成体マウス後根神経節の調査の哺乳類の軸索の再生: In Vivoエレクトロポレーション

要約

エレクトロポレーションは、興味の遺伝子を細胞に提供する効果的なアプローチです。このアプローチは生体内で成体マウス後根神経節 (DRG) のニューロンに適用すると、軸索再生の生体を研究するためのモデルについて述べる。

要約

エレクトロポレーションは、DNA プラスミッドまたは小さな RNA 分子を細胞に導入する本質的な非ウイルス性遺伝子導入アプローチです。後根神経節 (Drg) の感覚ニューロンは、2 つの分岐の 1 つの軸索を拡張します。1 つの分岐は、周辺機器に行く神経 (末梢枝) と他の支店 (中央支部) 後根を介して脊髄に入る。神経損傷後末梢枝は中央支店、再生成しないに対し力強く再生されます。ため高い再生能力感覚軸索の再生は広く使用されてモデル システムとして末梢神経系 (PNS)、中枢神経系 (CNS) の両方で哺乳類の軸索の再生を研究します。ここでは、成熟したニューロンの生体内でエレクトロポレーションによる遺伝子発現を操作する以前に確立されたアプローチ プロトコルについて述べる。アプローチ芳司プラスミッドまたは小さな RNA oligos (Sirna またはマイクロ Rna) に基づき、遺伝子の利益または軸索再生の生体内の調節におけるマイクロ Rna の役割を検討する両方の損失と利得-の機能実験のためことができます。さらに、空間的そして一時的は比較的短時間で遺伝子発現の体内操作の制御ができます。このモデル系は、哺乳類の軸索の再生が規制生体内では分子メカニズム解明のためのユニークなツールを提供します。

概要

神経外傷による神経系の傷害または様々 な神経変性疾患は、通常、モーター、感覚と認知機能の欠陥になります。最近では、多くの努力は、負傷した生理機能ニューロン^1,2,3を復元する大人ニューロンの再生力再建に専念してきました。DRG ニューロンは痛み、温度、タッチ、または脳への姿勢など、さまざまな感覚刺激を伝達する神経細胞のクラスターです。各これらのニューロンは擬似単極、周囲に向かって拡張 1 つの支店と⁴脊髄に向かって他の支店を分割単一の軸索が含まれています。Drg の大人の感覚ニューロンはいくつか成熟した哺乳類神経損傷後の軸索を積極的に再生する知られています。したがって、感覚軸索の損傷広範囲として採用されている重要なモデル軸索再生の生体内のメカニズムを研究します。

生体内で遺伝子トランスフェクション技術は、通常以下をセットアップする時間がかかり、トランスジェニック動物を使用するよりもより柔軟な遺伝子の機能を勉強し、中枢神経系における情報伝達システムに必須の役割を果たしています。主な技術は、2 つの方法に分類できます: 計測器およびウイルス ベース⁵。大人ニューロンの遺伝子デリバリー ウイルス ベースは生体内で遺伝子発現⁶の正確な時空間操作を提供できます。しかし、労働集約的なプロセスは生産目的の遺伝子を含んでいるウイルス粒子の精製など、ウイルス ベースの方法で関与しています。さらに、多くのウイルスのベクトルは、データ集録、データの解析を妨げる可能性があり、可能性の実験結果の解釈を誤解するホストの免疫システムをアクティブにでした。エレクトロポレーション、典型的な楽器ベースのトランスフェクション アプローチ遺伝子ベクターまたは^{7 細胞外スペースから小さな RNA oligos の流入を支持の一過性細胞および原子膜の透過性を高める電気パルスを使用して、}.体外エレクトロポレーションは、さまざまなタイプのターゲット遺伝子発現を操作するための一時的な非常に効率的な戦略として認識されています。体内エレクトロポレーションは、効率が低い株ウイルスのベクトルと比較しての一時的な遺伝子発現に他ならない、ウイルスのアプローチに比べて様々 な利点があります。たとえば、ほとんどすべて組織・細胞^7,8,9に適用できます。さらに、特定の成績に対してどちらかのプラスミド (例えばSirna、マイクロ Rna) の興味の遺伝子または小さな RNA oligos 標的組織に直接注入でき、電気的パルス、手順にして以下の労働 - と時間のかかります。また、複数のプラスミドと単一エレクトロポレーションと同時に RNA oligos の株は、可能です。

我々 が成体マウス感覚神経細胞における遺伝子発現を操作する生体内でエレクトロポレーション アプローチを確立が正常に適用され、^1,パイオニア研究多数^{2,3 でこのようなアプローチを検証 ,8,10}。ここでは、哺乳類の軸索の再生の将来の研究のためのこのアプローチの使用を容易にするために詳細なプロトコルを提案する.

プロトコル

ジョンズ ・ ホプキンス機関動物ケアおよび使用委員会によって承認された動物のプロトコルに従ってすべての動物実験を行った。

1. 材料および試薬

1. 動物
   1. 実験のための 30-35 g の重量を量る 6 週齢雌 CF1 マウスを使用します。
      注: マウスだったグループは建物 (5 マウス ケージごと) 1/4"トウモロコシ穂軸ベッド、2" 平方 nestlets ネスティングのために滅菌個別換気ケージの中で。ケージされた制御された 12 時間の明暗周期で維持され、部屋の温度は 19.4 ° C から 25 ° Cマウスは、グローバルの齧歯動物の食事と自動水供給システムで飼育しました。
2. 楽器
   1. 次の手術器具を使用して、効率的に手術を実施する: 腹腔内注射用使い捨て注射器 (27 G、1.0 mL) 毛皮のクリッパー、ステレオ解剖顕微鏡、マイクロ手術鉗子、マイクロ外科はさみ、小さな骨 rongeurs滅菌不織スポンジ。
      注: すべての機器、材料、手術前にオートクレーブまたは生産者によって殺菌済み。手術中に楽器は滅菌を維持するために 75% アルコールを吹き付けています。
3. 麻酔のソリューション
   1. 麻酔を誘導し、DRG 注入前に麻酔解決策 #2 を使用して麻酔を維持するために麻酔液 #1 を使用してください。
      1. 麻酔液 #1 をするためには、ケタミン ・ キシラジン最終濃度 10 mg/mL と 1.2 mg/mL に滅菌生理食塩水で希釈します。
      2. 麻酔解決策 #2 をするためには、タヴェルタン最終濃度 20 mg/mL に滅菌生理食塩水で希釈します。
4. プラスミド DNA と RNA Oligos
   1. 次の製造元のプロトコルに応じて市販のキットを使用してプラスミッドを準備します。プラスミド Dna 濃度 2.0 μ g/μ L の滅菌の脱イオン水で希釈します。
   2. 0.005-0.01 の最終濃度に到達する高速グリーン色素溶液を追加注入中に DRG アウトラインの視覚化に適した % (v/v)。
   3. 50 μ M の最終濃度に到達するメーカーから提供される対応するバッファーでマイクロ Rna、siRNA または oligos を溶解します。
5. マイクロインジェクション ピペット
   1. マイクロ ピペットの引き手を使用して毛細管ガラスを引き、おおよそ 50 μ m 外径の開口部を生成するマイクロサージェリー ハサミで引っ張られた毛細管ガラス ピペットの先端をカットします。その後、約 20-30 分のためクリーン ベンチでの紫外線の下でガラス ピペットを滅菌します。
   2. 細胞内のマイクロインジェクションに接続して滅菌ガラス ピペット ピペット ホルダーのマウントは調剤システムです。30 psi の圧力の期間の 8 ms でのインジェクション システムのパラメーターを設定します。
6. エレクトロポレーション システム
   1. 方形波エレクトロポレーション システムに電極を接続し、次のパラメーターを設定:生体内でエレクトロポレーション用 950 ms 間隔で 35 V で 15 ms パルス。
7. 血流とソリューションを修正
   1. 4% (w/v) の濃度で 1 × PBS のパラホルムアルデヒド (PFA) 粉溶解します。4 ° C で PFA ソリューションを格納します。

2 実験手順

1. L4 と L5 Drg の手術手技
   1. #1 以前 (とケタミン 100 mg/kg 体重とキシラジン 12 mg/kg 体重) 準備麻酔液の腹腔内注入を使用するマウスを麻酔します。
   2. 毛皮クリッパーで外科領域を剃る。
      メモ: 左の坐骨神経のクラッシュのための別の手術がある、ので左大腿後部の毛皮が剃毛同時に。
   3. 温水毛布 (35.0 ° C) の上にマウスを置くし、温度プローブで直腸の温度を監視します。
   4. 麻酔をテストするには、つま先とマウスの尾をピンチ、行動反応を観察します。
   5. コルクボードの上でマウスの 4 つの手足をテープします。
   6. 皮膚を切断する前に、iodophor を削除する 75% アルコール iodophor ソリューションとし、外科領域を拭いてください。
   7. 麻酔中の乾燥を防ぐため目に眼軟膏を適用します。
   8. 切開する前に罰金のマーカーペンと腸骨稜の両側をマークします。L5 Drg の位置の識別を容易にする腸骨稜の 2 つの点を結ぶ直線を描画します。
   9. マイクロ剪刀と腰痛の正中線に沿って 3 cm の切開を行います。また、毛様体筋 multifidus と毛様体筋最長筋腰、S1 棘突起に L3 からなど、棘筋を外し、5 L4 と L5 6 椎間関節を公開します。
   10. 5 L4 と L5 6 椎間関節を削除するのにには、マイクロ rongeur を使用します。また、L4、L5、Drg の背側を公開する左の神経弓を削除します。
2. DRG 注入
   1. (200 mg/kg 体重をタヴェルタン) と麻酔解決策 #2 を挿入腹腔 DRG 注射の前に麻酔を維持するために。
   2. ガラス毛細管ピペットにプラスミド DNA または RNA oligos (DRG あたり 1 μ L) を読み込みます。
   3. DRG に毛細管ガラス ピペットの先端を慎重に挿入します。
   4. DNA プラスミドの 1.0 μ L 溶液を注入して徐々 にまたはに後根神経節細胞内マイクロインジェクションを使用して RNA oligos 塗布システム (30 psi、8 ms)。
      注: 注入の期間は、5 分を持続させるべき。
3. エレクトロポレーション
   1. 電極の先端に PBS をドロップします。
   2. 正方形の滅菌ガーゼで出血をクリーンアップします。
   3. 電極とターゲット DRG を軽くピンチ、エレクトロポレーション システム 5 正方形電気パルスを適用します。
   4. それぞれ 5-0 ナイロン縫合糸で筋肉と皮膚の層を閉じます。
   5. それは完全に胸骨の横臥を維持するために十分な意識を取り戻したまで細心の注意の下で温水毛布 (35.0 ° C) の上にマウスを配置します。麻酔から完全に回復した後マウスを家のケージに戻ります。
      注: それは 37 ° C 毛布に麻酔から完全に回復するためにマウスの約 60 分かかります。手術後の痛みを和らげるために給餌の 1 つ (200 mg) の丸薬イブプロフェンを 1,000 ml の水 (0.2 mg/ml) に溶解します。
4. 坐骨神経のクラッシュ
   1. DRG エレクトロポレーション後 (実験計画) によって 2 つまたは 3 日間は麻酔麻酔液 #2 (400 mg/kg 体重をタヴェルタン) と腹腔内でマウスです。
   2. コルクボードの上でマウスの 4 つの手足をテープします。
   3. 正中線に沿って左側に 1 cm の切開 0.5 cm を作る。大殿筋や梨状筋などの筋肉を縦にカットします。大坐骨孔と坐骨切痕の間坐骨神経の部分を公開します。
   4. 12 s のマーク 10-0 ナイロン epineural 縫合糸でクラッシュ サイト手術鉗子で神経のクラッシュ。クラッシュ サイトをマークする硬膜に結び目を作る。
   5. 5-0 ナイロン縫合糸で筋肉と皮膚の層を閉じます。
   6. それは完全に胸骨の横臥を維持するために十分な意識を取り戻したまで細心の注意と温水毛布 (35.0 ° C) の上にマウスを配置します。麻酔から完全に回復した後マウスを家のケージに戻ります。
      注: それは 37 ° C 毛布に麻酔から完全に回復するためにマウスの約 60 分かかります。手術後の痛みを和らげるために給餌の 1 つ (200 mg) の丸薬イブプロフェンを 1,000 ml の水 (0.2 mg/ml) に溶解します。
5. マウス灌流、DRG、坐骨神経の収穫
   1. 2 つまたは 3 日間 (実験計画) によって坐骨神経のクラッシュ後のマウス腹腔内麻酔解決策 #2 を麻酔します。
   2. 冷えた 4% パラホルムアルデヒド (PFA) (pH 7.5) PBS で続く PBS (pH 7.4) とマウス transcardially を灌流します。
   3. 後、マイクロ剪刀と解剖顕微鏡マイクロ鉗子一緒に神経根や坐骨神経膝に Drg を慎重に区切ります。4 %pfa 一晩 4 ° C で坐骨神経を直接に
6. イメージングと蛍光標識感覚軸索を測定
   1. 接続されている組織、マイクロ剪刀と解剖顕微鏡の下で慎重にマイクロ鉗子で固定の坐骨神経の膜をはがします。4% を交換し、十分に洗うと PBS PFA 神経 3 回します。
   2. スライドの坐骨神経を置き、それをまっすぐに保ちます。Antifade ソリューション、神経の周りの 80 μ L を追加し、それを観察を置きます。圧力マウント全体の組織をフラット化します。
   3. モザイク集録および画像処理用アクセサリーを搭載した倒立 epifluorescent 顕微鏡に flattened 組織を配置します。
      注: 励起と放射距離は、488 nm および 509 nm。また、手動で複数の重複した画像を取るし、一緒にプラグインのモザイクで ImageJ を用いた画像をステッチすることが可能です。
   4. 再生軸索の長さを測定する場合は、すべて identifiable fluorescently ラベルにおける軸索遠位軸索の端に (10-0 epineural 縫合でマーク) クラッシュ サイトから坐骨神経をトレースします。

結果

L4 と L5 Drg に DRG エレクトロポレーション体内のトランスフェクション率は十分に高く、注入我々 を検証し、現在のプロトコルの細胞毒性や electroporated 蛍光タグ付きマイクロ Rna、siRNA を定量化します。戸建の Drg を用いて電子顕微鏡や免疫組織化学 (図 1A B) 経由で処理されました。注射エレクトロポレーション後の細胞生存?...

ディスカッション

いくつかの手術の手順には、特に注意が必要です。L4 と L5 drg コード (細胞体の位置) は、坐骨神経を支配を正しく識別され、遺伝子構造に注入する必要があります。そうでなければ、GFP 標識が休演いたします坐骨神経軸索で。腸骨稜は、L4 と L5 Drg を特定する有用な解剖学的ランドマークとして見なすことができます。L5 と L6 の椎間関節面は、ほとんどマウス腸骨稜¹²に近?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
ECM 830 Square wave electroporation system	BTX Harvard Apparatus	45-0052	For in vivo electroporation
Tweezertrodes electrodes	BTX Harvard Apparatus	45-0524	For in vivo electroporation, 1 mm flat
Picospritzer III	Parker Instrumentation	1096	Intracellular Microinjection Dispense Systems
Glass Capillary Puller	NARISHIGE	PC-10
Borosilicate Glass Capillaries	World Precision Instruments, Inc.	1902328
Stereo Dissection Microscope	Leica	M80
Microsurgery Rongeur	F.S.T	16221-14
Microsurgery Forceps	FST by DUMONT, Switzerland	11255-20	Only for sciatic nerve crush
Glass Capillary	World Precision Instruments, Inc.	TW100-4	10 cm, standard wall
Tape	Fisherbrand	15-901-30	For fixing the mouse on the corkboard
2, 2, 2-Tribromoethanol (Avertin)	Sigma-Aldrich	T48402	Avertin stock solution
2-methyl-2-butanol	Sigma-Aldrich	152463	Avertin stock solution
siRNA Fluorescent Universal Negative Control #1	Sigma-Aldrich	SIC003	Non-target siRNA with fluorescence
microRNA Mimic Transfection Control with Dy547	Dharmacon	CP-004500-01-05	Non-target microRNA with fluorescence
Plasmids preparation kit	Invitrogen Purelink	K210016	GFP-coding plasmid preparation
Fast Green Dye	Millipore-Sigma	F7252	For better visualization of the DRG outline during injection
Ketamine	Putney, Inc	NDC 26637-731-51	Anesthesia induction
Xylazine	AnaSed	NDC 59399-110-20	Anesthesia induction
Acetaminophen	McNeil Consumer Healthcare	NDC 50580-449-36	Post-surgical pain relief