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このプロトコルは、無傷の ショウジョウバエ の幼虫の個々のニューロンのレーザー細胞アブレーションを示しています。この方法により、発達中の神経系におけるニューロン間の競争を減らす効果の研究が可能になります。
このプロトコルは、無傷の ショウジョウバエ メラノガスター 幼虫の中枢神経系 (CNS) における 2 光子レーザー システムによる単一ニューロン アブレーションについて説明しています。この非侵襲的な方法を用いて、発生中の神経系を細胞特異的に操作することができる。ネットワーク内の個々のニューロンの発達を阻害することで、神経系がシナプス入力の喪失をどのように補うことができるかを研究することができます。 ショウジョウバエの巨大線維系では、シナプス前巨線維(GF)とシナプス後大転子運動ニューロン(TTMn)の2つのニューロンに焦点を当てて、個々のニューロンが特異的にアブレーションされました。GFは同側のTTMnとシナプスを形成し、これはエスケープ応答に重要です。GFが軸索成長を開始した直後に、第3インスター 脳のGFの1つを切除すると、CNSの発達中に細胞が永久に除去されます。残りのGFは不在の隣人に反応し、反対側のTTMnに対して異所性シナプス終末を形成します。この非定型の両側対称末端は、色素結合によって実証されるように両方のTTMnsを神経支配し、電気生理学的アッセイによって実証されるように両方の運動ニューロンを駆動します。要約すると、単一の介在ニューロンのアブレーションは、片側のニューロンの喪失を補い、エスケープ回路に対する正常な応答を回復できる両側のニューロンのペア間のシナプス競争を示しています。
レーザーアブレーションは、さまざまな生物の神経回路を解剖するための好ましいツールです。ミミズやハエなどのモデル遺伝システムで開発され、神経系の構造、機能、および発達を研究するために動物界全体に適用されています1,2,3。ここでは、ショウジョウバエの回路組み立て中にニューロンがどのように相互作用するかを調べるために、単一ニューロンアブレーションが使用されました。ハエの脱出システムは、成虫のハエで最大のニューロンと最大のシナプスを含んでおり、その回路は過去数十年で十分に特徴付けられてきたため、分析のお気に入りの回路です4。ジャイアントファイバー回路の組み立てにおいてニューロン間相互作用が果たす役割は、この研究の焦点です。
1960年代のヒューベルとヴィーゼルの研究以来、神経科学で焦点となってきた相互作用の1つのタイプは、「シナプス競争」5,6です。このプロトコルでは、レーザーアブレーションを使用して、ショウジョウバエの巨大繊維系(GFS)における単一細胞アブレーションによる競争の役割を再検討し、現....
議定書に使用されたすべての動物は、 ショウジョウバエ・メラノガスターの種でした。本種の使用にまつわる倫理的な問題はありません。この作業を実行するために倫理的なクリアランスは必要ありませんでした。本研究で使用した ショウジョウバエ の種、試薬、機器の詳細は、 資料表に記載されています。
1. ショウジョウバエ の繁殖と正しい幼虫期の選択
この方法は、 ショウジョウバエの神経系における特定のニューロンネットワークの発達を操作するために使用できます。ここでの主な研究課題は、シナプス結合の形成でした。シナプス前GFまたはシナプス後TTMnのいずれかを取り除くことで、この中央シナプスでの反応性シナプス形成と、シナプスの機能と発達に重要な分子メカニズムの研究が可能になりました。プロトコルに記載さ.......
2光子顕微鏡による細胞アブレーションは、 ショウジョウバエの神経回路発達を操作するための非常に成功した方法であることが証明されました。この方法は非侵襲的であるため、動物へのダメージは最小限に抑えられます。このデータは、既知の回路のこの細胞特異的な操作の有用性を裏付けています。
アブレーションを成功させるために重要だったのは、最も.......
著者は何も開示していません。
2光子顕微鏡での実験は、FAU Stiles-Nicholson Brain Institute Advanced Cell Imaging Coreで行われました。ジュピターライフサイエンス・イニシアティブの皆様には、多大なるご支援をいただき、誠にありがとうございます。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Alexa Fluor 488 AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) | Jaxkson ImmunoResearch | 111-545-003 | |
Anti-green fluorescent protein, rabbit | Fisher Scientific | A11122 | 1:500 concentration |
Apo LWD 25x/1.10W Objective | Nikon | MRD77220 | water immersion long working distance |
Bovine Serum Albumin (BSA) | Sigma | B4287-25G | |
Chameleon Ti:Sapphire Vision II Laser | Coherent | ||
Cotton Ball | Genesee Scientific | 51-101 | |
Dextra, Tetramethylrhodamine, 10,000 MW, Lysine Fixable (fluoro-Ruby) | Fisher Scientific | D1817 | |
Drosophila saline | recipe from Gu and O'Dowd, 2006 | ||
Ethyl Ether | Fisher Scientific | E134-1 | Danger, Flammable liquid |
Fly food B (Bloomington recipe) | LabExpress | 7001-NV | |
Methyl salicylate | Fisher Scientific | O3695-500 | |
Microcentrifuge tube 1.5 mL | Eppendorf | 22363204 | |
Microscope cover-slip 18x18 #1.5 | Fisher Scientific | 12-541A | |
Neurobiotin Tracer | Vector Laboratories | SP-1120 | |
Nikon A1R multi-photon microscope | Nikon | on an upright FN1 microsope stand | |
NIS Elements Advanced Research | Nikon | Acquisition and data analysis software | |
Paraformaldehyde (PFA) | Fisher Scientific | T353-500 | |
PBS (Phosphate Buffered Salin) | Fisher BioReagents | BP2944-100 | Tablets |
R91H05-Gal4 | Bloomington Drosophila Stock Center | 40594 | |
shakB(lethal)-GAl4 | Bloomington Drosophila Stock Center | 51633 | |
Superfrost microscope glass slide | Fisher Scientific | 12-550-143 | |
Triton X-100 | Fisher Scientific | 422355000 | detergent solution |
UAS-10xGFP | Bloomington Drosophila Stock Center | 32185 |
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