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Erratum Notice

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要約

本研究では神経変性条件下で血液-脳関門の破壊を評価するための簡単で効率的な手順を提案する.我々 の目的を達成するために我々 は高分子量かにラベル (FITC) を注入-マウス頸静脈にアルブミン静脈および蛍光顕微鏡による脳実質にその漏洩を評価します。

要約

血液脳関門 (BBB) 整合性の破壊は、異なる神経と神経変性疾患の一般的な機能です。開発と BBB の変化を正確に検出する信頼性の高いプロシージャの検証が重要であるし、便利なツールを表す摂動の BBB の恒常性と脳疾患の病態との間の相互作用は、さらなる調査を必要とするが潜在的疾患を予測するためターゲットを絞った治療戦略を進行と開発。

ここでは、BBB の BBB 透過性の欠陥は明らかに早熟で検出可能なハンチントン病のマウスの前臨床モデルで発生するそのような変性条件で漏れを評価するための簡単で効率的な手順を提案します。病気。具体的には、高分子量かにラベル (FITC)-アルブミン、後者は障害時にのみ、BBB を交差することがあるがマウスの頸静脈と血管や実質地区におけるその分布に鋭く融合その後、蛍光顕微鏡によって決定されます。

脳実質の緑色蛍光アルブミンの蓄積異常 BBB 透過性の指標として機能し、J の画像処理ソフトウェアを使用して量的に表わされるとき緑の蛍光強度として報告されます。

概要

中枢神経系 (CNS) 内の恒常性は、適切なコミュニケーションと神経細胞の機能のための前提条件です。中枢神経系柔密によって封鎖される周辺から、内皮細胞血液脳関門 (BBB)、末梢血流と脳との間のインターフェイスを表し、これらの 2 つの地区の1 間のクロストークで極めて重要な役割を果たしています。 ,2。BBB は複雑な専門マイクロ血管内皮細胞) 細胞複合体 - タイトな接合 (TJs) - によって互いにリンク、囲まれて周を主体とする立体構造物の動的ニューロン終末とアストロ サイトの足プロセス1,2。

生理学的な条件の下でそのまま BBB の非常に低透磁率により、脳の栄養素および他の分子の輸送の厳しい規制とにより中枢神経系の変化からユニークな保護、潜在的な末梢神経活動に影響を与える可能性があります血液の組成は、1,2,3を侮辱します。

BBB の整合性および高められた透磁率の中断長い神経の多くの重要な機能を構成するため知られている、神経変性障害4ただしハンティントンの病気 (HD)5,6, を含む、かどうかこのような機能不全が原因の現象や病気の過程で繁殖イベントはまだ不明です。BBB 破壊のタイミングもとらえどころのないまま、しかし、中断の BBB の整合性が、後半イベント早期のステップ6ではなく、病気の進行で,7を表さないことを示します出現の私達のグループと他の証拠,8、長期的な影響を持っている可能性があります。

これを念頭において、早熟役に立つ病気の進行と脳損傷を予測し、正常に代替しよりターゲットを絞った介入できるを開発する戦略を開発するために神経変性の BBB の内訳を明らかにすることが重要です。このような混乱の臨床結果を軽減します。したがって、BBB 減損の信頼性の高い画像は、脳疾患の診療・研究の主要な重要なのです。

本稿では高分子量フルオレセイン イソチオ シアン酸ラベル-アルブミン (FITC-アルブミン) を使用して、HD マウス モデルの BBB 透過性の評価の成功と単純な手順をについて説明します。通常、脳実質にバリアを越えることはできません FITC-アルブミンの漏出を BBB 漏れの指標として測定しました。この手法は、ラットと cerebrovasculature 障害9,10によって特徴付けられる他の病理学の条件に容易に適応可能であります。

プロトコル

動物のすべてのプロシージャは IRCCS Neuromed 動物介護審査会によって、承認された " 会館 Istituto スペリオーレ ディ Sanità " (許可番号: 1163/2015-PR) され、2010 年の EU 指令のガイドラインに従って/63/EU 動物実験

。

1 頸静脈に挿入される FITC-アルブミン溶液の調製

注: すべての実験が実施をマニフェスト (週齢 11) HD R6/2 マウス、時代、性別一致の野生型 (WT) コントロール。同腹子

。
  1. ディゾルブ FITC-アルブミン パウダー (材料表 参照) リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) で 10 mg/ml で
    。 注: 最適な結果を得るには、このため準備されるべき新鮮な各ラベルの反応
    2. 。

2。手術中に使用する機器の準備

  1. 以前オートクレーブの手術器具 (材料の表 を参照) をレイアウトします
    2. 。
  2. はクリーン アルコール (70% エタノール溶液) で手術のベンチです。手術滅菌使い捨てタオル ドレープで外科領域 (45 cm × 45 cm) を準備し、営業の実体顕微鏡を設定します
    3. 。

3。頸静脈へ FITC-アルブミン注入術

  1. 麻酔マウスの体重を記録します
    2. 。
  2. 麻酔マウス腹腔内注射 (i.p) ケタミン (100 mg/kg) - キシラジン (10 mg/kg) ソリューションの適切な投与量と
    3. 。 穏やかなつま先ピンチによる
  3. モニター動物鎮静反射を撤回は、Walantus ら に示すよう 11, 12.
  4. フェイス アップ仰臥位で麻酔下のマウスを置き、4 本の脚と尾を手術ワークベンチに粘着テープで固定します
    5. 。
  5. 電気カミソリで首に適切な外科的マージンを慎重に剃るマウスを確保した後 (材料の表 を参照) し、ポビドン ヨード ソリューションと 70% エタノールで消毒します
    6. 。
  6. 綿棒で露出剃毛表面を乾燥します
    7. 。
  7. 優しく剃毛の皮膚を引き上げ、1.5 cm 長い縦切開を行う、メス、鎖骨の中央で線胸部上中間の開始と首の下だけを拡張する.
  8. 鉗子外頸静脈を公開する顕微鏡観察 (5 倍) の下で慎重に離れて結合組織を伸ばす
    9. 。
  9. 右側に、FITC-アルブミン液の注入用 30 G 針の挿入を容易にするために頸静脈の左側に十分なスペースを確保する
    10. 。
  10. 動物を静脈内注入 (右頸静脈) ゆっくり (3 分以上) 10 mL/kg FITC-アルブミンの 100 μ L に 30 G の針を使用しています
    11. 。
  11. 15 分後、斬首でマウスを安楽死させる急速に前述 13 として頭蓋骨から脳を取り除く、中古冷蔵イソペンタンの少なくとも 10 倍脳自体のボリュームで 15 分間浸します
    12. 。
  12. 中古冷蔵チューブに脳を冷凍イソペンタンを移動し、組織学的断面まで-80 ° C のフリーザーに保存します
    13. 。

4。組織切片の脳を流し込んで FITC-アルブミン

  1. 埋め込む最適な切削温度 (OCT) で脳を複合冷凍クライオスタットを区分する前に (材料の表 を参照してください).
  2. 直列クライオスタットで 20 μ m 厚いセクションに脳を切る (材料の表 を参照)、顕微鏡用スライド グラスの上にそれらをマウントと
    3. 。
  3. 特定を用いて FITC-アルブミン/ラミニン共同染色を行う抗ラミニン抗体前述 6 の方法 (材料の表を参照してください).
    1. 簡潔に、一次抗体の抗ラミニン (pAb 1: 1000) でセクションを一晩インキュベート、Cy3 標識適切な二次抗体を続行します
      2. 。
    2. Coverslip スライド 4 を含むメディアをマウントを '、6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) (吸収ピーク = 360 nm; 発光ピーク = 460 nm (材料の表 を参照してください).
    3. 暗闇の中で 4 ° C で一晩乾燥してスライドのまま
      4. 。
    4. 蛍光顕微鏡下で染色する蛍光を観察 (材料の表 を参照してください) 両方の FITC 装備 20 倍の倍率で (吸収ピーク = 495 nm; 発光ピーク = 525 nm) および Cy3 フィルター (吸収ピーク = 550 nm; 排出量ピーク = 570 nm)。
      1. 染色後すぐにサンプルを表示するのにはマニキュアを使用してコーナーで coverslip を確保し、(4.3.3) 上記として顕微鏡の下でそれらを検討します
        2. 。

5。蛍光顕微鏡を設定とカラー画像集録

  1. 蛍光顕微鏡を次のように設定します。
    1. 蛍光ランプをオンに使用する前に約 10 分。顕微鏡、接続されているコンピューターやデジタル カメラをオンにします。画像解析ソフトウェアを実行 (材料の表 を参照してください).
    2. 最適な信号収集および空間分解能の適切な目的を使用し、適切なフィルターを選択します
      3. 。
  2. カラー画像の取得
    1. 画像解析ソフトウェアの [live] コマンドを選択 (材料の表 を参照してください)、各フィルターの最適な照明のパラメーター設定
      2. 。
    2. 単一チャネルのカラー画像を取り出してスケールバーを追加 [凍結] コマンドを選択する (' 編集 > を燃やすスケール ')
    3. 内の各イメージを保存、' .tiff ' 形式
      4. 。
    4. を選択してチャンネルを単一のイメージにマージ ' ファイル > マージ チャネル ' の保存と、
    5. tiff ' 形式
      6. 。
    6. 脳スライス (スライドごと 6 セクション) ごと (2200 μ x 3400 μ m) を写真 4 の 24 ビット色の最小値を取得します
      7. 。

6。FITC-アルブミン漏出の評価

  1. 自由に利用できる ImageJ 14 , 15 を使用して各単一チャネルの蛍光強度を分析します
    2. 。
  2. 合計各画像ごとラミニン CY3 蛍光強度による FITC-アルブミンの全蛍光信号強度を正常化し、グリーンの蛍光強度として血管外管外アルブミンを報告します
    3. 。

結果

FITC-アルブミン血流から緑色の蛍光トレーサーの BBB は脳 parenchymawhen に血管外漏出に頸静脈結果の適切な注入は、6を妥協しました。生理学的な条件の下で注入蛍光アルブミンの分布は脳の血管の内側に制限と周囲の血管領域や脳実質内に信号が検出できなかった (図 1 a、顕微鏡写真で、トップ)。逆に、BBB 神経病理学的状況下?...

ディスカッション

我々 はここで説明する手法は、主に脳疾患条件下で BBB の漏れを検出するため便利です。BBB の機能不全が多様な神経学的疾患4の共通の特徴として注目されています。我々 は以前 HD6のようなまれな神経変性疾患のマウスモデルで BBB 整合性の初期の異常を説明するのにこのアプローチを使用します。

このメソッドは、相対的な簡易性?...

開示事項

著者がある利益相反を開示するには

謝辞

この作品が"Fondazione Neuromed"でサポートされている、健康参加する「Ricerca グラーヴェ」イタリア省の資金

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
Albumin-fluorescin isothiocyanate conjiugateSIGMAA9771-100MG
pAb anti-LamininNovus BiologicalsNB300-144
CY3 anti-rabbit made in goatMILLIPOREAP132
SUPERFROST PLUSThermo ScientificJ1800AMNZ
Cover Slips 24 X 50 mmThermo Scientific (DIAPATH)61050
Kilik Optimal Cutting Temperature (OCT) compoundBio Optica05-9801
VECTASHIELD Mounting MediaVECTORH-1500Mounting media with DAPI
iNSu/Light Insulin Disposible SyringeRAYS Health & SafetyINS1ML26G13
30G 1/2"BD Microlance304000Needle for Insulin disposible Syringe
Scalpel HandleF.S.T.91003-12
#22 Disposable Scalpel bladsF.S.T.10022-00
Fine Iris scissors 10.5 cmF.S.T.14094-11
Dumont Forceps #5745 45° 0.10 x 0.06 mmF.S.T.11251-35
Graefe Forceps 10 cmF.S.T.11051-10
Dumont Forceps #5 0.1 X 0.06 mmF.S.T.11251-20
Medical patchMedicalis34788
Sterile disposable towel drapeDispotechTVO50VE
Stereoscopic MicroscopeNIKONSMZ 745 T
Optic Illuminator LED light (C-FLED2)NIKON1003167Optic Illuminator for Stereoscopic Micrscope
Eclipse Ni-U MicroscopeNikon932162Epifluorescence Microscope
Microscope digital CameraNikonDS-Ri2Microscope camera
IntenslightNikonC-HGFIMicroscope lamp
NIS-Elements 64 bitNikonAR 4.40.00Analysis Software
Electric RazorGemeiGM-3007

参考文献

  1. Obermeier, B., Verma, A., Ransohoff, R. M. The blood-brain barrier. Handb Clin Neurol. 133, 39-59 (2016).
  2. Serlin, Y., Shelef, I., Knyazer, B., Friedman, A. Anatomy and physiology of the blood-brain barrier. Semin Cell Dev Biol. 38, 2-6 (2015).
  3. Moretti, R., et al. Blood-brain barrier dysfunction in disorders of the developing brain. Front Neurosci. 9, 40 (2015).
  4. Zhao, Z., Nelson, A. R., Betsholtz, C., Zlokovic, B. V. Establishment and Dysfunction of the Blood-Brain Barrier. Cell. 163 (5), 1064-1078 (2015).
  5. Drouin-Ouellet, J., et al. Cerebrovascular and blood-brain barrier impairments in Huntington's disease: Potential implications for its pathophysiology. Ann Neurol. 78 (2), 160-177 (2015).
  6. Di Pardo, A., et al. Impairment of blood-brain barrier is an early event in R6/2 mouse model of Huntington Disease. Sci Rep. 7, 41316 (2017).
  7. Lecler, A., Fournier, L., Diard-Detoeuf, C., Balvay, D. Blood-Brain Barrier Leakage in Early Alzheimer Disease. Radiology. 282 (3), 923-925 (2017).
  8. van de Haar, H. J., et al. Blood-Brain Barrier Leakage in Patients with Early Alzheimer Disease. Radiology. 282 (2), 615 (2017).
  9. Fernandez-Lopez, D., et al. Blood-brain barrier permeability is increased after acute adult stroke but not neonatal stroke in the rat. J Neurosci. 32 (28), 9588-9600 (2012).
  10. Yang, Y., Rosenberg, G. A. Blood-brain barrier breakdown in acute and chronic cerebrovascular disease. Stroke. 42 (11), 3323-3328 (2011).
  11. Walantus, W., Castaneda, D., Elias, L., Kriegstein, A. In utero intraventricular injection and electroporation of E15 mouse embryos. J Vis Exp. (6), e239 (2007).
  12. Szot, G. L., Koudria, P., Bluestone, J. A. Transplantation of pancreatic islets into the kidney capsule of diabetic mice. J Vis Exp. (9), e404 (2007).
  13. Gage, G. J., Kipke, D. R., Shain, W. Whole animal perfusion fixation for rodents. J Vis Exp. (65), (2012).
  14. McCloy, R. A., et al. Partial inhibition of Cdk1 in G 2 phase overrides the SAC and decouples mitotic events. Cell Cycle. 13 (9), 1400-1412 (2014).
  15. Burgess, A., et al. Loss of human Greatwall results in G2 arrest and multiple mitotic defects due to deregulation of the cyclin B-Cdc2/PP2A balance. Proc Natl Acad Sci U S A. 107 (28), 12564-12569 (2010).
  16. Krueger, M., Hartig, W., Reichenbach, A., Bechmann, I., Michalski, D. Blood-brain barrier breakdown after embolic stroke in rats occurs without ultrastructural evidence for disrupting tight junctions. PLoS One. 8 (2), e56419 (2013).
  17. Hirano, A., Kawanami, T., Llena, J. F. Electron microscopy of the blood-brain barrier in disease. Microsc Res Tech. 27 (6), 543-556 (1994).

Erratum


Formal Correction: Erratum: Assessment of Blood-brain Barrier Permeability by Intravenous Infusion of FITC-labeled Albumin in a Mouse Model of Neurodegenerative Disease
Posted by JoVE Editors on 11/10/2017. Citeable Link.

An erratum was issued for: Assessment of Blood-brain Barrier Permeability by Intravenous Infusion of FITC-labeled Albumin in a Mouse Model of Neurodegenerative Disease. One of the author's names was corrected from:

Maglione Vittorio

to:

Vittorio Maglione

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