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  • 開示事項
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  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

Here, we demonstrate how monocytes are isolated by magnetic bead separation from peripheral blood mononuclear cells after density gradient centrifugation of human anti-coagulated blood. Following incubation for 5 days, human monocytes are differentiated into immature dendritic cells and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting.

要約

Dendritic cells (DCs) recognize foreign structures of different pathogens, such as viruses, bacteria, and fungi, via a variety of pattern recognition receptors (PRRs) expressed on their cell surface and thereby activate and regulate immunity.

The major function of DCs is the induction of adaptive immunity in the lymph nodes by presenting antigens via MHC I and MHC II molecules to naïve T lymphocytes. Therefore, DCs have to migrate from the periphery to the lymph nodes after the recognition of pathogens at the sites of infection. For in vitro experiments or DC vaccination strategies, monocyte-derived DCs are routinely used. These cells show similarities in physiology, morphology, and function to conventional myeloid dendritic cells. They are generated by interleukin 4 (IL-4) and granulocyte-macrophage colony-stimulating factor (GM-CSF) stimulation of monocytes isolated from healthy donors. Here, we demonstrate how monocytes are isolated and stimulated from anti-coagulated human blood after peripheral blood mononuclear cell (PBMC) enrichment by density gradient centrifugation. Human monocytes are differentiated into immature DCs and are ready for experimental procedures in a non-clinical setting after 5 days of incubation.

概要

樹状細胞(DC)は、我々の免疫系の最も重要な特殊な抗原提示細胞です。未成熟DC(iDCを)は、皮膚または粘膜組織に存在し、侵入する病原体と対話するための最初の免疫細胞の間で、したがってあります。彼らは病原体検出、次のTおよびB細胞応答を活性化することができますので、DCは、先天性および適応免疫系1との間のブリッジを表します。さらに、それらは、IL-1β、IL-6、およびIL-12などのためのサイトカインの多量の分泌の前炎症性免疫応答に寄与する。 DCはまた、NK細胞を活性化および走化性によって感染部位に他の免疫細胞を引き付けます。

DCは、未成熟樹状細胞(iDCを)とその形態および機能に基づいて、成熟樹状細胞(mDCの)2に分けることができます。多くのパターン認識受容体( 例えば、Toll様受容体、C型の1による外来抗原の認識後レクチン、または豊富に細胞表面に発現)受容体を補完する、iDCをは大きな変化を受け、成熟し始めます。この成熟過程の間に、抗原捕獲のための受容体はダウンレギュレートされ、抗原提示に必須の分子がアップレギュレートされている一方、3。成熟DCアップレギュレート主要組織適合遺伝子複合体の抗原提示およびTリンパ球の活性化に必須であるCD80およびCD86のようなIおよびII(MHC I及びII)、共刺激分子、。さらに、細胞表面上のケモカイン受容体CCR7の発現は、リンパ節への末梢組織からのDCの移動を可能にする、誘導されます。移行は、リンパ節4-6のケモカインリガンド19(CCL19 / MIP-3B)およびケモカインリガンド21(CCL21 / SLC)の勾配に沿ってDCの「ローリング」によって促進されます。

移行後、mDCのは、このように、INI、CD4 +およびCD8 + T細胞をナイーブために処理抗原を提示します侵入病原体7に対する適応免疫応答をtiating。リンパ節におけるT細胞とのこの相互作用は、ウイルス8の広がりに関連しています。他のインビトロの研究では、DCが効率的に捕捉し、活発な感染9-12にこの送信結果T細胞へとすることをHIVを移すことを明らかにしました。これらの実験は、リンパ節への周囲からのシャトルバスとしてそのin vivoでの HIVの悪用のDCを強調表示します。抗原提示の間、DCは、エフェクターTヘルパー細胞の分化を形成し、したがって、微生物に対する全免疫応答の結果は、この非常に相互作用で決定されたキーのインターロイキンを分泌します。別にタイプ1(のTh1)および2型(Th2の)エフェクターT細胞、CD4 + Tヘルパー細胞の他のサブセット( 例えば、タイプ17(Th17細胞)およびタイプ22(TH22)T細胞)が記載されており、それらの誘導から、および機能は徹底的に研究されてきました。 DCはさらに、に関与しています制御性T細胞(Treg)13,14の世代。これらの細胞は免疫抑制性であり、停止または誘導またはエフェクターT細胞の増殖をダウンレギュレートし、従って免疫寛容を開発するために重要であることができます。

人間従来のDC(のCDC)は、骨髄起源( すなわち、ランゲルハンス細胞(LCS)と皮膚との間質のDC)またはリンパ系起源( すなわち、形質のDC(pDCに))を用いた細胞のいくつかのサブセットを含みます。 インビトロ実験またはDCワクチン接種戦略は、単球由来のDCは、日常的に、皮膚のDCのモデルとして使用されています。これらの細胞は、従来の骨髄樹状細胞への生理、形態学、および機能の類似性を示します。これらは、健康なドナー12,15-18から単離された単球のインターロイキン4(IL-4)および顆粒球マクロファージコロニー刺激因子(GM-CSF)を添加することによって生成されます。樹状細胞は、直接、皮膚または粘膜生検から単離することができる、またはできても、Beは子宮外を得た臍帯血サンプルから単離したCD34 +造血前駆細胞から開発します。ここでは、単球を単離し、密度勾配遠心分離により末梢血単核細胞(PBMC)、濃縮した後、抗凝固処理ヒト血液から刺激される方法を示しています。 5日間インキュベートした後、特定の条件下でヒト単球は、iDCをに分化され、非臨床設定において実験手順の準備ができています。

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プロトコル

倫理の声明:書面によるインフォームドコンセントは、輸血&免疫学専攻、インスブルック、オーストリア中央研究所によってすべての参加血液ドナーから得ました。科学的な目的のために匿名残りの標本の使用はインスブルック医科大学の倫理委員会によって承認されました。

末梢血単核細胞(PBMC)の1濃縮

  1. 遠心分離によるPBMCの濃度。
    1. 受け取った血液の量に応じて滅菌50ミリリットルの遠心分離管に血液パックとスプリット血液を開きます。
    2. 必要に応じて、無菌のダルベッコのリン酸緩衝生理食塩水(D-PBS)で各チューブのために50ミリリットルにボリュームを調整します。
    3. 遠心分離にチューブを配置し、ブレーキなしで室温(RT)で15分間400×gでそれらをスピン。
    4. boundarを残し、滅菌10ミリリットルの血清学的ピペットを用いて血漿および血小板を含む上層をオフに描きますy層を乱さ。
      注:代わりに、FCSの自己血漿を培養培地を補充するために使用される場合、血漿を回収しなければならず、この段階で熱不活性化。
    5. 2 50mlの遠心管から単核細胞(境界層)を収集し、滅菌した10ミリリットルの血清学的ピペットを使用して、1つの無菌50mlチューブに移します。
    6. 滅菌D-PBSを用いて各チューブのための50ミリリットルにボリュームを調整します。
    7. 遠心分離にチューブを配置し、ブレーキなしでRTで15分間、400×gでそれらをスピン。
    8. 邪魔されずに境界層を残し、滅菌10ミリリットルの血清学的ピペットを用いて血漿および血小板を含む上層をオフに描画します。
    9. 50mlの遠心分離管から単核細胞(境界層)を収集し、滅菌した10ミリリットルの血清学的ピペットを使用して、2つの滅菌50ミリリットルのコレクションチューブに移します。
    10. 滅菌D-PBSで各チューブのための50ミリリットルにボリュームを調整します。
  2. 分離密度勾配遠心分離によりPBMCの(図1)。
    1. 各チューブに密度勾配媒体の4 50mlチューブおよびピペット15ミリリットルを準備します。
    2. コレクションチューブ(ステップ1.1.10)からプールした細胞/血液の25ミリリットルを取り、慎重に密度勾配媒体を重ねます。
    3. 遠心分離にチューブを配置し、ブレーキなしでRTで30分間、700×gでそれらをスピン。
  3. PBMCの回収および精製。
    1. 滅菌10ミリリットルの血清学的ピペットを用いて、血漿および血小板、乱されていないPBMC層を残すことを含む上層をオフに描画します。
    2. すべての管からのPBMCの間期を収集し、滅菌した25ミリリットルの血清学的ピペットを使用して、2つの無菌50mlチューブに細胞をプール。
    3. 滅菌D-PBSで各チューブのための50ミリリットルにボリュームを調整します。遠心分離にチューブを配置し、ブレーキを4℃で15分間400×gでそれらをスピン。
    4. 上清を吸引除去し、再懸濁滅菌D-PBSで細胞。両方の管からの細胞をプールし、滅菌D-PBSで50ミリリットルにボリュームを調整します。
    5. 遠心分離にチューブを配置し、ブレーキを4℃で10分間400×gでそれらをスピン。
    6. 上清を吸引除去し、滅菌D-PBSで細胞を再懸濁。 D-PBS450μlのを含む1.5 mlチューブに滅菌D-PBSで50mlピペットを50μlにボリュームを調整します。
    7. 渦1.5mlチューブ激しくノイバウアー室または他の細胞計数器で細胞を数えます。
    8. 遠心分離機に50ミリリットルチューブを配置し、ブレーキを4℃で10分間400×gでそれらをスピン。

抗ヒトCD14磁性粒子による単球の2の単離

  1. 磁性粒子とのPBMCの標識。
    1. 分離緩衝液を使用して8×10 7細胞/ mlのPBMCの濃度を調整します。
    2. 渦抗ヒトCD14磁性粒子thoroughlyおよびすべての1×10 7のPBMCのために、粒子の50μlを添加します。
    3. 徹底的細胞粒子懸濁液を混合し、室温で30分間静置します。
  2. 正と負の分画の分離。
    1. 分離バッファを使用して12ミリリットルにボリュームを最大に調整します。
    2. 各チューブに細胞粒子懸濁液の6滅菌丸底チューブ、ピペット2ミリリットルを準備します。
    3. すぐに磁石上にチューブを置きます。 RTで10分間それをインキュベートします。
    4. 磁石上にチューブを保持し、上清を注意深く取り除きます。上清は陰性画分が含まれています。
    5. 磁石からチューブを外し、分離バッファの2ミリリットルを追加します。
    6. 静かにピペッティングにより細胞を再懸濁します。
    7. 背面磁石にチューブを入れます。 RTで5分間インキュベートします。
    8. 磁石上にチューブを保持し、上清を注意深く取り除きます。上清は陰性画分が含まれています。
    9. 磁石からチューブを取り外し、各チューブに分離バッファの2ミリリットルを追加します。静かにピペッティングにより細胞を再懸濁します。
    10. 滅菌50mlチューブに陽性画分を移し、滅菌D-PBSを用いて50ミリリットルにボリュームを調整します。

IL-4およびGM-CSFと分離された単球の3刺激

  1. 遠心分離機の中にチューブを配置し、ブレーキを4℃で10分間400×gで、それをスピン。
  2. 吸引した上清とD-PBS 50ml中で細胞を再懸濁します。
  3. D-PBS450μlのを含む1.5 mlチューブにピペットを50μl。渦1.5mlチューブ激しくノイバウアー室または他の細胞計数器で細胞を数えます。
  4. 遠心分離機に50ミリリットルチューブを配置し、ブレーキを4℃で10分間400×gで、それをスピン。
    注:末梢血リンパ球(PBLの)を含む陰性画分は、また、必要な場合は、洗浄を行い、カウントは、Tと同様の工程陽性画分のホース(3.1から3.5ステップ)。
  5. 予め温めた培地(RPMI 1640、10%熱不活性化FBSおよび1%L-グルタミン溶液を添加した培地)およびピペット3ミリリットル/ウェル、6ウェルプレートに1×10 6個 / mlに細胞濃度を調整します。
    注:熱不活化自己血漿を使用している場合は、実験のセットアップに応じて1〜5%の自己血漿と10%のFCSを交換してください。
  6. 培養培地中に直接サイトカインをピペッティングすることによって、組換えヒトIL-4(250 U / ml)および組換えヒトGM-CSF(千U / ml)を用いて単球を刺激します。 37℃で培養し、5%CO 2。
  7. 培養培地中に直接サイトカインをピペッティングすることにより48時間後のIL-4(250 U / ml)およびGM-CSF(1,000 U / ml)で細胞を再刺激します。
    注:培地中のpH指示薬により示される酸性化の兆候がある場合は、予め温めた培地で培地の半分を交換してください。
  8. 収穫はのために5日目に、樹状細胞を未成熟しました最大数回上下培地をピペッティングした後、6ウェルプレートのうち、50mlの遠心管に培養細胞をピペッティングすることにより、ダウンストリーム実験。
  9. 細胞をカウントし、一緒に細胞生存率色素で、のCD11b、CD11cの、およびDC-SIGN / CD209に対する抗ヒト抗体を用いて、単離された単球のサンプルを染色。表面染色時の抗体の非特異的結合を回避するために、試薬またはウシ血清アルブミン(BSA)のバッファをブロックするFc受容体の使用を強くお勧めします。
  10. 生成されたiDCの純度および生存率を評価するためにフローサイトメトリーを行うことにより、製造業者のプロトコルに従って、細胞生存色素を使用してサンプルを分析します。

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結果

スクロースクッションを用いて抗凝固処理血液の遠心分離後、末梢血単核細胞(PBMC)は、密度勾配媒体( 図1)の上に中間相が富化されています。 PBMCを引き出された後、FACS分析は、(Bリンパ球のために、例えば、Tリンパ球のためのCD3、単球のためのCD14、およびCD19)系列マーカーを用いたPBMC内の異なる細胞集団を特徴付けるために行われます。...

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ディスカッション

このプロトコルは、磁性ナノ粒子ベースのアッセイを用いて抗凝固血液からヒト単球の単離を通して単球由来樹状細胞(MDDCs)の生成を説明しています。このプロトコルでは、遠心分離工程は、PBMC画分の濃縮につながる細胞単離手順、上流で行われます。細胞を遠心分離中に失われているが、密度勾配媒体200〜300ミリリットル必要とする密度勾配媒体の全血パックの内容をオーバーレイし、?...

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開示事項

The authors have nothing to disclose.

謝辞

We would like to thank our technician Karolin Thurnes, Divison of Hygiene and Medical Microbiology, and Dr. Annelies Mühlbacher and Dr. Paul Hörtnagl, Central Institute for Blood Transfusion and Immunological Department, for their valuable help and support regarding this manuscript. We thank the Austrian Science Fund for supporting this work (P24598 to DW, P25389 to WP).

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資料

NameCompanyCatalog NumberComments
APC Mouse Anti-Human CD19 Clone HIB19BD Biosciences555415
APC Mouse Anti-Human CD83 Clone HB15eBD Biosciences551073
BD Imag Anti-Human CD14 Magnetic ParticlesBD Biosciences557769
BD ImagnetBD Biosciences552311
BSA (Albumin Fraction V)Carl RothEG-Nr 2923225
Costar 6 Well Clear TC-Treated Multiple Well PlatesCostar3506
Density gradient media: Ficoll-Paque PremiumGE Healthcare Bio-Sciences17-5442-03
Dulbecco’s Phosphate Buffered Saline (D-PBS)Sigma-AldrichD8537
Falcon 10 ml Serological PipetCorning357551
Falcon 25 ml Serological PipetCorning357525
Falcon 50 ml High Clarity PP Centrifuge TubeCorning352070
Falcon Round-Bottom TubesCorning352054
FITC Mouse Anti-Human CD3 Clone HIT3aBD Biosciences555339
Ghost Dye Violet 510 (Cell Viability Reagent)Tonbo biosciences13-0870
GM-CSFMACS Miltenyi Biotec130-093-862
Heat Inactivated FBS (Fetal Bovine Serum), EU Approved Origin (South America)Gibco10500-064
Hettich Rotanta 460RHettich---
IL-4 CCPromoKineC-61401
Isolation buffer: BD IMag Buffer (10x)BD Biosciences552362
L-Glutamine solutionSigma-AldrichG7513
Microcentrifuge tubes, 1.5 ml, SuperSpinVWR211-0015
PE Mouse Anti-Human CD14 Clone M5E2BD Biosciences555398
PE Mouse Anti-Human CD209 Clone DCN46BD Biosciences551265
RPMI-1640 mediumSigma-AldrichR0883
UltraPure 0.5 M EDTA, pH 8.0Invitrogen15575020

参考文献

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  2. Steinman, R. M., Hemmi, H. Dendritic cells: translating innate to adaptive immunity. Curr Top Microbiol Immunol. 311, 17-58 (2006).
  3. Steinman, R. M., Inaba, K., Turley, S., Pierre, P., Mellman, I. Antigen capture, processing, and presentation by dendritic cells: recent cell biological studies. Hum Immunol. 60, 562-567 (1999).
  4. Schwarz, J., Sixt, M. Quantitative Analysis of Dendritic Cell Haptotaxis. Methods Enzymol. 570, 567-581 (2016).
  5. Weber, M., Sixt, M. Live cell imaging of chemotactic dendritic cell migration in explanted mouse ear preparations. Methods Mol Biol. 1013, 215-226 (2013).
  6. Sixt, M., Lammermann, T. In vitro analysis of chemotactic leukocyte migration in 3D environments. Methods Mol Biol. 769, 149-165 (2011).
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  8. Wilflingseder, D., Banki, Z., Dierich, M. P., Stoiber, H. Mechanisms promoting dendritic cell-mediated transmission of HIV. Mol Immunol. 42, 229-237 (2005).
  9. Pope, M., Gezelter, S., Gallo, N., Hoffman, L., Steinman, R. M. Low levels of HIV-1 infection in cutaneous dendritic cells promote extensive viral replication upon binding to memory CD4+ T cells. J Exp Med. 182, 2045-2056 (1995).
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  13. Kapsenberg, M. L. Dendritic-cell control of pathogen-driven T-cell polarization. Nat Rev Immunol. 3, 984-993 (2003).
  14. Mills, K. H. TLR-dependent T cell activation in autoimmunity. Nat Rev Immunol. 11, 807-822 (2011).
  15. Banki, Z., et al. Complement as an endogenous adjuvant for dendritic cell-mediated induction of retrovirus-specific CTLs. PLoS Pathog. 6, e1000891(2010).
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