ピールブロット法:多層または濃縮された生物学的サンプルから単層を分離するクライオEMサンプル調製法

要約

ピールブロット法は、多層および濃縮された生物学的サンプルを単層に分離して、厚さを減らし、サンプル濃度を高め、画像処理を容易にするクライオEMグリッド調製法です。

要約

ピールブロットクライオEMグリッド調製技術は、多層サンプルの層の削減を達成することを目的として、大幅に変更されたバックインジェクション法です。急落凍結の前にこのように層を除去することで、クライオEMデータ収集に適したレベルまでサンプルの厚さを薄くし、サンプルの平坦性を改善し、画像処理を容易にすることができます。ピールブロット法により、多層膜を単層に、層状2D結晶を個々の結晶に分離し、可溶性タンパク質の積層シート状構造を同様に単層に分離することができます。これらのタイプのサンプルの厚さが高いと、特にデータ収集のために顕微鏡ステージを傾ける必要がある場合、クライオEMデータ収集およびクライオEM画像処理に克服できない問題が発生することがよくあります。さらに、グリッド調製前のサンプル濃度を高め、ピールブロット技術で単層サンプルの密な分布をもたらすように調整できるため、これらのサンプルのいずれかの高濃度のグリッドを調製して効率的なデータ収集を行うことができます。

概要

ピールブロット法は、膜タンパク質の積層2次元結晶を単層に分離し、クライオEM 2Dおよび3Dデータ収集に適した薄いサンプルを取得し、画像処理を容易にするために開発されました¹。このプロトコルは、他のタイプの多層サンプルにも同様に適しており、Zの厚さを増やすことなく、グリッド上のいずれかのサンプルタイプの高濃度を達成するのにも適しています。

サンプル層を1層に減らすことは、毛細管圧とせん断力の組み合わせを、バックインジェクション法²に実質的に拡張して変更するプロトコルに適用することによって達成されます。最初のブロッティングステップでは、バックインジェクション法の20〜25μmのろ紙の孔径ではなく、サブミクロンでのブロッティング中に、多層サンプルの両側にあるカーボンフィルムとグリッドバーにしっかりと挟まれ、接着されます。個々の層の分離または剥離は、グリッドがトレハロースドロップに垂直に押し付けられ、炭素膜がグリッドバーから強制的に離れると、挟まれた層を強制的に分離したときに発生します(図1)。グリッドバーとの元の接触点から離れたカーボンフィルムの再配置は、グリッドがサブミクロン濾紙上で再び吸い取られる次のステップで発生します。これらのステップの反復回数は、特定のサンプルに対して最適化できます。さらに、このプロトコルは、Zでの凝集を回避しながらサンプル濃度を高めるために使用できます。 グリッドバーと炭素膜への付着、および強制的な分離に依存するため、このアプローチは、特定の繊細で不安定なタンパク質やタンパク質複合体などの非常に壊れやすい分子には適さない場合があります。

ピールブロット技術は、特殊な機器や高価な消耗品を必要としません。ただし、特定のサンプルに適用するには、生物学的パラメータを慎重に検討する必要があります。2D結晶では平坦性を確保するために炭素膜が必要であるため、決定は簡単ですが、ピールブロット法 による 操作は、サンプルの生物学的完全性または結晶秩序に影響を与える可能性があります。単一粒子に対するピールブロット技術の適合性は、炭素膜を必要とし、操作に対して安定なものに限定され、試験され得る。層間に重要な生物学的相互作用を有する標本は、そのような相互作用の破壊のために、ピールブロット技術の助けを借りての特性評価に適さない可能性があります。

ピールブロット法(「ピールブロット」)は、室温のTEMによる陰性染色または未染色サンプルでの試験およびスクリーニングによって最も迅速に最適化されます。ピールブロットの反復の最適な回数が特定されたら、ガラス化前の厚さを制御する時間を決定できます。

プロトコル

1. ピールブロット法の準備手順

注:準備には、次のアイテムを互いに隣接して配置する必要があります。

1. 20〜25μmの孔径ろ紙を2枚積み重ねます( 材料表を参照)。
2. ~8 cm x 10 cmの長さのパラフィンフィルムを、紙を上に向けてろ紙の隣に置きます。
3. サブミクロンのろ紙を、さらに2枚の#4ろ紙の上に置きます(図1-1)。
4. 曲がった脚を上に向けてまっすぐな脚を下に向けて、毛細血管防止鉗子を配置します。次に、滑らかな/光沢のある面を上にして600メッシュのグリッドを選択します。きれいなグリッドが他のアイテムと接触しないように、鉗子をペトリ皿または他の隆起した面に置きます。
5. パラフィンフィルムから紙を取り除き、側面(~5 mm)を引っ張って小さなリムを作成します。パラフィンフィルムの片方の短辺から~1-2 cm、パラフィンフィルム上に~1 cm離して、4%トレハロース溶液の150 μLを2滴滴ピペットでピペットします。
6. 別のベンチまたは床に、小さな発泡スチロール容器に液体窒素を注ぎます(材料の表を参照)。
   注意: 凍傷を避けるために、手袋とフェイスシールドを使用して適切な取り扱いのためのトレーニングを受けてください。
7. 小さなクライオEMグリッド容器を液体窒素に入れ、発泡スチロール容器を糸くずの出ないワイプで覆います。

2.カーボンフィルムをグリッドに配置する

1. デュモン#5鉗子( 材料の表を参照)を使用して、トレハロース溶液の滴の1つにマイカの片側をわずかに下向き(~20°-40°)で触れてマイカからカーボンフィルムを浮かせ、マイカを下方に動かして水圧をゆっくりとカーボンフィルムから持ち上げます。カーボン膜が液滴の表面に浮いたら、マイカを放出します。
2. カーボン膜を目視検査して、破壊の形で損傷のあるカーボンを使用しないようにします。
3. 毛細管防止鉗子によって角度(~20°-30°)で保持されているグリッドを、カーボンフィルムに隣接し、次にカーボンフィルムの下の中央にあるトレハロースドロップに挿入します。カーボン膜を拾います(図1-2)。
4. グリッドを同じ方向に保ち、ドロップの表面張力を壊さずにトレハロースの2番目のドロップの表面にゆっくりと下げて、グリッドの縁を粗い側に巻き付けた可能性のある不要なカーボンフィルムを取り除きます。

3. 多層2次元結晶の単層分離

1. 毛細管防止鉗子を回転させ( 材料の表を参照)、グリッドのカーボン側を下に向けてペトリ皿に置きます(図1-3)。
2. 1.3 μLのサンプルをグリッド上部のわずかなトレハロースメニスカスにピペットで入れます。溶液を~8〜10回ピペットでピペットで、トレハロースとサンプルをグリッドの両側に混合して分配します。
3. 溶液を1分間インキュベートしながら、1滴以上のトレハロース溶液をパラフィンフィルム上にピペットで移します。
4. グリッドを回転させて、カーボンフィルムを上に向けて元の位置に戻します。
5. 毛細管防止鉗子を使用して、グリッドをサブミクロンのろ紙に押し付けます(図1-4)。溶液がろ紙に吸収され、炭素膜が平らになったら、3秒間待ってからグリッドを持ち上げ、1.7 μLのトレハロース溶液滴上に垂直に移動します(図1-5)。
   注:高度に積み重ねられたサンプルに対してこの手順を複数回繰り返すか、次のステップでグリッドをガラス化の準備をします。
6. 2 枚のろ紙のグリッドを拭き取り、グリッドをろ紙から持ち上げます(図 1-6)。約13秒後、湿度とサンプルバッファーに応じて、グリッドを小さな発泡スチロール容器の液体窒素に突っ込み、グリッドをクライオEMグリッドコンテナに入れるか、クライオEMスクリーニングまたはデータ収集のために直接転送します。
   注意: プロトコルを迅速に最適化するには、液体窒素に突っ込むのではなく、このステップでピールブロットグリッドを負に染色します。3 μLの1%酢酸ウラニルをグリッドに適用してサンプルを陰性染色し、グリッドを30秒間インキュベートし、20〜25 μmの孔径ろ紙の破れた部分で拭き取ります。トレハロース、タンニン、またはグルコースでガラス化された2D結晶のグリッドは、トレハロース、タンニン、およびグルコースが手急落に使用される速度で結晶氷の形成を妨げるため、ガラス化のために定期的に手で急落されます²。

結果

ピールブロット実験が成功すると、多くの場合、高濃度のサンプルの単層が得られます。ほとんどのグリッド正方形の一部の領域には、特にピールブロットステップの反復回数が少ない場合、依然として複数の層が含まれることが予想されます。ただし、グリッドの正方形の大部分は、ヒトロイコトリエン_C4シンターゼ(図2)とリポソーム(ステップ3.2、

ディスカッション

ピールブロットは、クライオ電子顕微鏡データ収集と画像処理のための多層2D結晶および類似サンプルのスタッキングと厚さを克服するための強力な方法です。ピールブロットの使用に関する決定は、サンプルの生物学的パラメータに基づいて行われ、3DクライオEMモデルが利用可能になったら評価も必要になります。接触の生物学的重要性と接触領域の潜在的な柔軟性は、この評価で特に重?...

資料

Name	Company	Catalog Number	Comments
600-mesh grids	SPI	2060-C-XA
Anti-capillary forceps	Ted Pella	510-5
Carbon to coat mica
Cryo-EM			Cryo-EM grids may be screened at 120 kV or 200 kV.  High-resolution data is collected at 300 kV.
Dumpont #5 forceps	Ted Pella	5622
Grid box for cryo-EM storage	Ted Pella	160-40
Kim Wipes
Liquid nitrogen
Mica	Ted Pella	56	The mica is carbon-coated and cut into squares that are slighlty larger than a TEM grid.  The carbon thickness may require optimization to avoid thin carbon that breaks easily upon multiple peel blots.
Negative stain			1-2% uranyl acetate is suitable for many samples.  Other stains such as phosphotungstic acid can be substituted.
Parafilm
Polystyrene container			Used for vitrifying the peel-blot grid. A polystyrene shipping container can be recycled for this purpose and lined with aluminium foil.
Submicron filter paper	MilliporeSigma	DAWP04700
Transmission electron microscope	JEOL	JEM-1400	Any TEM operated at an accelerating voltage of 80-120 kV will be suitable for screening of negatively stained grids.
Trehalose			Prepare 4% trehalose solution.
Whatman #4 filter paper	MilliporeSigma	WHA1004150	This corresponds to the 20-25 μm pore size filter paper in the protocol.