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ここでは、エレクトロポレーションによるスライスされたヒト皮質オルガノイドの急性遺伝子操作について紹介します。これらの皮質オルガノイドモデルは、スライス後に心室のような構造を容易に特定できるため、特に注射に適しており、ヒトの皮質発達、神経発達障害、および皮質進化の機能的研究を可能にします。
ヒト皮質オルガノイドは、ヒトの脳の発達、神経発達障害、およびヒトの脳の進化を研究するための重要なツールとなっています。過剰発現またはノックアウトによる遺伝子機能の解析は、新皮質発生の調節に関するメカニズムの洞察を提供する動物モデルに役立っています。ここでは、スライスしたヒト皮質オルガノイドのエレクトロポレーションによるCRISPR/Cas9を介した急性遺伝子ノックアウトの詳細なプロトコールを紹介します。皮質オルガノイドのスライスは、注射およびその後のエレクトロポレーションのための心室様構造の同定に役立ち、これをヒト皮質発生中の急性遺伝子操作に特に適したモデルにします。ガイドRNAの設計と、 in vitro および皮質オルガノイドにおけるターゲティング効率の検証について説明します。皮質オルガノイドのエレクトロポレーションは、神経原性中期に行われ、頂端橈骨グリア、基底前駆細胞、ニューロンなど、発生中の新皮質のほとんどの主要な細胞クラスを標的化することができます。まとめると、スライスしたヒト皮質オルガノイドのエレクトロポレーションは、皮質発生中の遺伝子機能、遺伝子調節、および細胞形態を調査するための強力な技術を表しています。
新皮質とは、大脳半球の外側を覆うものを指し、哺乳類に特有の構造です。新皮質は、高次認知機能の座を表しています1,2,3,4,5。発生中、神経幹細胞と前駆細胞は、ニューロン新生と呼ばれるプロセスでニューロンを生じさせます。ヒト新皮質の発達を研究する機能的研究は、ヒト神経幹細胞の調節、神経病理、およびヒトの脳進化の根底にあるメカニズムを解明するための基礎を提供します2,6,7。
歴史的に、ヒトの脳の発達に関する研究は、死後組織を用いた記述的な組織学的アプローチに依存しており、最近では、ヒト胎児組織を用いた機能的研究を可能にするフリーフローティング組織培養システムを用いている8,9。さらに、ヒ....
ヒト人工多能性幹細胞(hiPSC)を含むすべての実験は、1964年のヘルシンキ宣言に概説された倫理基準に従って実施され、ドレスデン大学病院倫理審査委員会(IRB00001473;IORG0001076;倫理承認番号 SR-EK-456092021)。
1. 急性CRISPR/Cas9を介した遺伝子ノックアウトのためのガイドRNAの設計
2. ヒト人工多能性幹細胞の培養
CRISPR/Cas9を介した遺伝子アブレーションには、gRNAの設計が必要です。一般に、目的の遺伝子の最初のエクソンの1つを、7〜11 bpの間隔で配置したgRNAのペアで標的とすると(3 bpの倍数を避ける)、うまく機能します(図1A)。第1の試験として、gRNAによるテンプレート認識の効率は、PCRテンプレート26,40,62を用いて.......
ヒトの脳オルガノイドと皮質オルガノイドは、ヒトの新皮質の発達を研究するための重要なモデルとなっている7,16,17。ヒト疾患のモデリングでは、アイソジェニックなhiPSC株とオルガノイドがゴールドスタンダードとなっています68。しかし、新規iPS細胞株の作製には時間と費用.......
著者は、利益相反がないことを宣言します。
CRTDとDresden ConceptのパートナーであるK.Neumann氏とStem Cell Engineering Facilityのチーム、H. Hartmann氏と光学顕微鏡施設のチーム、A. Gompf氏とFlow Cytometry Facilityのチーム、MPI-CBGワークショップのHartmut Wolf氏にエレクトロポレーションチャンバーの建設について多大な支援を提供してくださったことに感謝します。原稿に対するフィードバックを提供してくださったJoshua Schmidtに感謝します。MAは、ドレスデン工科大学再生治療センター、DFG(Emmy Noether、AL 2231/1-1)、およびSchramFoundationからの資金提供を認めています。
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
15 mL PP Centrifuge Tubes, conical | Corning | 430791 | |
4D-Nucleofector Core Unit | Lonza | ||
4D-Nucleofector X Unit | Lonza | ||
5 mL polystyrene round-bottom tube with cell-strainer cap | Corning | Falcon 352235 | |
6-well plate, nunclon treated | Thermo Fisher | 140675 | For hiPSC culture |
6-well plate, ultra low attachment | Corning | 3471 | For organoid culture |
A83-01 | STEMCELL Technologies | 72022 | Forebrain medium 1 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Air compressor | Aerotec | ||
Alexa Fluor 488 Donkey Anti-Chicken IgY (IgG) (H+L) | Jackson Immuno Research | 703-545-155 | Secondary antibody, RRID: AB_2340375; dilution 1:1000 |
Alexa Fluor 555 Donkey Anti-Rabbit IgG (H+L) | Invitrogen | A-31572 | Secondary antibody, RRID: AB_162543; dilution 1:1000 |
Alt-R CRISPR-Cas9 crRNA, 2 nmol | Integrated DNA technologies | Custom design (order as 2 nmol) | |
Alt-R CRISPR-Cas9 tracrRNA | Integrated DNA technologies | 1072532 | 5 nmol |
Alt-R S.p. HiFi Cas9 Nuclease V3 | Integrated DNA technologies | 1081060 | 100 µg, from Streptococcus pyogenes |
Amphotericin B (Fungizone) | Gibco | 15290018 | Forebrain medium 2, 3, and 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Anti-GFP primary antibody (chicken, polyclonal) | Abcam | ab13970 | RRID: AB_300798; dilution 1:2000 |
Anti-PCGF4 primary antibody (mouse, monoclonal) | Millipore | 05-637 | RRID: AB_309865; dilution 1:300 |
ApoTome fluorescent microscope | Zeiss | ||
Ascorbic Acid | Sigma Aldrich | 1043003 | Forebrain medium 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
B27-supplement (+ vitamin A) | Gibco | 17504044 | Forebrain medium 3, 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Banana to Micrograbber Cable Kit | Harvard Apparatus BTX | 45-0216 | |
Biometra TRIO-Thermocycler (PCR machine) | Analytik Jena | 846-2-070-723 | |
Capillaries, borosilicate glass with filament, OD 1.2 mm; ID 0.69 mm; 10 cm length | Science Products | BF120-69-10 | Need to be pulled to specific thickness |
CHIR-99021 | STEMCELL Technologies | 72052 | Forebrain medium 2 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Collagenase Type IV | Gibco | 17104019 | |
CRTDi004-A | Stem Cell Engineering Facility at CMCB DD | https://hpscreg.eu/cell-line/CRTDi004-A | Single-cell adapted hiPSC line from healthy donor |
DAPI | Roche | 10236276001 | 1 mg/mL stock, use 1:1000 diluted for IF |
Dibutyryl-cAMP | STEMCELL Technologies | 73884 | Forebrain medium 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma Aldrich | D2650 | |
DMEM/F-12, HEPES | Fisher Scientific | 31330095 | Forebrain medium 1, 2, and 3 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Dorsomorphin | STEMCELL Technologies | 72102 | Forebrain medium 1 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Dumont #55 Forceps, straigth, 11 cm | Fine Science Tools | 11295-51 | |
ECM 830 Square Wave Electroporation System | Harvard Apparatus BTX | 45-2052 | |
Ethanol | Sigma Aldrich | 32205-1L-M | |
Ethylenediaminetetraacetic acid (EDTA) | Sigma Aldrich | EDS-500G | |
Fast Green FCF | Sigma Aldrich | F7252 | |
Fetal Bovine Serum (FBS) | GE Healthcare | SH30070.03 | |
Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instrument Co. | P-97 | For pulling of microcapillaries |
Geneious Prime | GraphPad Software LLC d.b.a Geneious | Software version 2024.0.5 | |
gLACZ | Kalebic et al., 2016; Platt et al., 2014 | 5'-TGCGAATACGCCCACGCGATCGG; underlined nucleotides = PAM | |
GlutaMAX | Gibco | 35050038 | Forebrain medium 1, 2, 3, and 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Glycine | Sigma Aldrich | G8898 | |
gPCGF4 KO1 | this paper | 5'-TGAACTTGGACATCACAAATAGG (corresponds to the KO images in Figure 3I+J) | |
gPCGF4 KO2 | this paper | 5'-ACAAATAGGACAATACTTGCTGG (corresponds to the KO images in Figure 3I+J) | |
HEPES | made in house | 1 M stock | |
Horse Serum, heat-inactivated | Gibco | 26050088 | |
Human GDNF Recombinant Protein | Thermo Fisher | 450-10 | Forebrain medium 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Human/Mouse/Rat BDNF Recombinant Protein | Thermo Fisher | 450-02 | Forebrain medium 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Hydrochloric acid (HCl) | Sigma Aldrich | 258148 | To make TrisHCl |
ImmEdge (wax) Pen | Vector Laboraories | H-4000 | |
Insulin solution human | Sigma Aldrich | I9278 | Forebrain medium 3 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Isopropanol | Fisher Scientific | BP2618-1 | |
Knockout Serum Replacement | Gibco | 10828-010 | Forebrain medium 1 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Laser Scanning Confocal 980 Microscope | Zeiss | ||
Low Melting Point Agarose, ultra pure | Thermo Fisher | 16520100 | for embedding of hCOs during vibratome sectioning |
Matrigel Growth Factor Reduced (GFR) Basement Membrane Matrix, LDEV-free | Corning | 354230 | For organoid culture |
Matrigel hESC-Qualified Matrix, LDEV-free | Corning | 354277 | For hiPSC culture |
MgCl2, 1 M | Thermo Fisher | AM9530G | |
Microinjector PicoPump + Foot Switch | World Precision Instruments | SYS-PV820 | |
Microloader Pipette Tips 0.5 to 20 µL | Eppendorf | 5242956003 | For loading of glass capillaries |
Mowiol 4-88 | Sigma Aldrich | 81381 | |
mTeSR 1 | STEMCELL Technologies | 85850 | Stem cell medium |
N-2 supplement | Gibco | 17502048 | Forebrain medium 2, and 3 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
NaCl | Sigma Aldrich | S5886 | |
NaHCO3 | Sigma Aldrich | S5761 | |
NEB Next High Fidelity 2x PCR Mastermix | New England Biolabs | M0541S | |
Neubauer counting chamber | Brand | 718605 | |
Neurobasal medium | Gibco | 21103049 | Forebrain medium 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Non-Essential Amino Acids | Gibco | 11140050 | Forebrain medium 1, 2, 3, and 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Nuclease-Free Duplex Buffer | Integrated DNA technologies | 1072570 | |
O. C. T. Compound | Tissue-Tek | 4583 | Embedding medium for frozen tissue specimen |
P3 Primary Cell 4D-Nucleofector X Kit S | Lonza | V4XP-3032 | |
Paraformaldehyde | Fisher Chemical | P/0840/53 | |
pCAG-GFP | Addgene | 11150 | |
Peel-A-Way Embedding Mold TruncatedT12 | Polysciences Inc. | 18986-1 | For embedding of hCOs for vibratome and cryo-sectioning |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Gibco | 15140122 | Forebrain medium 1, 2, 3, and 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 and for stem cell medium after nucleofection |
Petri Dish 60 mm x 15 mm, No Vent, Sterile | Corning | BP50-02 | |
Petri Dish Platinum Electrode Chamber, 5 mm gap | Harvard Apparatus BTX | 45-0504 | |
Phosphate buffered saline (PBS) | made in house | ||
Proteinase K | Sigma Aldrich | P2308 | From Titrachium album; 10 mg/mL stock |
QIAquick Gel Extraction Kit | Qiagen | 28706 | |
RHO/ROCK pathway inhibitor (Y-27632) | STEMCELL Technologies | 72308 | |
SB-431542 | STEMCELL Technologies | 72232 | Forebrain medium 2 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
Sodium Citrate Dihydrate | Sigma Aldrich | W302600-1KG-K | |
Sodium Dodecyl Sulfate (SDS) | Sigma Aldrich | L3771 | |
Sucrose | Sigma Aldrich | S7903 | |
SuperFrost Plus adhesion slides | Fisher Scientific | 10149870 | |
SZX10 with a KL 300 LED | Olympus | SZX10 | Or alternative stereoscope |
Thermo Shaker | Grant bio | PSC24N | |
Triton-X | Sigma Aldrich | T9284 | a.k.a. Octoxinol 9 |
Trizma base | Sigma Aldrich | T1503 | To make TrisHCl |
Trypan Blue Solution, 0.4% | Thermo Fisher | 15250061 | |
TrypLE Express Enzyme (1x) | Thermo Fisher | 12604021 | Dissociation enzmye to make single-cell suspensions |
Tween 20 | Sigma Aldrich | P1379 | a.k.a. Polysorbate 20 |
Tyrode's salt | Sigma Aldrich | T2145-10x1l | |
Vibrating Microtome (vibratome) | Leica | VT1200 S | |
Wide-Bore 1000 µL Universal Fit Filter Tips | Corning | TF-1005-WB-R-S | |
β-Mercaptoethanol | Gibco | 21985-023 | Forebrain medium 1, 3, and 4 (https://doi.org/10.1016/j.stem.2020.02.002)15 |
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