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このプロトコルは生体 外で 組み立てられ、electroporationによって渡されるCas9-sgRNAのribonucleoproteinの複合体を使用してマウス骨髄得られたマクロファージのゲノム編集のためのプロシージャを記述する。
マウス由来の骨髄由来マクロファージ(BMDM)は、組織マクロファージの複雑な生物学を研究するための重要なツールです。初代細胞として、不死化マクロファージ細胞株よりもin vivo でのマクロファージの生理機能を忠実にモデル化し、すでに定義された遺伝的変化を持つマウスに由来することができます。しかし、BMDMの遺伝子機能を破壊することは、依然として技術的に困難である。ここでは、遺伝子機能を破壊するフレームシフト変異をもたらす小さな挿入および欠失(インデル)の導入を可能にする、BMDMにおける効率的なCRISPR/Cas9ゲノム編集のプロトコルを提供します。プロトコルは単一ガイドRNA (sgRNA-Cas9)を総合し、electroporationによって渡すことができる浄化されたsgRNA-Cas9のribonucleoproteinの複合体(RNPs)を形作る方法を記述する。また、ルーチンのサンガーシーケンシングと無料で入手できるオンライン分析プログラムを使用して、編集効率を監視するための効率的な方法も提供します。プロトコルは1週間以内に実施でき、プラスミド構築は必要ありません。通常、85%から95%の編集効率が得られます。
マクロファージは、組織の修復と免疫に重要な役割を果たす自然免疫細胞です1,2。マウスRAW 264.7細胞やヒトTHP-1細胞などの不死化マクロファージ細胞株は、RNA干渉またはCRISPR/Cas9 3,4用のベクターを送達することによる、堅牢な増殖や遺伝子破壊の容易さなど、いくつかの有益な特性を持っています。しかし、発がん性形質転換はそれらの生理機能を劇的に変化させ、その結果、いくつかの経路の異常な活性化と他の経路の応答の抑制が生じます5,6。初代骨髄由来マクロファージ(BMDM)は、in vivoマクロファージの生理機能をより厳密に再現しているが、これらの初代免疫細胞におけるプラスミドトランスフェクションとウイルス形質導入の両方の効率が低いため、遺伝子操作は依然として困難である7,8。したがって、遺伝子機能を破壊するためのより効率的な方法が必要です。
CRISPR/Cas....
1. sgRNAの設計
注:このステップでは、標的配列の選択とsgRNAの設計について説明します。最初の大きなコードエクソンにあるガイドを設計することは、翻訳されたタンパク質がオープンリーディングフレームの早い段階で破壊されるようにするのに役立ちます。また、同じエクソン内にあるターゲット配列を選択することで、編集効率の解析が効率化されます(ステップ6)。このプロトコルで提供されるゲノム編集の例では、 Src 遺伝子と Cblb遺伝子 の最初のエクソン、およびマウスゲノムの非コード Rosa26 遺伝子座を標的とするsgRNAを使用しました。
IVT テンプレートは 127 bp の PCR 産物です(図 1B)。完全長IVT産物は98 nt RNAで、70 bpの二本鎖DNA断片と同様に遊走します(図1C)。
エレクトロポレーション後、細胞は>90%生存可能であり、総細胞数は開始細胞数の>70%である必要があります。結果として生じる変異細胞のプールは、Cas9切断部位の近くから始まる多様なインデルのセット?.......
エレクトロポレーションCas9-sgRNA複合体を用いたゲノム編集は、BMDMの遺伝子機能を効果的に破壊することを可能にします。編集効率は、標的配列や遺伝子によって異なります。典型的には、4〜5個のsgRNAをスクリーニングして、活性の高いものを同定する。一部の遺伝子座は編集効率が低く、おそらくクロマチン構造が原因です。このような場合は、編集効率を高めるためにいくつかの変更を?.......
著者は何も開示していません。
この研究は、NIHの助成金5R01AI144149によって資金提供されました。回路図はBioRenderで作成しました。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
3T3-MCSF Cell Line | Gift from Russell Vance | not applicable | |
Alt-R Cas9 Electroporation Enhancer | IDT | 1075915 | |
Ampure XP Reagent Beads | Beckman Coulter | A63880 | |
Calf intestinal alkaline phosphatase | NEB | M0525S | |
DNase | NEB | M0303S | |
DPBS +Ca/Mg (0.9mM CaCl2 and 0.5mM MgCl2) | Thermo Fisher | 14040-133 | |
DPBS -Ca/Mg | Thermo Fisher | 14190-144 | |
ExoI | NEB | M0293S | |
Fetal Calf Serum (FCS) | Corning | 35-015-CV | |
Herculase DNA polymerase & buffer | Agilent | 600677 | |
HiScribe T7 High Yield RNA Synthesis Kit | NEB | E2040S | |
LoBind conical tubes 15 mL | Eppendorf | 30122216 | |
LoBind Eppendorf tubes 2 mL | Eppendorf | 22431102 | |
NEBuffer r2.1 | NEB | B6002S | |
Neon Transfection System | Thermo Fisher | MPK5000, MPP100, MPS100 | |
Neon Transfection System 10 uL Tips | Thermo Fisher | MPK1025 or MPK1096 | |
PBS + 1mM EDTA | Lonza | BE02017F | |
Proteinase K | Thermo Fisher | EO0491 | |
rCutSmart Buffer for ExoI | NEB | B6004S | |
Ribolock | Thermo Fisher | EO0384 | |
RNA loading dye | NEB | B0363S | |
RNeasy Mini Kit | Qiagen | 74104 | |
S. pyogenes Cas9-NLS | University of California Macro Lab | not applicable | Available to non-UC investigators through https://qb3.berkeley.edu |
S. pyogenes Cas9-NLS, modified 3rd Generation | IDT | 1081059 | |
SAP | NEB | M0371S |
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