CRISPR ベース Cas9 の競争の試金を使用して遺伝的依存関係の調査

要約

本稿では急性骨髄性白血病 (AML) 細胞増殖で複数の候補者の遺伝子の役割を簡単かつ迅速な捜査のためクラスター化定期的に空間短い回文を繰り返す (CRISPR) CRISPR ベース Cas9 方法を記述します。並列。この手法はスケーラブル、他癌細胞を同様に適用することができます。

要約

遺伝子摂動の研究は、急性骨髄性白血病の病因における個別遺伝子の役割を調べるため広く使用されています。これらの研究の多くをした完全な遺伝子破壊を達成するための複雑な遺伝子ノックアウト モデルを使用します。ノックアウト マウスとこれらの研究は、遺伝子型-表現型の関係を調査するためのエレガントで実績のあるシステムを提供しながら候補者の遺伝子を評価するための迅速かつスケーラブルな方法再生急性骨髄性白血病細胞増殖における役割またはアジア ・ マイル リミテッド モデルで生存複数の候補者の遺伝子の並列の尋問を加速するのに役立ちます。ゲノム編集技術の最近の進歩は、前例のない規模で遺伝的摂動を実行する当社の能力を大幅に強化しました。ゲノム編集の 1 つのようなシステムは、ターゲット細胞のゲノムに迅速かつ効果的な変更を加えるに使用することができます CRISPR ベース Cas9 の方法です。使いやすさとスケーラビリティ CRISPR/Cas9 を介した遺伝子削除のそれに 1 つ遺伝子の多数の尋問のための最も魅力的な技術表現型の試金。ここ、CRISPR/Cas9 を介した遺伝子破壊高スループット流れ cytometry による競争の試金と組み合わせてを使用して増殖に重要な役割を果たす可能性があります遺伝子の役割や人間の生存率を調査する簡易測定法を提案し、マウスの急性骨髄性白血病細胞株。

概要

過去数十年間は、急性骨髄性白血病 (AML) の病因に重要な分子経路の貢献を識別するのに焦点を当てた多くの研究努力を見てきました。伝統的に、急性骨髄性白血病細胞における遺伝子破壊は条件付きノックアウト マウスまたは短いヘアピン RNA (shRNA) を使用して行われています。ノックアウト マウスは、遺伝子欠失の時空間的制御のための洗練されたシステムを提供する間は、手間、時間がかかり、高価なは遺伝子ノックアウト マウスを生成します。さらに、遺伝子のノックアウト再結合戦略を使用して拡張が容易ではないです。これらの戦略は並列で複数の遺伝子の尋問によく自分自身を貸すか。小さい干渉の RNA (siRNA) または shRNA を使用してノック ダウン内因性 Mrna に RNA 干渉法の発見は後の多くのグループ AML の特定の遺伝子の役割を調査する RNA 干渉技術を使用し始めた。マウスとヒトの急性骨髄性白血病細胞は脂質ベースのトランスフェクションを伝統的な方法を使用して transfect に困難なのでほとんど lentivirally 採用、レトロ ウイルスでエンコードされた shRNA 急性骨髄性白血病細胞における遺伝子の機能を研究するための研究します。最近の発見は、定期的に空間の短い回文繰り返し (CRISPR) をクラスター化し、関連付けられた Ca 核酸 (CRISPR Cas9) は遺伝子ターゲティング技術^1,2,3に革命をもたらしました。CRISPR Cas9 を使用して、特定の遺伝子やゲノム領域削除、編集またはできますが付いた検索効率と使いやすさ。CRISPR ベース Cas9 遺伝子編集は、シンプルさ、有効性、この技術の幅広い適用性などの多様な細胞型の遺伝子型-表現型の関係を調査するための選択の方法として現れている今。CRISPR ベース Cas9 の方法も急性骨髄性白血病、個々 の遺伝子の尋問だけを目的としたアレイまたはプールされた遺伝的画面に複数の遺伝子を対象とする方法としても可能性として並列にいくつかの遺伝子の調査での選択の方法になっています。アジア ・ マイル リミテッド依存関係^4,5,6。

本稿では、安定した CRISPR Cas9 仲介された遺伝子 - に続く編集高スループット フローサイトメトリーに基づく急性骨髄性白血病細胞の成長の遺伝子破壊の影響を測定するための単純な競争力のある成長アッセイをについて説明します。このメソッドは、シンプルで効率的、かつ急性骨髄性白血病細胞における並列にいくつかの遺伝子の役割を調査するため媒体スループット実験にスケーラブルです。

プロトコル

1. 生成 AML 細胞ライン クローン安定的かつアクティブな Cas9 の高発現と

1. Cas9 レンチ ウイルスの生産
   1. 日 0: 4 x 10 DMEM のバイオ セーフティ レベル 2 の 10 cm の細胞培養用ディッシュ L-グルタミンとペニシリン 10% 牛胎児血清 (FBS) 10 mL (BSL2)⁶ 293 t 細胞は細胞文化フードを認定されています。37 ° C の定温器に料理を配置します。
   2. 1 日目: メッキ 293 t 細胞は 1 日に 70-80% の合流をする必要があります。トランスフェクション午後に次のプロトコルを使用してを実行します。
   3. 暖かいトランスフェクション媒体、文化メディアと部屋の温度にトランスフェクション試薬。Transfection のためのすべての必要なプラスミドを解凍します。
   4. PsPAX2、pMD2.G の 0.9 μ g、トランスフェクション 5 mL チューブ中の 500 μ L で pLenti Cas9 プラスミドの 9 μ g のミックス 9 μ g。
   5. 底部チューブ ラウンド 14 mL にトランスフェクション媒体の 1.7 mL を追加します。管の壁に触れないようにする管でトランスフェクション媒体に直接トランスフェクション試薬の 57 μ L を追加します。
   6. 優しくトランスフェクション試薬溶液に全プラスミド ミックスを追加し、そっと側にチューブをタップして混ぜます。20-30 分の室温で混合物を孵化させなさい。一方、シード 293 t プレートから媒体を変更します。
   7. プレートに滴下トランスフェクション ミックスを追加し、優しく高効率混合の横にプレートをロックします。37 ° C の定温器にプレートを配置します。
   8. 2 日目: セルを邪魔またはプレートから外れがないように優しくトランスフェクション プレートから上清を吸引します。上清を捨てます。新鮮な 10 %dmem 培地 10 mL を追加するには、セルを外れを避けるためにプレートの側面から軽く滑って。
   9. 3 日目は、10 cm の滅菌注射器にそれを描画することによってゆっくりとトランスフェクション プレートから上清を含むウイルスを収集します。注射器に収集された清は、シリンジに滅菌 0.45 μ M フィルターを添付、新鮮な滅菌 15 mL ポリプロピレン円錐管に注射器とフィルターを保持します。0.45 μ M のフィルターを通して 15 mL ポリプロピレン製コニカル チューブに上清を含むウイルスをフィルターする注射器を優しく突入します。
   10. -80 ° C で 2 mL クリオバイアル各 2 mL の因数でウイルス馴化培地を保存します。
2. 急性骨髄性白血病細胞の情報伝達
   1. 日-1: 希釈滅菌リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) と 10 μ g/mL に 1 mg/mL 組換え人間フィブロネクチン フラグメント ストックします。コート組織文化は、承認 BSL2 細胞文化フードの 10 μ G/ml 組換え人間フィブロネクチン フラグメント作業溶液 2 mL で 6 ウェル プレートを扱われます。一晩室温で保管蒸発損失を避けるためにしがみつくラップでプレートをラップします。
   2. 0 日目: は、Cas9 を含むウイルス上清を解凍します。Spinfection の直前にコーティングされたプレートから完全に組換えの人間フィブロネクチン フラグメント ソリューションを吸い出しなさい。プレートに Cas9 とウイルスの馴化培地 2 mL を追加し、35 ° C で 90 分 1,300 x gでスピンこれはよく spinfected を付けるウイルス粒子が役立ちます。
   3. 一方、導入されるセルを数えると 2 x 10 の⁶セル 15 mL ポリプロピレン円錐管でスピンダウンします。上清を吸引し、新鮮な培地 2 mL にペレットを再懸濁します。
   4. Spinfection 後、すべてのウイルス上清、spinfected からも取り外して廃棄します。上清からレトロ ウイルス粒子は、spinfected の下部にも添付されます。これにも、上記の手順から媒体の 2 mL で再停止される 2 x 10 の⁶セルを追加します。
   5. 再び 1,300 x でg非常に簡単に (1-2 分) セル下部に定住するように十分なプレートをスピンします。インキュベーターにバック プレートを置き、井戸に接続されている spinfected ウイルス粒子と伝達のため一晩おきます。
   6. 1 日目: 細胞密度によって、増殖を避けるために導入された細胞に多くのメディアを追加します。
   7. 2 日目: pLenti Cas9 プラスミドはブラストサイジン抵抗マーカーがあるので 10 μ G/ml 投与導入された、untransduced (コントロール) MOLM13 ブラストサイジンまたは MLL AF9 マウス白血病細胞発現細胞 Cas9 の選択を追加します。
      注:Untransduced コントロールのすべてのセルが除外されるとき、完全な Cas9 導入の MOLM13 または MLL AF9 白血病細胞のブラストサイジン選択と見なされます。以外の MOLM13 と MLL AF9 の白血病細胞株至適投与量を用いることができるように、用量応答曲線はこの実験の前に実行して必要があります。ウイルス上清の滴定は、低伝達率の場合も実行できます。
3. 高 Cas9 表現するセルの選択範囲を複製します。
   注:我々 は、いくつかの急性骨髄性白血病細胞株のクローンの選択する必要はありません気づいた: 一括選択 Cas9 ブラストサイジン人口はすでにいる高性能ゲノム編集します。この場合、手順 1.3 をスキップして手順 1.4 西部にしみが付くことによって一括 Cas9 ブラストサイジン急性骨髄性白血病細胞における Cas9 発現を評価するために移動することが可能です。それはまだ競争の試金に進む前にそれらの一括 Cas9 AML 細胞 (ステップ 1.5) で遺伝子編集効率を評価することが重要でしょう。我々 は単一高 Cas9 クローンの選択が異なる単一ガイド Rna (sgRNAs) の数をテストする場合に特に重要ですゲノム編集変動を減少させることを推測します。
   1. 単一セルの並べ替え Cas9 ブラストサイジン選択 MOLM13 と MLL AF9 の白血病細胞がそれぞれ、MOLM13 Cas9 と MLL AF9 Cas9 セルと呼ぶ承認 BSL2 フードに含まれる FACS ソーターを使用してを実行します。5-10 丸底組織培養治療 96 ウェル プレートに並べ替えを実行できます。
   2. 単一 MOLM13 Cas9 と MLL AF9 Cas9 クローン ピックアップされているし、個別に名前をブラストサイジンの 10 μ G/ml Cas9 式の維持培と 10-20 クローン。
4. 式をイムノブロット安定 Cas9 蛋白質をチェックします。
   1. 製造元のプロトコルに従って核抽出キットを使用して MOLM13 と MLL AF9 の白血病のすべての選択したブラストサイジン クローンの核抽出液を作る。反フラグ M2 抗体 pLenti Cas9 プラスミドの Cas9 以来 N 末端 Flag エピトープにリンクされるを使用して Cas9 蛋白質の表現をチェックします。
   2. 10% ビス トリス ゲルし、アッパー バンドはよく分かれているまで、120 V でゲルを実行に各核エキスから総蛋白の 50 μ g をロードします。
   3. 1 h の TBST バッファーで 5% ミルク ソリューションと膜をブロックします。
   4. 縮尺 4 ° C で 1 μ G/ml の最終濃度は一晩で反フラグ M2 抗体の希釈で膜を孵化させなさい。
   5. 次の日は TBST バッファーを持つ膜を洗って 1 時間室温で 1:5,000 (0.16 μ G/ml の最終的な集中) の希釈で HRP 共役抗マウス抗体とインキュベートします。
   6. TBST で徹底的に膜を洗浄し、ECL 基板を用いたしみを開発します。
   7. 西部のしみの詳細な機能分析 (図 1) で見られるように Cas9 の最高蛋白質発現と 3-4 のクローンを選択します。
5. 選択されたクローンの高 Cas9 活動の確保
   1. 人間を対象とする sgRNAs と sgRNA エンコード ベクトルからレンチ ウイルス上清を準備または手順 1.1 で説明されているように AAVS1 セーフハーバー軌跡をマウスします。
   2. 上部の Cas9 を表現する MOLM13 を変換または MLL AF9 白血病・上記 spinfection 法を用いた抗 AAVS1 sgRNA のレンチ ウイルス上清をクローンします。4 日間の 2.5 μ g/mL ピューロマイシンを選択します。
   3. 製造元の指示に従ってゲノム DNA 抽出キットを使用してそれぞれの野生型コントロールと共にピューロマイシンを選択後 MOLM13 Cas9 または MLL AF9 Cas9 白血病のクローンからゲノム DNA を浄化します。Taq のポリメラーゼと表 1に記載されている PCR プログラムのマスター ミックス × 2 を使用して、AAVS1_test_primers と pcr のテンプレートとして DNA の使用 50 ng。
   4. 2% の agarose のゲルの PCR の製品を実行し、ゲルは、製造元のプロトコルに従ってゲル抽出キットを使用して 268 塩基対バンドを浄化します。サンガー シーケンス ゲル精製 AAVS1_target frag_F プライマーを用いた PCR の製品です。
   5. 編集 AAVS1 の比較とオンライン web ベースのツール (図 2) を使用して野生型シーケンス編集効率を評価します。

2. クローニングと急性骨髄性白血病 Cas9 細胞における sgRNAs の伝達

1. SgRNAs のクローニング中スループット
   1. Web ベースの CRISPR デザイン ソフトウェアを使用して興味の遺伝子のための 4-6 sgRNAs をデザインします。CRISPR デザイン ツールの数利用できるあるオンライン入力の DNA シーケンスに基づいて sgRNA シーケンスを生成する http://crispr.mit.edu/ など。
      1. アスタリスク付きのフィールドに適切な情報を入力します。SgRNA 設計のためのターゲット ゲノムをクリックします。シーケンスボックスでターゲット シーケンスを貼り付け、 [送信] ボタンをクリックします。
   2. PKLV2 U6gRNA5 (BbsI) - PGKpuro2ABFP - で複製用 W sgRNA 発現プラスミド、注文する前に感覚オリゴと逆補完アンチセンス オリゴに"AAAC"に"CACC"ヌクレオチドを付加します。96 ウェル プレートでの予混合の順序と反感覚 oligos オリゴヌクレオチド合成会社からオリゴ ミックスを分類しました。
      注:我々 はした pKLV2 U6gRNA5 (BbsI) - PGKpuro2ABFP - の使用 W プラスミド sgRNA のクローニングのために BbsI 制限のサイトを持っています。他の sgRNA の発現プラスミドを使用する場合 sgRNA オリゴヌクレオチド用オーバー ハングを適切に変更する必要があります。
   3. 焼鈍板のラベル別 U 下 96 ウェル プレートを取る。1 μ L のマスター ミックスを作る T4 PNK、T4 DNA 結紮バッファー x 10 の 1 μ L とアニーリング反応あたりの水の 6 μ L。
   4. アニーリングのプレートの各ウェルにマスター ミックスの 8 μ L を追加します。1 μ L 各 100 μ M のセンスとアンチセンス オリゴ (または追加 2 μ L 混合意味アンチ意味 oligos の) マスター ミックス。ピペットの 2-3 回軽くよく混ぜて、井戸の底にミックスを簡単にプレートをスピンします。
   5. PCR マシンに次のアニーリング プログラムを使用: 95 ° C で 2 分 30 秒 37 ° C で 30 分が 0.1 の割合で 22 の ° C の低速冷却続いて ° C/s。焼鈍後、希釈 OligoMixラベル新鮮な 96 ウェル プレートを取る。この板でマルチ チャンネル ピペットを使用して水 (レバレッジ) と上記反応からリン酸化及び焼なまし oligos を希釈します。
   6. PKLV2-U6gRNA5 (BbsI) - PGKpuro2ABFP - のダイジェスト 5 μ W ベクトル BbsI 制限酵素 (10,000 台/mL) の 1.5 μ L で結紮後のリニア化する適切なバッファーを 37 ° C で 2 時間使用します。
   7. 結紮プレートラベル新鮮な 96 ウェル プレートを取るし、20 を追加、BbsI の ng 消化 (BbsI) - PGKpuro2ABFP - pKLV2-U6gRNA5 W ベクトル目的 sgRNA 結紮あたり 1 つの井戸に。これに、希釈 OligoMixプレートからリン酸化、焼なまし oligos の 2 μ L を追加します。
   8. 10 x T4 リガーゼ バッファーの 1 μ L と T4 DNA リガーゼの酵素の 1 μ L を追加します。ゆっくりとマルチ チャンネル ピペット ピペットし、結紮ミックス 2 時間室温で孵化させなさい。
      注:結紮ミックスは、変換ステップ後の-20 ° C で保存できます。
   9. 一方、化学的に有能なエシェリヒア属大腸菌の雪解け 90 μ L 細胞氷上結紮のステップの終わりの前に 10 分。
   10. マルチ チャンネル ピペットを使用して、別 96 well プレートの各ウェルに有能なセルの 10 μ L の因数を作る。
   11. 含まれている有能なセル、ピペットを上下軽くステップ 2.1.8 から結紮混合物を追加し、室温で 10 分間インキュベートします。
   12. ピペット 5 μ L、6 に上記の反応から直接細菌 DNA のミックスのウェル プレート 100 μ g/ml のアンピシリン LB 寒天培地を含みます。変換反応のそれぞれに対して繰り返します。
   13. 6 ウェル プレートの別々 にラベルにそれぞれ変換反応をプレートします。それぞれに約 5-8 ガラスビーズも、円形の動きで全体 6 ウェル プレート 8-10 回を振るを追加します。
   14. 滅菌 20 μ L ピペット チップの各ウェルから 1-2 シングル コロニーをピックアップし、LB 寒天と 100 mg/mL アンピシリン滅菌 10 cm シャーレに慎重に標識の場所にそれを連勝します。LB プレートにストリー キング、単に対応する細菌のクローン番号付いている底部チューブ ラウンド 14 mL に含まれている媒体 LB アンピシリンの 3 mL に飛び込んだクローン用先端をイジェクトします。
   15. サンガーの直接細菌のプレートを送る人間 U6 プロモーター進むプライマーによるシーケンスします。
   16. クローンとして作られた sgRNAs の順序の確認の後の製造元の指示に従って小型準備キットを使用して対応する 14 mL チューブから DNA を浄化します。
   17. 分光光度計と濃度とミニ プレップの品質を測定します。SgRNA クローン プレート標識 96 well プレートに 15 ng/μ L のピペット濃度各小型準備を正規化します。
       注:このプレートは、-20 ° C で保存またはウイルスの準備のために直接使用できます。
2. ウイルスの生産の sgRNA の構造と情報伝達
   1. 96 ウェル フォーマットで sgRNA レンチ ウイルス粒子の生産のために従う、「shRNA/sgRNA/ORF 高スループット ウイルス生産 (96 よく)"ブロード研究所の遺伝的摂動プラットフォーム (GPP web ポータル) からプロトコル (URL: https://portals.broadinstitute.org/gpp/public/resources/protocols)。
   2. 生殖不能の管にウイルス上清 200 μ L を転送し、すぐに-80 ° C で凍結します。
   3. 日-1: コート BSL2 細胞文化フードの 10 μ G/ml の濃度で組換えヒト フィブロネクチン フラグメントの 100 μ L で底が平らな非組織文化治療 96 well プレートです。蒸発損失を避けるために、ベンチで一晩置いておくしがみつくラップを使用してプレートをラップします。
   4. 日 0: 各ウェルから遺伝子組換えの人間フィブロネクチン フラグメントを削除します。室温で各 sgRNA のウイルス上清を解凍します。各伝達板のコーティングに各チューブからウイルス上清の 50 μ L を追加します。35 ° C で 90 分 1,300 x gで伝達プレートをスピンします。
   5. Spinfection の終わりに MOLM13 Cas9 (クローン B3) 細胞培養用フラスコからをカウントします。100 μ L のボリュームの井戸あたり 10,000 のセルを使用します。デッド ボリュームを考慮したすべての伝達の井戸のセルをカウントします。
   6. 90 分 spinfection 後プレートを傾けることによってゆっくりと 50 μ L に調整、マルチ チャンネル ピペットを使用してすべての井戸から上清を削除します。MOLM13 Cas9 クローン B3 セルの文化の 100 μ L を追加すると、各もゆっくりと滑って縁から。
   7. セルの下に解決させる 35 の ° C で 2 分間 1,300 x gでプレートをスピンします。プレートを 37 ° C の組織培養グレードのインキュベーターに転送します。
   8. 1 日目: 新鮮培地も含む各 sgRNA の 100 μ L 導入 Cas9 MOLM13 または Cas9 MLL AF9 白血病細胞の最終的な中量 200 μ L を追加します。

3. 競争力のある成長分析

1. 日 3:72 時間 (3 日目) 伝達をポスト, フローサイトメトリー (FACS) による各ウェルで BFP 陽性細胞を含む sgRNA の割合をチェックします。マークし、死んだ細胞を解析から除外する細胞生存性染料を使用します。
2. 新しい井戸にアッセイ中増殖を避けるためにすべての FACS 解析後新鮮な培地で細胞の割合を再メッキを続行します。
3. BFP の負 (BFP ve) 対応 (図 3) に比べて BFP (BFP + ve) 陽性細胞の割合をチェックするごとに 2-3 日間 FACS 解析を繰り返します。(FlowJo または類似の FACS 解析ソフトウェアを使用して) 各時点の BFP 陽性細胞の割合を分析します。
   1. FlowJo ソフトウェアに各サンプルの Fcs ファイルをドラッグします。任意の 1 つのサンプル ファイルをダブルクリックし、対側方散乱 (SSC) の FSC と X 軸と SSC Y 軸上前方散乱 (FSC) のドットのしみをプロットします。すべてのセルをゲートします。
   2. ゲートのセルをダブルクリックし、対 FSC 高さ (H) または領域 (A) 点のしみ (Y 軸) 上の生存率染色上にプロットします。ゲート生存率は負 (ライブ) 細胞を染色します。
   3. ゲートの生きているセルをダブルクリックし、X 軸に FSC (A) 対 (Y 軸) 上 BFP のプロットします。ゲート BFP + ve の細胞。[グループ] タブの下ですべてのサンプルに選択したサンプルをドラッグしてすべてのサンプルにすべてのこれらのゲートを適用されます。
   4. すべてのサンプルの分析表を作成する表エディターをクリックします。テーブルに 1 つのサンプルからBFP + veの数をドラッグし、 BFP + veのセルの割合を表示するテーブルを含むすべてのサンプルのバッチ レポートを作成するテーブル エディターの表示] ボタンをクリックします。Xls としてテーブルを保存します。
4. 比例した増加を計算や時間をかけて生きている細胞集団内 %bfp 陽性細胞の減少 (ルシフェラーゼ、スクランブルなど GFP sgRNA) 制御 sgRNAs で BFP 陽性細胞の比率にこの比率を比較します。
5. ベースラインとして 3 日目を使用して、コントロールと同様に、興味の遺伝子を含む異なる sgRNAs の BFP 陽性細胞の比率をプロットします。

結果

本研究で我々 は最初高力価ウイルス Cas9 ブラストサイジン レンチ ウイルス プラスミドをエンコードと MLL AF9 転座をクマ MOLM13 ヒト急性骨髄性白血病細胞株を導入しました。私たちの手では、一括未整理 MOLM13 Cas9 セル西部にしみが付くことによって高レベル Cas9 式表示されずもしていないメソッドを編集-使用して高効率な遺伝子の場合に、⁷を前述?...

ディスカッション

本稿では、人間/マウス急性骨髄性白血病細胞 (図 5) でフローサイトメトリーを用いた急性骨髄性白血病細胞株における候補者の遺伝子の役割を調査する競争力のある成長の CRISPR ベース Cas9 アッセイを行うための詳しいプロトコルについて述べる。分析の目的は、中規模で 2、3 週間以上の急性骨髄性白血病細胞の増殖維持に関する遺伝子欠失の影響を識別するためにで...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
FLAG-M2 Antibody	sigma-aldrich	F3165, lot # SLBS3530V
Anti-mouse Antibody	Invitrogen	31446, lot # TA2514341
SuperSignal West Femto Maximum Sensitivity Substrate	Thermo Fisher	34095
ChemiDoc Imaging System	BIO RAD	17001401
Sorvall Legend RT centrifuge	Thermo Scientific
Blasticidin	Thermo Fisher	R21001
SYTOX Red	Thermo Fisher	S34859
Opti-MEM	Thermo Fisher	31985062
DMEM	Thermo Fisher	11965-092
RPMI	Thermo Fisher	11875-093
Penicillin-Streptomycin	Thermo Fisher	15140122
L-Glutamine (200 mM)	Thermo Fisher	25030081
Fetal Bovine Serum (FBS)	SAFC	12303C
single gRNA vector	Addgene #67974	pKLV2-U6gRNA5(BbsI)-PGKpuro2ABFP-W
CelLytic Nuclear extraction kit	sigma-alorich	NXTRACT
XtremeGENE 9	sigma-alorich	6365787001
Retronectin	Takara	T100B
Flow cytometer	BD Biosciences
T4 PNK	NEBioLabs	M0201S
T4 DNA ligation buffer	NEBioLabs	B0202S
T4 DNA Ligase enzyme	NEBioLabs	M0202S
Ampicillin	Fisher scientific	BP1760-25
LB agar	Fisher scientific	BP9724-500
LB Broth	Fisher scientific	BP9731-500
Qiagen mini-prep kit	Qiagen	27104
NanoDrop Spectrophotometer	Thermo Fisher	NanoDrop One
Recombinant Murine IL-3	Peprotech	213-13
Recombinant Murine IL-6	Peprotech	216-16
Recombinant Murine M-CSF	Peprotech	315-02
Stable competent cells	NEBiolabs	C3040I
10 cm Tissue Culture dishes	Fisher Scientific	353003
Cell lysis solution	Qiagen	158906
Protein precipitation solution	Qiagen	158910
DNA hydration solution	Qiagen	158914
QIAquick Gel Extraction Kit	Qiagen	28704
BbSI	New England BioLabs	R0539S
APEX 2.0x Taq Red Master Mix Kit	Genessee Scientific	42-138
Puromycin	Fisher scientific	BP2956100
50 mL polypropylene conical tubes	Fisher scientific	1495949A
15 mL polypropylene conical tubes	Fisher scientific	1495970C