6準備 - 10μmの厚さの切片を。ミクロトームを用いて製造元の説明書を参照してください。注：シンナーのセクションでは、多くの場合、より良い構造の解像度が得られますが、higheのRNA量が多いですR品質は、より厚いセクションを得ることができます。 Boecheraの細胞が配偶体の成熟のために我々は、デフォルトとして7ミクロンを使用します。ミクロトームナイフ以上のサンプルではなく、ゆっくりと移動すると、多くの場合、より良い組織学になります。
   6. LAMスライドでそれらを配置する前に、下部の黒いボール紙とプラスチック製の箱に15センチメートル - 常に約10の長さでパラフィンリボンを転送します。
   7. 可能な場合は、解剖スコープの下で、 例えば 、目的の細胞または組織タイプ、胚珠を含むパラフィン片の一部を事前に選択して、残りを捨てます。
3. LAMのためのスライドの準備。
   1. 加熱プレート上に上に平らな面で - 金属枠のスライド（10典型的には、5）の必要量を配置します。
   2. ピペット〜1 - スライドのプラスチック部品にRNAseを含まない水の2ミリリットル。プラスチック製の窓にまたがるのに十分な長さの5センチメートル - カミソリの刃を使用して、約4の短い断片にパラフィンリボンをカット。 Uピンセット、理想的にはパラフィンストリップはスライドのプラスチック製の窓上に互いに平行に配置する準備針をSE。慎重に水を除去し、バックスライドを配置するために一端でスライドを持ち上げます。
      1. また、化学フード下で加熱板を配置します。表面を濡らすのに十分なだけのスライドのプラスチック部分に少量のメタノールを適用します（これは、スライドの若干の波打ちを引き起こす可能性があります）。スライド上のパラフィンストリップを配置します。
         注：可能な場合、毒性の理由から、メタノールの使用を避けます。ただし、この段階でメタノールを使用することは、水に取り付けることによって達成品質が十分でない場合に、RNAの品質を改善します。達成RNAの品質は、調査中の細胞型および種に応じて変化するように、それは、新しいプロジェクトの開始時にこれらの選択肢をテストする価値があります。
   3. 〜12時間42℃で加熱プレート上で一晩スライドを乾燥させます。加熱プレートをカバーしてスライドには触れていないプラスチック製のふた。プラスチック製の蓋は空気の交換を妨げないことを確認してください。これに蓋を持ち上げることがピペットボックスまたは同様に配置することができる目指します。
      1. あるいは、2つの時間の最小値、または組織が完全に乾燥した表示されるまでの乾燥時間を短縮します。コレクションにスライスからの時間の短縮は、RNAの質を改善することができます。
   4. 化学フード、脱ワックススライド適切なスライドホルダーを使用して、キシロールで10分間、2回の下で。完全に乾燥した状態で保管されている金属フレームのより広い端をタッチしてスライドの除去を可能にするだけでなく、各スライドのプラスチック部分を沈めるようにしてください。
   5. スライドは前LAMへの化学フードの下で〜10分間乾燥することができます。
      注：すぐに処理されないスライドは、組織が数時間までのために上に向けて、42℃で背加熱プレート上に配置することができます。これは、さらなる処理までRNAの品質を損なうことから、任意の湿度を防ぐことができます。

4.レーザーアシストマイクロダイセクション（LAM）

注：LAMのための手順が使用される機器によって異なります。このプロトコルの特定の詳細は、特定の機器と静電気力を利用して、キャップのサンプルを収集する技術に適合されています。また、詳細があっても、ソフトウェアの異なるバージョン間で異なる場合があります。詳細な説明、機器やソフトウェアについての具体的な手順については、メーカーの説明書、ユーザーハンドブックを参照してください。

1. LAM（コンピュータ、顕微鏡、レーザーコントロールボックス）のための装置のスイッチをオンにします。
2. 顕微鏡とレーザーを操縦プログラムを起動します。
3. コントロールボックス上の対応するボタンを押すことにより、レーザのスイッチをオンにします。
4. キャップホルダーにキャップ（ディフューザなしで0.5ミリリットルを、）を配置し、機器でそれを配置します。
5. 顕微鏡用スライドガラスとLAMのスライドをサポートしています。とスライドの平らな表面ことを確認してください付着した組織は、スライドガラスに面します。
6. 下にスライドガラスを持つ楽器でスライドを配置します。
7. 4X目的を選択します。プログラムでは、「アップ」の位置にキャップを移動し、スライドのスキャンを行うために進むことを選択します。
8. スライドを検索し、興味の構造を識別します。ピンポイントおよび切断工程のための正確な位置に戻すことができるように、スライド上の位置を保存します。
9. 適切な目的（ 例えば 、40Xまたは60X）を選択します。
10. 必要に応じて、レーザ速度、焦点、およびレーザーパワーを調整し、また、機器のユーザーマニュアルを参照することにより、ステージ移動を較正します。アカウントが関心のある特定の組織のために設定されると、設定を再利用することができます。
11. 理想的には、組織のない膜の一部に、プログラムの「レーザーショット」ボタンを押して、シングルショットによるレーザ位置を確認します。
    1. 必要であれば、目に従うことによって、レーザーの位置を較正します楽器用の電子メーカーの指示。
12. 押されたマウスの右ボタンを保ち、モニタ上のソフトウェアのウィンドウのすべての四隅に明らかな構造を移動することによって、目的のキャリブレーションを確認します。明白な構造に関して、手の位置はすべての4つのコーナーで同じであることを確認してください。そうでない場合は、ソフトウェアのマニュアル、次の目標を調整します。
13. 「ダウン」位置にあるキャップを、 例えば 、卵細胞を目的の細胞型または組織の境界をマークする「ハンド・ペン」ツールを使用します。 「カット」を押して、レーザーで目的の細胞を分析。注：多くの場合、セルの周囲に境界線が完全に一度に解剖されなかった場合に繰り返される必要が切片。この場合には、自動的に標準としてセクションの2反復を行うためのソフトウェアを設定することをお勧めします。
14. キャップを持ち上げて、関心のある構造を持つ次の保存された位置に移動します。繰り返し手順4.131スライドから関心のあるすべての細胞が収集されるまで、次のセル部を分析するための手順の。キャップが新しいセクションは、キャップ上の空の位置にこだわっていることのように配置されていることを確認します。
    注：組織の大部分を分離するために推奨される（ 例えば、花全体またはその一部のセクション）新鮮なキャップ上の単一のセル部の分離後の各スライドから。これらは、RNAの品質管理のために使用することができます。
15. スライドを削除し、手順4.4繰り返して、次のスライドに進みます - 4.14に4.9と4.13を。
16. すべてのスライドから目的の細胞タイプまで、繰り返しステップ4.15および関連する手順は、単離されています。注：〜4よりも長く収穫することは推奨されません - 同じキャップに5時間。
17. 視覚的に、試料の非特異的な汚染を排除するためにLAM後キャップ面を検査します。非解剖組織はホイルで保護されていますが、塵は静電付着する表面に固執することができます。
    1. TO視覚的に、キャップを検査機器からスライドを削除します。 "ダウン」位置にキャップホルダを配置し、4Xの目的で表面を検査します。
    2. ほこりの小片が表示されている場合には、小さな（2μl）をピペットチップでそれらを削除します。また、スライド（なし組織）の自由部分にキャップを置き、バック機器のスライドをマウントし、完全にレーザーを使用して汚染を破壊します。
18. 閉じるキャップ、さらに使用するまで-80℃での乾燥セクションを凍結します。必要な場合、試料は数週間まで保存することができます。しかし、この段階で迅速に進んことをお勧めします。

5. RNAの分離および品質管理

注：RNAは、RNAの少量のに適した任意の方法によって単離することができます。このプロトコルではRNAの少量のために指定されたRNA単離キットを使用することが記載されています。製造元の指示に従ってください。

1. に接続されているサンプルとチューブを使用してくださいキャップ直接または-80°Cから除去した後。
   1. チューブを開き、慎重にフィルターチップを使用して、各チューブの壁に抽出緩衝液の11μLをピペット。サンプル間のヒントを変更します。
   2. 蓋を閉め、チューブのキャップまでの抽出緩衝液を振ります。
   3. 42℃に予熱した加熱炉内でダウンキャップでチューブを置きます。製造者の指示に従って30分間インキュベートします。
2. カラム調製については、製造元の指示に従って、チューブの底にエキスを集めます。
   1. 個別に各チューブ/キャップのための5.1.2 - 複数のキャップからの材料は、一つのサンプルに結合する必要がある場合は、ステップ5.1.1に進みます。
   2. （製造元の手順を参照してください）​​その後、一本のチューブに1サンプルのための抽出物をプールし、EtOHの当量を添加する前にピペットを用いてプールされた抽出物の量を測定します。
   3. ことを確認のEt量OH列をロードする前に追加されたがプールされた抽出物の量に等しいです。
   4. EtOHでのRNA沈殿させた後、製造者の指示に従って列の読み込みに迅速に進んでください。 100×gでの遠心分離工程でプロトコルを続行します。
   5. 各収集管の内容物がカラムを通過した後、フロースルー以下の製造者の指示を除去するために30秒間16,000×gでの遠心分離工程を行います。
   6. 製造者の指示に従ってRNA抽出および精製に進みます。
   7. カラムの溶出緩衝液をロードした後、カラムを1分間インキュベートすることを可能にします。製造元の説明書の指示に従って遠心分離にチューブをロードし続けます。注：溶出前に100×gで1分間の追加の遠心分離工程を、溶出の効率を高めることができるプロトコルに示されるように。
3. 続きからRNAを抽出このプロトコルの5.2.7へのステップ5.1以下のRNAの品質管理のためのrols（より大きな組織切片）。
4. 製造者の指示に従ってRNAピコチップを用いたバイオアナライザー上の各対照試料のRNA品質制御負荷1μlの希釈していない全RNAのため。
   注：抽出されたRNAは、マイクロアレイまたはRNA-、配列番号^{7,11,13,14を}用いた線形増幅およびトランスクリプトーム解析のために使用することができます。品質管理は、少なくとも7のRNA完全性番号（RIN）を示すべきであるサプライヤーの数が増幅に適したキットを提供する理想的には、適切な例⁹に記載されています。

結果

サンプル調製とLAMは、連続工程で行われています

連続したステップの数は、LAM（ 図1）によって選択された細胞型からの転写分析のためのRNAを調製する必要があります。これは、RNA集団は、収穫後に変わらないことを確実にするために、花の収穫と直接固定することから始まります。組織は、埋?...

ディスカッション

プロトコルは、異なる細胞や組織の種類に適しています

トランスクリプトームと組み合わせLAMは、マイクロアレイ分析により、またはRNA-のSeqは、発達または生理学的プロセス^{7-11,13,14を}調節する遺伝子活性の特定のパターンへの洞察を得るための貴重なツールです。しかし、任意の所与の細胞型のため、この方法の適合性は、構造的な問題に決定的?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Ethanol	VWR	1,009,861,000	absolute EMPROVE Ph Eur,BP,USP
15 ml falcon centrifuge tubes	VWR	62406-200
2100 Bioanalyzer	Agilent	G2939AA
Acetic Acid	Applichem	A3686,2500	100% Molecular biology grade
Ambion Nuclease free water	life technologies	AM9932
ASP200 S	Leica	14048043624	tissue processor
black cardboard			can be purchased in special paper shops
DNA- and RNAse-free Frame Slides	Micro Dissect GmbH		1, 4 µm PET-membrane; can also be purchased from Leica
Dumond Forceps	Actimed	0208-5SPSF-PS
ethanol lamp
exsiccator	Sigma-Aldrich	Z354074-1EA	Nalgene Vaccuum Dessicator or similar equipment
filter tips 10 µl	Axon Lab AG	AL60010	can be replaced by similar tips
filter tips 1,000 µl	Axon Lab AG	AL60010	can be replaced by similar tips
filter tips 20 µl	Axon Lab AG	AL60020	can be replaced by similar tips
filter tips 200 µl	Axon Lab AG	AL60200	can be replaced by similar tips
forceps precision	VWE	232-1221
glass slide holder	Huber & Co.AG	10.0540.01	Färbekästen nach Hellendahl
glass staining trough	Huber & Co.AG	10.0570.01	Färbekasten
Heated Paraffin Embedding Module Leica	Leica	Leica EG 1150 H	blocking station, similar devises are suitable
Heating and Drying Table	Medax	15501	other models and/or suppliers are suitable
ice bucket	VWR ice bucket with lid	10146-184	similar buckets equally suitable
light table	UVP An Analytical Jena Company	TW-26	white light transluminator
microscope slide	Thermo Scientific	10143562CE	cut edges
microtome blade	Thermo Scientific	FEAHS35	S35 microtome blade disposable
MMI Cell Cut Plus Instrument	MMI (Molecular Machines and Industries)
Non-stick, RNAse free Microfuge tubes, 2 ml	life technologies	AM12475
Paraplast X-TRA	Roth	X882.2	for histology
PicoPure RNA Isolation Kit	life technologies	KIT0204	Arcturus PicoPure RNA Isolation Kit
plastic balancing trays	Semadeni AG	2513
plastic box	Semadeni AG	2971	Plastikdose PS
plastic lid for heating plate			homemade
preparation needle	VWR	631-7159
RNA 6000 Pico Kit	Agilent	5067-1513
RNAse free microfuge tubes	life technologies	AM12400
RNAse ZAP Decontamination Solution	life technologies	AM9780
Semi-automated Rotary Microtome	Leica	RM2245	similar devices are equally suitable
Tissue Loc Histo Screen Cassettes	Thermo Scientific	C-1000_AQ	similar cassettes of other suppliers are suitable
Tubes with adhesive lid, without diffusor 500 µl	MMI (Molecular Machines and Industries)	50204
Xylol (Isomere) ROTIPURAN	VWR	4436.2	min. 99%, p.a., ACS, ISO SP
process embedding cassettes	Leica	14039440000	Leica Jet Cassette I without lid
Universal Oven	Memmert	UF55	other models and/or suppliers are suitable