腎臓皮質細胞外マトリックス由来ハイドロゲルを製造

要約

ここで腎臓皮質細胞外マトリックス由来ハイドロゲル ネイティブ腎臓の細胞外マトリックス (ECM) 構造および生化学的組成を保持するを作製するためのプロトコルを提案する.作製プロセスとその応用を説明します。最後に、このゲルを使用して腎臓固有の細胞およびティッシュの再生とバイオ エンジニア リングをサポートする視点を説明します。

要約

細胞外マトリックス (ECM) は、組織の恒常性を維持するために重要な生物物理学的・生化学的手がかりを提供します。現在合成ハイドロゲルは、体外で細胞培養、細胞からの生理学的な行動を引き出すために必要なタンパク質とリガンド組成を欠いている機械の堅牢なサポートを提供しています。この原稿は、適切な機械的な堅牢性と支持の生化学的組成腎臓皮質 ECM から派生したハイドロゲルの作製方法をについて説明します。ヒドロゲルを作製するには、機械的に均質化と脱ひと腎臓皮質 ECM を可します。マトリックスも生理的機械剛性にゲル化を有効にするネイティブ腎臓皮質 ECM タンパク質比を維持します。ヒドロゲルは、生理的条件下で維持できる皮質細胞が腎臓に基板として機能します。さらに、腎臓病の今後の研究を可能にする病的環境をモデル化するゲル組成を操作できます。

概要

細胞外マトリックス (ECM) は、組織の恒常性を維持するために重要な生物物理学的・生化学的手がかりを提供します。複雑な分子の構成は、組織の構造と機能の両方のプロパティを調節します。構造タンパク質空間認識を細胞に提供し、の接着や移動の¹を可能にします。バインドされた配位子は、²セルの動作を制御する細胞表面の受容体と対話します。腎臓 ECM 分子の組成と構造の解剖学的位置、発達段階と疾患状態^3,4によって異なりますの茄多が含まれます。腎臓由来細胞で培養の研究に重要な側面は、ECM の複雑さをさたします。

ECM 微小をレプリケートする以前の試みは、recellularization のできる足場を作成する decellularizing の全体の組織に焦点を当てています。ドデシル硫酸ナトリウム (SDS) など化学洗剤または非イオン性洗剤で decellularization を実行し、それはどちらか全体の臓器灌流または液浸と撹拌方法^{5,6,7 を利用して ,8,9,10、11,12,13}。ここに示す足場ネイティブ組織 ECM; は、構造および生化学的手がかりを保持します。さらに、ドナー固有のセルと recellularization は、臨床外科^{14,15,16,17,18, 19}です。 ただし、これらの足場の構造の柔軟性を欠いているとの in vitro研究のため多くの現在のデバイスと互換性がありません。この制限を克服するために、多くのグループはさらにゲル^{20,21,22,23,24}に脱 ECM を処理しています。これらのゲルは、射出成形、bioink と互換性のあるおよび細胞足場場所を脱マイクロ メートル スケールの空間的制約を回避します。さらに、分子組成とネイティブの ECM の比は、^3、25が保持されます。ここで我々 は腎皮質 ECM (kECM) から派生したゲルを作製する方法を示します。

このプロトコルの目的は、腎臓の皮質領域の微小環境を複製するゲルを生成することです。腎臓皮質組織は、細胞内容物質を削除する定数撹拌下で 1 %sds の溶液で脱です。SDS は、免疫学的細胞材料^6,7,9,26をすばやく削除する能力のための組織を decellularize に使用されます。KECM、機械の均質化と凍結乾燥^5,6,9,11,26対象になります。ペプシンと強い酸で可溶化は、最終的なハイドロゲル原液^20,27の結果します。ネイティブ kECM 蛋白質構造の重要なサポートし、信号の伝達^3,25は保持されます。ヒドロゲルは、ネイティブのひと腎臓皮質^28,29,30の一桁内にゲルことができます。この行列は、他のマトリックス蛋白質のゲルに比べて腎臓固有の細胞の活動の静穏化を維持するために使用されている生理学的な環境を提供します。さらに、マトリックス組成を通じて操作できます、たとえば、コラーゲン添加-私は、腎線維化およびその他の腎疾患^31,32の研究モデル疾患環境に。

プロトコル

人間の腎臓は臓器調達機関の協会が定めた倫理的なガイドラインに従う LifeCenter 北西で隔離されました。このプロトコル ワシントン大学で動物のケアと細胞文化のガイドラインに従います。

1. ひと腎臓組織の準備

1. Decellularization 溶液の調製
   1. 5000 mL ビーカー、70 × 10 mm 攪拌棒を滅菌します。
   2. 1: 1000 (重量: ボリューム) ドデシル硫酸ナトリウム (SDS) ビーカーに脱イオン水をオートクレーブをミックスします。約 200 rpm 24 h または SDS を完全に溶解するまで撹拌プレートにソリューションを残します。
      注: 通常、1 %sds 溶液 2500 mL decellularize 単一ひと腎臓に十分です。
   3. 500 mL 滅菌真空フィルターに溶液を移し、滅菌密閉式コンテナーにフィルターを適用します。
2. 腎臓組織の処理
   1. 2 つの止血鉗子のペア クランプの洗浄、オートクレーブは、一般的なサービス グレードはさみ、2 つのメス刃ハンドル、アルミ箔と 36 x 9 mm 攪拌棒で覆われて 1000 mL ビーカー
   2. Underpad、ティッシュ文化フードを行します。ビーカー、無菌培養皿 (150 x 25 mm)、および全体の腎臓器官をボンネットに配置します。1 %sds 溶液 500 ml ビーカーを入力します。
      注: LifeCenter 北西から氷上人間の腎臓をいただきました。
   3. 滅菌のティッシュ文化皿 (図 1 a) で腎臓を配置します。すべての腎周囲の脂肪を削除するには、メス (図 1 b) と腎被膜周辺軽く剃毛します。
   4. メス、ちょうど腎臓の優れた終わり間で根本的な皮質組織を損傷することがなく腎被膜をこじ開けるに十分な深さの浅い 8-10 cm の切開を行います。腎被膜を削除するには、2 つの止血クランプ (図 1) で皮質組織から離れてそれを剥離します。
   5. (図 1) 腎臓の側面に沿ってメスを使用して、コロナの平面に沿って腎臓を二等分します。メス (図 1E) 髄質領域を切り開くによって両方の半分から皮質組織を分離し、0.5 cm³個セット (図 1 階) に皮質組織をサイコロします。任意の大規模な目に見える血管を削除します。
3. 細胞外マトリックスの分離
   1. ティッシュ文化フード 1 %sds 溶液 500 mL と 1000 mL ビーカーをご記入ください。SDS 溶液ビーカーにさいの目に切った皮質組織と攪拌バーを配置します。オートクレーブのアルミ箔でビーカーをカバーし、ティッシュ文化フードの外約 400 rpm で攪拌プレートの上に置きます。
   2. 皮質組織した 24 時間撹拌プレートの後、ティッシュ文化フードにビーカーを持参し、ナイロン メッシュで作られた 40 μ m 無菌細胞ストレーナを追加します。漂白剤 200 ml 別 1000 mL ビーカーを入力し、ティッシュ文化フードに配置します。
   3. 漂白剤を含むビーカーにセル ストレーナーを介して SDS 溶液をピペットします。310 とセル ストレーナーだけビーカーになるまでのすべての SDS 溶液をピペットします。
      注: セル ストレーナーは、ソリューション吸引中に削除されてから任意の組織を防ぐ必要があります。
   4. 新鮮な SDS 溶液 500 mL をビーカーで塗りつぶしセル ストレーナーを残します。同じアルミ箔でビーカーをカバーし前に、と同じ速度で撹拌プレートの上に置きます。
   5. 5 日間の合計のための手順 1.3.1-1.3.3 新鮮な SDS ソリューションでは 24 時間ごとを繰り返します。
   6. オートクレーブ ・ ディ ・水の 3 日間の合計、次の手順 1.3.1-1.3.3 のテクニックのすべての 24 h で脱組織をすすいでください。
   7. 脱組織細胞培養グレード水 2 日間合計、次の手順 1.3.1-1.3.3 のテクニックのすべての 24 h をすすいでください。
   8. 1.3.1-1.3.2 の手順を繰り返します。(呼ばれる kECM このポイントから上) 30 mL の円錐管が自立に decellularized 組織を転送し、すべての組織が水没するまで細胞培養グレードの水でそれを埋めます。

2. ハイドロゲル ストック溶液の作製

1. 310 の機械加工
   1. ティッシュ文化フードの機械的に 2 分のティッシュのホモジェナイザーの円錐形の管の内で kECM を均質化します。
      注: 均質化 kECM ECM のない目に見える部分と不透明なソリューションのようになります。
   2. もはや解決しない周囲のチューブを沸騰まで液体窒素で kECM を含む円錐管が水没します。一晩-4 ° C で kECM を格納します。
2. 凍結脱組織の凍結乾燥
   1. 若干ガス交換を可能にする凍結乾燥機にチューブを配置し円錐管キャップを緩めます。3 日間または同じ白い粉末になるまで、kECM を凍結乾燥します。-4 ° C でストア。
3. 化学的消化とゲルの可溶化
   1. オートクレーブ 20 mL シンチレーション バイアルとキャップ、15.9 × 7.9 mm 攪拌棒とファイン ・ チップ鉗子の一組。
   2. 凍結乾燥 kECM の重量を量ると塩酸とペプシンm_ペプシンがペプシンの質量を次の数式を使用して 3% (30 mg/mL) 溶液に kECM の可溶化に必要な量のボリュームを計算、 m_組織の質量凍結乾燥組織V_HClは、0.01 N 塩酸の量。
      
      
   3. ティッシュ文化フードのシンチレーション バイアルにブタの胃のペプシン、0.01 N HCl と攪拌棒を追加し、すべてのペプシンが溶けるまで約 500 rpm で攪拌板にそれを残します。シンチレーション バイアル凍結乾燥 kECM に転送し、3 日間約 500 rpm で攪拌プレートに対してソリューションをおきます。

3. ゲルのゲル化

1. 腎臓 ECM ハイドロゲル準備
   1. メディア サプリメント (M199) x 10、1 N NaOH で kECM ハイドロゲル原液を混合することによって、ゲルのゲルし、細胞培養媒体。氷の上のすべてのソリューションをしてください。
      メモ: 最終的なゲル 7.5 mg/mL の濃度は、細胞培養に使用されました。kECM ゲルの 1 mL は提示細胞培養実験のために十分だった。
   2. V_{在庫 kECM}は、必要に応じてストック kECM ハイドロゲルのボリューム、実行可能な kECM ジェルの量ストック kECM ハイドロゲルV_最終が作成したゲル量次の式を使用して必要な量を判断C_{株式 kECM}はストック kECM ハイドロゲルの濃度とC_最後は最終的なゲルの濃度。
      
   3. 中和V_{水酸化ナトリウム}が 1 N NaOH の量を次の式を使用して必要な試薬の量を決定する、 V_{10 X}は、M199 の体積 10 倍速のメディアを補完、そしてV_{1 X}が、細胞培養媒体の容積:
      
      
      
   4. ティッシュ文化フードのピペット滅菌 30 mL の円錐管が自立に中和試薬 (NaOH、M199、および細胞培養媒体) の。中和試薬溶液を混ぜて、microspatula。
   5. 1 mL の滅菌注射器を使用すると、中和試薬溶液に在庫 kECM ハイドロゲルの適切なボリュームを転送します。軽く混ぜ均一色ゲル溶液が得られるまでに、microspatula を使用します。
      メモ: は、ゆっくりと静かに攪拌によって空気の泡を導入しないでください。
   6. KECM ハイドロゲルに細胞を組み込む、ステップ 3.1.1.3 中和のソリューション ボリューム計算からの細胞培養媒体 (V_{1 X}) の 10 μ L を減算します。
      1. 10 μ L の細胞培養媒体にセルを中断します。#_セルが中断するセルの数を意味する次の方程式を使用して停止するセルの数を決定する、V_最終が作成したゲルのボリューム。
         
         注: 300,000 細胞/ml kECM ゲルで使用されるセルの濃度であります。
      2. KECM 原液を中和試薬溶液と混合されている後、最終 kECM ゲルに中断細胞液の 10 μ L をピペットします。セルが均等になるまで、microspatula を備えたソリューションをかき混ぜます。
2. 1 mL の注射器を使用して kECM ハイドロゲルに目的のセル培養デバイスを塗りつぶします。
3. 転送またはセルをめっきする前に 1 時間 37 ° C に設定するゲルを許可します。

結果

KECM ハイドロゲルは、ネイティブ腎臓の微小環境と類似の化学構造を持つ腎臓細胞培養のためのマトリックスを提供します。ヒドロゲルを作製するには、腎臓皮質組織は全体腎臓器官とさいの目に切った (図 1) から機械的に分離されます。洗剤粒子 (図 2 a.4 A.6) を除去する水でリンスが続く化学洗剤 (

ディスカッション

マトリックスは、細胞の挙動を支配する重要な機械および化学の手がかりを提供します。合成ハイドロゲルは、複雑な 3 次元パターンをサポートしますが、微小生体マトリックスは、多様な細胞の手がかりを提供するために失敗することができます。ネイティブの ECM から派生したゲルは、体内と体外の研究のための理想的な材料です。以前の研究はホスト免疫応答

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
Preparation of Kidney Tissue
5000 mL Beaker	Sigma-Aldrich	Z740589
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS)	Sigma-Aldrich	436143
Sterile H2O			Autoclaved DI H2O
Stir Bar (70 x 10 mm)	Fisher Science	14-512-128
500 mL Vacuum Filter	VWR	97066-202
Stir Plate	Sigma-Aldrich	CLS6795420D
1000 mL Beaker	Sigma-Aldrich	CLS10031L
Forceps	Sigma-Aldrich	F4642	Any similar forceps may be used
Scissor-Handle Hemostat Clamp	Sigma-Aldrich	Z168866
Dissecting Scissors	Sigma-Aldrich	Z265977
Scalpel Handle, No. 4	VWR	25859-000	Any similar scalpel handle may be used
Scalpel Blade, No. 20	VWR	25860-020	Any similar scalpel blade may be used
Stir Bar (38.1 x 9.5 mm)	Fisher Science	14-513-52
Absorbent Underpad	VWR	82020-845
Petri Dish (150 x 25 mm)	Corning	430597
Autoclavable Biohazard Bag	VWR	14220-026
Sterile Cell Strainer (40 um)	Fisher Science	22-363-547
Cell Culture Grade Water	HyClone	SH30529.03
30 mL Freestanding Tube	VWR	89012-778
Fabrication of ECM Gel
Tissue Homogenizer Machine	Polytron	PCU-20110
Freeze Dryer	Labconco	7670520
20 mL Glass Scintillation Vials and Cap	Sigma-Aldrich	V7130
Stir Bar (15.9 x 8 mm)	Fisher Science	14-513-62
Pepsin from Porcine Gastric Mucosa	Sigma-Aldrich	P7012
0.01 N HCl	Sigma-Aldrich	320331	Dilute to 0.01 N HCl with cell culuture water
Kidney ECM Gelation
1 N NaOH (Sterile)	Sigma-Aldrich	415413	Dilute to 1 N in cell culture grade water
Medium 199	Sigma-Aldrich	M4530
15 mL Conical Tube	ThermoFisher	339651
Cell Culture Media	ThermoFisher	11330.032	Dulbecco's Modified Eagle Medium: Nutrient Mixture F-12 (DMEM/F12)
Fetal Bovine Serum (FBS)	Gibco	10082147
Antibiotic-Antimycotic 100X	Life Technologies	15240-062
Insulin, Transferrin, Selenium, Sodium Pyruvate Solution (ITS-A) 100X	Life Technologies	51300-044
1 mL Syringe	Sigma-Aldrich	Z192325
Microspatula	Sigma-Aldrich	Z193208