このコンテンツを視聴するには、JoVE 購読が必要です。 サインイン又は無料トライアルを申し込む。

この記事について

  • 要約
  • 要約
  • 概要
  • プロトコル
  • 結果
  • ディスカッション
  • 開示事項
  • 謝辞
  • 資料
  • 参考文献
  • 転載および許可

要約

このプロトコルは、脛骨神経の病変を伴う脛骨神経の転位モデルを説明し、その後、近位神経終端を皮下脛骨前位または側方位に転位させます。神経腫の痛みと足底痛覚過敏の行動検査は、Von Freyモノフィラメントを使用して定量化されます。

要約

脛骨神経腫転位(TNT)は、神経腫部位(脛骨神経)の異痛症を、無傷の腓腹神経によって神経支配された後足の足底表面の異痛症から独立して評価できるラットモデルです。このTNTモデルは、すでにクリニックで使用されている特定の外科的治療法の潜在的な優位性など、神経腫の痛みの治療法をテストしたり、同じ動物の両方の疼痛モダリティに対する新薬とその効果を評価したりするのに適しています。このモデルでは、脛骨神経に遠位病変(神経弦楽部)を作り、近位神経終末を転置して皮下および脛骨前部に固定し、15 gのフォンフレイモノフィラメントで神経腫部位の評価を可能にします。腓腹神経上の異痛症を評価するために、Von Freyモノフィラメントは、後足の足底外側領域にアップダウン法 を介して 使用することができる。脛骨神経を切断した後、機械的過敏症は手術後1週間以内に神経腫部位に発症し、少なくとも手術後12週間まで持続します。腓腹神経支配足底表面の異痛症は、対側肢と比較して手術後3週間以内に発症します。12週間で、切断された脛骨神経の近位端にニューロン腫が形成され、軸索の分散と渦巻きによって示されます。TNTモデル手術では、複数の重要な(マイクロ)外科的手順に従う必要があり、終末麻酔下での手術が推奨されます。温存神経損傷モデルなどの他の神経因性疼痛モデルと比較して、神経腫部位上の異痛症は、TNTモデルにおける腓腹神経過敏症から独立して試験することができる。しかしながら、神経腫部位はラットにおいてのみ試験することができ、マウスにおいて試験することができない。このプロトコルで提供されるヒントと指示は、痛みに取り組んでいる研究グループが施設でTNTモデルを正常に実装するのに役立ちます。

概要

単純な裂傷から四肢全体の切断まで、すべての創傷にはさまざまな程度の末梢神経損傷が伴います。このような神経損傷は、神経腫の形成、発芽神経線維の無秩序な絡み合いをもたらす可能性があります。神経腫は患者の8%〜30%で痛みを伴い、生活の質に深刻な影響を及ぼします1,2,3,4,5。四肢切断後、神経腫の痛みは患者の50%に発症します6,7,8報告されている症状には、圧痛、自発痛、異痛症、痛覚過敏、および神経支配領域の機械的または熱的過敏症が含まれます9。1年以内に適切に治療されない場合、神経腫の痛みは慢性的な痛みの状態に進行し、高い社会的負担とそれに関連する医療費をもたらす可能性があります10、11、121314現在の薬理学的介入の有効性が低いため、神経腫疼痛は、好ましくは、文献15に記載されているように、痛みを伴う神経腫の外科的除去によって治療され、および様々な外科的技術によって治療される神経である。完全な痛みの緩和はまれであり、痛みは時間の経過とともに悪化することが多く、患者の40%は手術の恩恵を受けておらず、新しい治療法が必要であることを示していることに注意することが重要です1,16

神経腫疼痛の標準化されたラットモデルは、神経腫疼痛を引き起こすメカニズムを理解するのに役立ち、新しい治療法を特定したり、クリニックで使用されている既存の治療法を評価したりするのに役立つ可能性があります。脛骨神経腫転位(TNT)モデルは、2008年にDorsiらによって最初に記述され17、さまざまな研究グループによって使用されています181920。この方法の全体的な目標は、神経腫の痛みに対するさまざまな治療技術をテストできるようにすることです。モデル上の、例えば、温存神経損傷(SNI)モデル21に対するモデルの利点は、神経腫部位における異痛症を試験することを可能にすることである。これは、モデルが脛骨神経の近位神経終末を皮下脛骨前位に転置することを含み、そこでフォン・フレイモノフィラメントでプローブできるためです。さらに、異痛症は、無傷の腓腹神経によって神経支配された後足の足底表面に発生し、これは同じ動物の神経腫の痛みとは独立して評価することができる。これは、患者の神経腫疼痛の症状に類似しており、疼痛性神経腫の除去後の持続性神経因性疼痛は、隣接する神経によって引き起こされることがある22。さらに、神経腫を伴う切断された神経上の異痛症は、無傷の隣接神経上の異痛症とは異なる疼痛様式である。したがって、このモデルは、神経腫部位に存在する異痛症と後足の足底表面でテストされたより広範な神経因性疼痛の両方に対する新しい治療法の効果の評価を容易にします。TNTモデルを作成するために行われる手術は困難な場合があるため、この論文では、研究者が施設にモデルを実装するのをサポートする手順について詳しく説明します。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

プロトコル

この研究は、IVD(Instantie voor Dierenwelzijn Utrecht)および動物研究ガイドライン(プロジェクト番号AVD1150020198824)に従って実施されました。

1. フォン・フレイのベースライン測定

  1. 手術の前に、以下のセクション5およびセクション6で説明するVon Freyテスト手順に従ってベースライン測定を実行します。

2.麻酔と準備

注:この研究は、12週齢の15匹のオスのSprague Dawleyラットで実施されました。

  1. 5%イソフルランによる誘導によって動物を麻酔し、2%〜3%イソフルランで麻酔を維持する。
    注:2%イソフルランによるメンテナンスは、通常、気管挿管や機械的換気を必要とせずに、十分な麻酔と自発呼吸をもたらします。
  2. ピンセットで足をつまんで動物の反射神経を確認します。先に進む前に、動物が反応しないようにしてください。電気シェーバーで膝から足首にかけて術野を剃り、眼軟膏を目に当てて乾燥を防ぎます。腹部に0.5 mg / kgの鎮痛カルプロフェンを皮下注射します。.
  3. 麻酔をかけたラットを背中に置き、頭を左または右に向け、手術する脚を外科医の近くに置きます。内側くるぶしが上を向くるように下肢を外旋します。ラットを6倍の倍率の実体手術顕微鏡の下に置きます。
  4. 剃った部分をヨウ素ベースのスクラブを3回交互に行い、続いてアルコールで消毒します。脚の上に手術穴のある滅菌シートを置き、手術野だけが見えるようにします。手術中はこれらの無菌状態を維持するようにしてください。

3.手術

  1. 手術野を水平に保つために、足首の下に小さな綿棒を置きます。膝の位置を確認し、ふくらはぎの中央から足首まで後足の内側にメスを使用して1〜2 cmの縦方向の切開をそっと行います。必要に応じて、筋肉層が見えるまでマイクロハサミで皮膚と皮下をさらに開きます。
  2. 表在性神経血管束を、筋肉層上を自由に移動できる2つまたは3つの白と太い紫/赤の線(時には小さな枝がある)として識別します。電気焼灼( 材料の表を参照)を使用して、手術野での活発な出血またはにじみを凝固させます。神経血管束を傷つけないように注意してください。
  3. 鈍く解剖して、3.2の表在性神経血管束のすぐ後ろにある腓腹筋の間の筋膜を開きます。筋肉の筋膜の間に、脛骨神経があります。脛骨神経は、神経血管束の表在神経の約3倍の大きさです。脛骨を追加の目印として使用します(脛骨神経は脛骨のすぐ後にあります)。
  4. 脛骨神経とその分岐部を特定します。
    注:分岐部は通常、神経の上に縦方向に明るい線で見えます。
  5. 周囲の血管束から脛骨神経を慎重に解剖します。脛骨神経を鈍く動かし、脛骨神経を動かしながら伸びを示す露出組織を切断して解剖を行います。
    注:解剖後に脛骨神経が交差静脈に付着している場合、これらの静脈は脛骨神経全体を露出させるために凝固することができます。脛骨束自体を凝固させないように注意してください。
  6. 脛骨神経が交差する筋肉層の下に消えるまで、脛骨神経を近位に露出させます。この時点で、脛骨神経は膝に向かって後足に深く潜っているようです。脛骨神経を足首まで遠位に露出させます。
    注:脛骨神経がより遠位に露出すると、交差するコラーゲン線維(すなわち、神経線維の方向に垂直な線維)の量が増加します。これらのコラーゲン繊維は、脛骨神経を転置するのに十分な長さを可能にするために切断する必要があります。
    1. 脛骨神経全体が露出したら、神経の脱水を避けるために筋肉層を元に戻します。神経が脱水し(つまり、神経がより硬くなり、くすみ、しわになり)、筋肉層で覆うだけでは不十分な場合は、生理食塩水を滴下して水分補給します。
  7. 鈍い顕微手術ツール、好ましくはマイクロニードルホルダーを使用して、皮下トンネルを作るために皮下筋層から脛骨前皮膚を解剖する。これを行うには、皮膚を持ち上げ、鈍い先端を皮膚と平行に組織に押し込みます。トンネルの端が脛骨前または横方向に配置されていることを確認して、神経腫の検査のためにその領域に簡単にアクセスできるようにします。
  8. イソフルランを5%に増やします。脛骨神経に戻り、露出させます(つまり、手順3.6で説明した場所に戻ります)。脛骨神経(すなわち、両方の足底枝)を足首近くの最も遠位レベルで切断する。イソフルランを2%〜3%の正常レベルに減らします。
  9. 顕微鏡の倍率を10倍または16倍に変更します。ステップ3.8で行った切り傷の近位にある脛骨神経の神経外神経を特定するか、脛骨神経のより近位分岐の場合は、ステップ3.8で切り傷の近位にある内側足底枝と外側足底枝の両方の上神経を確認します。
    注:上神経は、より黄色で柔らかい神経線維と比較して、より白くてしっかりしています。
  10. 慎重に8-0を配置しますピンセットで上神経を慎重に保持し、約0.5mmの咬傷で神経と上神経の間に針を置くことにより、近位神経端のエピニューリウムを通してナイロン縫合糸( 材料表を参照)。縫合糸を引っ張り、ステップ3.7で作った皮下トンネルの端で針を皮下に噛みます。神経を横方向に皮下トンネルに移す結び目を作ります。
    注:両方の足底枝が共通の上神経を共有している場合は、1つの縫合糸で十分です。両方の足底枝に独自の上神経外神経がある場合は、各上神経を個々に固定する必要があります。縫合糸を皮膚に通すことは避けてください。皮下に固定するだけです。
  11. 皮膚を貫通しないように、固定された神経端と同じ高さに暗い色のより厚い縫合糸(好ましくは青または黒の4-0縫合糸)を置きます。縫合糸が皮膚の外側から見えることを確認してください。足と筋肉を動かした後も神経が所定の位置に留まるかどうかを確認します。縫合糸の端を8-0よりも4-0でわずかに長い縫合糸の端で切り取ります縫合。
  12. 顕微鏡の倍率を6倍に戻します。8-0を使用して表皮内縫合糸で皮膚を閉じます綿棒を使用して、0.9%NaClで皮膚を縫合し、やさしく洗浄します。

4.術後治療

  1. ラットをペーパータオルの下の清潔なケージに快適な位置に置きます。部屋が寒い場合は、ケージの一部の下にヒートパッドを置きます(動物は必要に応じて熱を逃がすことができるはずなので、ケージの一部の下にのみ)。食料と水への容易なアクセスを確保します。
  2. 術後のラットは、胸骨横臥を維持するのに十分な意識を取り戻すまで放置しないでください。.ラットは、手術後に麻酔から完全に回復したときに他の動物の会社に戻すことができます。これは通常、1時間後、ラットが通常の歩行パターンと行動を示すときです。
  3. 手術後24時間および48時間に、術後の痛みを治療するために、0.5 mg / kgのカルプロフェンを皮下(腹部領域)に投与します。.

5.後足の足底側のフォンフレイテスト

注:Von Freyテスト(ステップ5および6)は、手術前(ベースライン測定用)、および手術後3日から実行されます。

  1. ベースライン測定の1週間前、または手術の2週間前にラットをメッシュワイヤーボトムケージに入れて、テスト環境への順応を確認します。
  2. 手術の少なくとも1週間前にベースライン測定から始めます。3つの独立したベースライン測定が別々の日に実行されていることを確認してください。
  3. ラットがメッシュで配線されたボトムケージで落ち着いていることを確認します。後足の足底面に垂直な対数スケールを持つ一連のVon Freyモノフィラメントを適用します。
    1. 腓腹神経(過敏症)を刺激するために、毛髪の境界に近い外側にモノフィラメントを適用します。フットパッドはより敏感であるため、触れないでください。
    2. 脛骨神経を刺激する(低感受性)には、後足の足底面の中央にモノフィラメントを適用します。モノフィラメントを最も内側の領域に適用すると、大腿神経の枝である伏在神経も刺激される可能性があります(図1)。フットパッドには触れないでください。
  4. 4 gのモノフィラメントから始めます。髪が曲がるようにモノフィラメントに十分な力を加えて3秒間保持し、モノフィラメント上の動物の反応を確認します。肯定的な反応は、突然の足の撤退、突然のひるみ、突然の足の舐め、または発声です。場合によっては、ラットが移動し、モノフィラメントを見つけたり攻撃したりしようとします。
  5. アップダウン法23を介した刺激に対する応答に応じて次のモノフィラメントを選択する。たとえば、ラットが反応した場合は、次に2 gのモノフィラメントで刺激します。ラットが反応しない場合は、6 gのモノフィラメントなどで刺激します。合計で、反応に応じて5〜10個の刺激を適用します。

6.神経腫部位のフォンフレイ検査

  1. ベースライン測定の5〜7日前または手術の2週間前に、動物を毎日取り扱ってください。動物が手順6.2の説明に従って保持されていることを確認し、位置に慣れていることを確認します。
  2. 鼻を肘のひだに向けてラットを持ちます。ラットが右手に保持されている場合、左の後足は右親指と人差し指(最初のウェブスペース)の間に自由にぶら下がっている必要があります。ラットが左手に保持されている場合、右の後足は左の親指と人差し指の間に自由にぶら下がっている必要があります。
  3. 手術の少なくとも1週間前にベースライン測定から始めます。3つの独立したベースライン測定が別々の日に実行されていることを確認してください。
  4. 抱きしめられている間、ラットが落ち着いていて快適であることを確認します。ベースラインで、15 gのモノフィラメントを露出した後足の脛骨前面にそっと置きます。手術後、15 gのモノフィラメントを目に見える縫合糸の上に置きます(例:.、神経腫の位置)。髪が曲がるようにモノフィラメントに十分な力を加え、1秒間保持します。
    1. 各刺激に対する反応を記録します。反応の選択肢には、反応なし、遅い離脱、迅速な離脱、および発声が含まれます。応答を、反応がない場合は0ポイント、遅い離脱、迅速な離脱、または発声の場合は1ポイントとして記録します。
  5. モノフィラメントの5つのアプリケーションのうち5つのクラスターを、各アプリケーション間で2〜3秒、5つのクラスター間で2〜3分以上繰り返します。合計で、各後足は記録された応答でモノフィラメントの25の適用を持つべきです。

7.組織学と準備のための標本回収

注:組織学的検査は最初の手術の12週間後に行われます。

  1. 麻酔を誘発し、ステップ2.2、2.3、および2.4で説明されているように動物を準備します。
  2. 最初の手術でできた傷跡をメスで2〜3cmの切開をやさしく行いますが、神経は表面的に置かれるため、深く切りすぎないように注意してください。
  3. 神経腫の位置を決定し、周囲の瘢痕組織から神経腫と神経を慎重に解剖し、採取した神経腫を固定液に入れます。神経腫の形態を評価するために、組織は、Torkらによって記載されているように、パラフィンまたはエポキシ樹脂中に縦方向に埋め込まれることが好ましい18
  4. 組織を採取した後、心臓穿刺または断頭 を介して 終末麻酔(5%イソフルラン)下でラットを安楽死させます。.
    注:ラットを殺す前にまず神経腫を収穫することをお勧めします, インビボで神経腫を周囲の組織と区別する方が簡単だからです.

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

結果

神経腫部位での評価は、15 g von Freyモノフィラメントの適用に対する感受性の増加を示しました。ベースラインでは、ラットは通常、15 gのモノフィラメントの25回の塗布のうち10%〜15%(±13%)に反応しました。奏効率はTNT手術後1週間で45%-50%(±24%)に上昇した。反対側では、手術後の反応数はベースライン時と同様でした(図2A)。ラットの約20%は痛みを伴う神経腫を発症しませ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

ディスカッション

プロトコルの重要なステップ
TNTモデルでは、脛骨神経を切断し、脛骨前部に横方向および皮下に転置して、腓腹神経の足底痛覚過敏に加えて、神経腫の感度テストを可能にします。TNTモデルでは、神経腫の場所が研究者に見えることが重要です。したがって、皮下縫合糸が皮膚を通して容易に見え、縫合糸の色が好ましくは濃い青または黒であるべきであるので、アルビノラ?...

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

開示事項

著者らは、利益相反はないと報告している。この研究活動の一部はAxogenによって資金提供されましたが、同社は研究の実施と結果に影響を与えませんでした。

謝辞

顕微手術中に支援してくださったSabine Versteegさんと、顕微鏡と手術室の準備と動物の世話をしてくれたCommon Animal Laboratory(Gemeenschappelijk Dieren Laboratorium)のAnja van der Sar氏とTrudy Oosterveld-Romijn氏に感謝します。

この研究はAxogenによって資金提供されました。

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

資料

NameCompanyCatalog NumberComments
AesthesioLinton Instrumentation514007 until 5140150.6 g until 15 g monofilaments
CarprofenLocal Veterinary Pharmacyn/aThe local veterinary pharmacy makes caprofen dilution
Cotton swabsNobamed974255
ElectrocauteryFine Science Tools18010-00
Ethanol 70%Interchema BV400406
Ethilon 4.0Johnson & Johnson1854GIMPORTANT: the color should be blue or black
Ethilon 8.0Johnson & JohnsonBV130-5
Isoflo, isoflurane ZoetisDechra Veterinary ProductsB506
Mesh bottom cagesStoeltingCo57816 and 57824
Micro forcepsFine Science Tools11251-35
Micro needle holder Fine Science Tools12076-12
Micro scissorsFine Science Tools15019-10
Micro tweezersFine Science Tools11254-20
NaCl 0.9%TrademedH7 1000-FRE
Needle holderFine Science Tools12004-16
Ophthalmic ointment Local Veterinary Pharmacyn/aThe local veterinary pharmacy makes the ophthalmic ointment
ScalpelFine Science Tools10003-12
ScissorsFine Science Tools14001-12
Stereo surgical microscopeLeicaA60 F
Sterile sheet with holeEvercare OneMed1555-01
Surgical blade nr.15Fine Science Tools10015-00
TweezersFine Science Tools11617-12

参考文献

  1. Stokvis, A., vander Avoort, D. J., van Neck, J. W., Hovius, S. E., Coert, J. H. Surgical management of neuroma pain: a prospective follow-up study. Pain. 151 (3), 862-869 (2010).
  2. Domeshek, L. F., et al. Surgical treatment of neuromas improves patient-reported pain, depression, and quality of life. Plastic and Reconstructive Surgery. 139 (2), 407-418 (2017).
  3. Lame, I. E., Peters, M. L., Vlaeyen, J. W., Kleef, M., Patijn, J. Quality of life in chronic pain is more associated with beliefs about pain, than with pain intensity. European Journal of Pain. 9 (1), 15-24 (2005).
  4. Koch, H., Haas, F., Hubmer, M., Rappl, T., Scharnagl, E. Treatment of painful neuroma by resection and nerve stump transplantation into a vein. Annals of Plastic Surgery. 51 (1), 45-50 (2003).
  5. Fisher, G. T., Boswick, J. A. Neuroma formation following digital amputations. Journal of Trauma. 23 (2), 136-142 (1983).
  6. Bowen, J. B., Ruter, D., Wee, C., West, J., Valerio, I. L. Targeted muscle reinnervation technique in below-knee amputation. Plastic and Reconstructive Surgery. 143 (1), 309-312 (2019).
  7. Jensen, T. S., Krebs, B., Nielsen, J., Rasmussen, P. Phantom limb, phantom pain and stump pain in amputees during the first 6 months following limb amputation. Pain. 17 (3), 243-256 (1983).
  8. Woo, S. L., et al. Regenerative peripheral nerve interfaces for the treatment of postamputation neuroma pain: a pilot study. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 4 (12), 1038(2016).
  9. Arnold, D. M. J., et al. Diagnostic criteria for symptomatic neuroma. Annals of Plastic Surgery. 82 (4), 420-427 (2019).
  10. Liedgens, H., Obradovic, M., De Courcy, J., Holbrook, T., Jakubanis, R. A burden of illness study for neuropathic pain in Europe. Clinicoeconomics and Outcomes Research. 8, 113-126 (2016).
  11. Langley, P. C., Van Litsenburg, C., Cappelleri, J. C., Carroll, D. The burden associated with neuropathic pain in Western Europe. Journal of Medical Economics. 16 (1), 85-95 (2013).
  12. Dworkin, R. H., et al. Interpreting the clinical importance of group differences in chronic pain clinical trials: IMMPACT recommendations. Pain. 146 (3), 238-244 (2009).
  13. Mackinnon, S. E., Dellon, A. L. Results of treatment of recurrent dorsoradial wrist neuromas. Annals of Plastic Surgery. 19 (1), 54-61 (1987).
  14. Harden, R. N. Chronic neuropathic pain. Mechanisms, diagnosis, and treatment. Neurologist. 11 (2), 111-122 (2005).
  15. Poppler, L. H., et al. Surgical interventions for the treatment of painful neuroma: a comparative meta-analysis. Pain. 159 (2), 214-223 (2018).
  16. Eberlin, K. R., Ducic, I. Surgical algorithm for neuroma management: a changing treatment paradigm. Plastic and Reconstructive Surgery Global Open. 6 (10), 1952(2018).
  17. Dorsi, M. J., et al. The tibial neuroma transposition (TNT) model of neuroma pain and hyperalgesia. Pain. 134 (3), 320-334 (2008).
  18. Tork, S., et al. Application of a porcine small intestine submucosa nerve cap for prevention of neuromas and associated pain. Tissue Engineering Part A. 26 (9-10), 503-511 (2020).
  19. Miyazaki, R., Yamamoto, T. The efficacy of morphine, pregabalin, gabapentin, and duloxetine on mechanical allodynia is different from that on neuroma pain in the rat neuropathic pain model. Anesthesia and Analgesia. 115 (1), 182-188 (2012).
  20. Tian, J., et al. Swimming training reduces neuroma pain by regulating neurotrophins. Medicine and Science in Sports Exercise. 50 (1), 54-61 (2018).
  21. Decosterd, I., Woolf, C. J. Spared nerve injury: an animal model of persistent peripheral neuropathic pain. Pain. 87 (2), 149-158 (2000).
  22. Poublon, A. R., et al. The anatomical relationship of the superficial radial nerve and the lateral antebrachial cutaneous nerve: A possible factor in persistent neuropathic pain. Journal of Plastic, Reconstructive and Aesthetic Surgery. 68 (2), 237-242 (2015).
  23. Dixon, W. J. Efficient analysis of experimental observations. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. 20 (1), 441-462 (1980).
  24. Austin, P. J., Wu, A., Moalem-Taylor, G. Chronic constriction of the sciatic nerve and pain hypersensitivity testing in rats. Journal of Visualized Experiments. (61), e3393(2012).

Access restricted. Please log in or start a trial to view this content.

転載および許可

このJoVE論文のテキスト又は図を再利用するための許可を申請します

許可を申請

さらに記事を探す

191

This article has been published

Video Coming Soon