JoVE Logo

로그인

JoVE 비디오를 활용하시려면 도서관을 통한 기관 구독이 필요합니다. 전체 비디오를 보시려면 로그인하거나 무료 트라이얼을 시작하세요.

기사 소개

  • 요약
  • 초록
  • 서문
  • 프로토콜
  • 결과
  • 토론
  • 공개
  • 감사의 말
  • 자료
  • 참고문헌
  • 재인쇄 및 허가

요약

여기 우리가 전체 마우스 배아 초기에 β-galactosidase 활동의 검출을 위한 표준 프로토콜 및 파라핀 단면화 및 counterstaining에 대 한 방법을 설명 합니다. 이것은 개발 조직 단면도에 또한 적용 될 수 있는 유전자 발현을 모니터링 하는 간단 하 고 빠른 절차 기관 또는 배양된 세포.

초록

Β-galactosidase, 인코딩 대장균 LacZ 유전자, 유전자 발현에 대 한 기자로 서 고 세포 계보 연구에서 추적 프로그램으로 크게 사용 된다. 클래식 조직화 학적인 반응은 쉽게 시각화 하는 불용 성 푸른 침전을 생성 하 고 철 제 2 철 이온, 함께에서 기판 X gal의 가수분해를 기반으로 합니다. 따라서, β-galactosidase 활동은 관심사의 유전자의 표현 패턴에 대 한 표식으로 개발 진행 있습니다. 여기 우리가 전체 마우스 배아 초기에 β-galactosidase 활동의 검출을 위한 표준 프로토콜 및 파라핀 단면화 및 counterstaining에 대 한 후속 방법 설명. 또한, 전체 배아를 명확히 하는 절차는 더 나은 X-여자 태아의 더 깊은 영역에 얼룩을 시각화 하 제공 됩니다. 반응 조건의 최적화 백그라운드 작업을 최소화 하는 데 필요한 있지만 일관 된 결과이 절차를 수행 하 여 얻을 수 있습니다. 분석 결과에 한계 고려 되어야 한다 또한, 특히 전체 마운트 얼룩에서 태아의 크기에 관한. 우리의 프로토콜 민감하고 cryostat 섹션 뿐만 아니라 모든 장기에 더 적용할 수 있는 마우스 개발 중 β-galactosidase 탐지에 대 한 신뢰할 수 있는 메서드를 제공 합니다. 따라서, 개발에 걸쳐 동적 유전자 표현 패턴 전체 태아에서이 프로토콜을 사용 하 여 쉽게 분석 될 수 있다 그러나 또한 세포 수준에서 상세한 식 파라핀 단면 후 평가 될 수 있다.

서문

특정 유전자 표현 패턴을 설명 하기 위해 기자 유전자 마커로 사용 초파리 에서 포유동물에 최고 되었습니다. 유전자 변형 및 녹아웃 동물 관련 된 실험, 대장균 (대장균)의 세균 β-galactosidase 유전자 (LacZ) 가장 널리 사용 되는1,2,3, 중 하나입니다. 4. β-galactosidase (β-gal)의 단 (포도 당 그리고 갈 락 토스)5에 β-galactosides (유 당) 등의 가수분해를 catalyzes. 가장 일반적으로 사용 되는 기판은 X-여자 (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-β-D-galactopyranoside), β-galactosidase 주는 상승 5-bromo-4-chloro-3-hydroxyindole 그리고 갈 락 토스로 분해 glycoside 했다. 첫 번째는 이합체에 산화, 사용 하는 경우 칼륨 ferri 결합-및 페로 시안 화물 생산 특성 불용 성, 파란색 침전 (그림 1)6.

LacZ 유전자 이상 30 년 전 리포터 유전자로 사용 될 시작7,8. LacZ 삽입은 일반적으로, 그것은 내 생의 추적으로 유전자 변형 동물에서 뿐만 아니라 특정 삽입, 포함 된 셀을 시각화 하기 위해 박테리아와 세포 문화에 사용 될 수 있도록 열려있는 독서 프레임 대신 생 발기인의 하류 유전자 개발9중 식 패턴입니다. 이와 관련, β-galactosidase 활동의 시각화는 광범위 하 게 사용 되었다 초파리 에서 전체 조직에 단일 셀에서 개발 및 세포 프로세스를 이해 하. 초파리 유전학 부탁 있는 LacZ 는 취재 원 유전자를 포함 하는 수정 된 P 요소 구문 삽입 위치는 게놈에 무작위로 안정적인 라인의 세대. 따라서, 증강 요소의 영향 아래에 배치 하는 경우 그것은 수 있습니다 드라이브의 식을 조직 특정 방식으로, 지난 2 년간10동안 많은 유전자의 표현 패턴의 체계적인 분석을 허용 했다. 또한, 유전자 변형 생쥐 LacZ 유전자 발현 모니터링의 사용 또한 수 있습니다 Cre loxP 유전자 재조합 이벤트의 중재 재결합, 그리고 공상 분석 돌연변이 배아 줄기 세포 유래의 지역화 11, 용이 하 게 특정 조직에 LacZ 식의 제어 뿐만 아니라 일시적으로. 전체 배아의 β-galactosidase 활동의 일시적인 유전자 발현 에서에서 분석에 다른 발달 단계에 걸쳐 편리 하 게 관찰 될 수 있다 다른 농도에서 차동 얼룩 패턴을 생성 될 수 있습니다 또한, 8,12.

이 문서에서는, 선물이 X gal 통해 유전자 발현을 시각화 하는 프로토콜 마우스 배아의 초기 발달 단계에서 전체 산 조직에 얼룩. 우리는 파라핀 조직 또는 배아를 포함 하는 후 전체 산 표본 또는 세포 수준에서 레이블이 지정 된 셀의 정확한 탐지를 호의 매우 민감하고 저렴 한 기술로이 조직화 학적인 방법 제시. 메서드를 사용 하면 다른 방법13와 비교할 때 최소 배경과 마우스 조직에 얼룩의 직접적인 시각화 수 있습니다.

프로토콜

모든 실험 절차는 최소한의 동물의 고통을 CNIC (센트로 나시오날 드 Investigaciones Cardiovasculares)과 지방의 Autónoma 드 마드리드의 동물 실험 윤리 위원회에 의해 승인 되었다.

1. (E12.5에 E8.5)에서 임신 쥐에서 배아의 수집

  1. 자 궁 경관 탈 구 또는 CO2 흡입에 의해 임신 쥐를 희생. 첫 번째의 하루 질 플러그 배아 여겨졌다 관찰 하루 0.5 (E0.5).
  2. 흡수 성 패드에 부정사 위치에 동물을 70% 에탄올과 마우스의 복 부 피부를 청소.
    참고: 무 균 다음 단계에는 필요 하지 않습니다.
  3. 꼬 집 고 마우스 이빨 집게를 사용 하 여 복 부 피부.
  4. 피부와 복 부 벽, 수술가 위를 사용 하 여 복 부의 중간에 걸쳐 수직으로 2 ~ 4 cm을 통해 절 개를 확인 합니다.
  5. 복 부를 노출 하 고 수술가 위는 자 궁의 안쪽 곡률에 따라 혈관 절단 집게 어머니 로부터 자 궁 뿔 제거.
  6. 배아의 문자열을 제거 하 고 10 mL 차가운 0.01 M 인산 염 버퍼 염 분 pH 7.4 (PBS)를 포함 하는 얼음의 페 트리 접시 전송.
  7. 신중 하 게 10 mL 신선한 얼음 처럼 차가운 PBS와 페 트리 접시에 stereomicroscope 아래 자 궁에서 밖으로 태아를 해 부. 다음 동봉 된 배아와 노 른 자 sac는 집게의 팁을 사용 하 여 제거 하는 양수 막 눈물을 양수 골목, 노출 시계 집게와 근육 벽을 잡고.
  8. (E12.5에 E8.5)에서 초기 단계에서 littermate 배아 임신 쥐에서 수집 (그림 2).
  9. 10 mL 감기 1 x PBS 곡선된 겸 자 사용 하 여 신선한 요리에 배아를 전송 하거나, 매우 작은 태아 (E8.5-E9.5)를 사용 하 여 플라스틱 전송 펫 태아 손상 없이 샘플을 수집.
  10. 시작 하기 전에 고정, 태아의 작은 조각을 절단 또는 시계 셉 (E9.5에 E8.5)에서 가장 작은 태아에서 양수 막 복용 배아 샘플 유전형 microcentrifuge 튜브에 걸릴.
    참고: LacZ 유전형 중 합 효소 연쇄 반응 (PCR) 뇌관에 의해 결정 됩니다: 앞으로, 5´-ATCGTGCGGTGGTTGAACTG-3´; 반대로, 5´-CGAGGCGTTAACCGTCAGCA-3´.

2입니다. 마우스 배아의 고정

  1. 1 mL 1 x PBS를 포함 하는 둥근된 기지와 2 mL microcentrifuge 튜브에 각 배아를 전송.
    참고: 회전 통을 사용 하 여 동요와이 튜브에 프로토콜에서 모든 단계를 수행 합니다.
  2. 나머지 혈액을 제거 하기 위해 실내 온도에서 1 분 동안 1 x PBS에 배아를 씻어. 튜브에 액체를 변경 하려면 사용 플라스틱 전송 펫.
  3. 얼음에 0.125% 글의 1 mL에 태아를 수정.
    참고: 고정 시간 태아의 크기에 따라 달라 집니다: E8.5 E9.5 배아, E10.5 배아 및 E12.5 배아에 대 한 1 시간 30 분에 대 일 분.
  4. 정착 액을 제거 하 고 X-여자 얼룩에 대 한 샘플을 처리 하기 전에 실 온에서 10 분 동안 두 번 1 x PBS에 배아를 세척.

3. 전체 산 β-galactosidase Histochemistry 마우스 배아의

  1. 준비 X Gal 린스 버퍼와 절차를 시작 하기 전에 X Gal 얼룩이 솔루션 ( 표 1재료의 표참조). 야생-타입 (WT) littermate 배아를 사용 하 여 효소 반응에 대 한 부정적인 컨트롤.
  2. (그림 2) 실 온에서 10 분 X Gal 린스 버퍼에 태아를 품 어.
  3. 빛에서 보호 하는 37 ° C에서 하룻밤에 2 h에서 X Gal 얼룩이 솔루션에 태아를 품 어. 블루 얼룩의 충분 한 강도 태아에서 배경 없이 관찰 될 때까지 색상 반응 해 현미경을 통해 정기적으로 모니터링 합니다. 8과 동안을 줄이기 위해 배경 전체 얼룩 9 사이의 솔루션의 산도 유지. 얼룩 솔루션 빛을 시작, 신선한 기판 솔루션 효소 반응 확장을 교체.
  4. 원하는 신호는 각각 실 온에서 10 분에 대 한 두 번 1 mL 1 x PBS 가진 microcentrifuge 관에서 배아를 세척 하 여 얻어진 반응 중지.
  5. 4 ° c.에 하룻밤 1 h 1 mL 4 %paraformaldehyde (PFA) 다시 들을 수정, 스테인드 배아 전송
    참고: 배아는 4%에 저장할 수 있습니다 PFA/PBS 4 ° C에서 더 긴 시간에 대 한 단면에 대 한 즉시 처리 될 수 있습니다. 이 마지막 정착 단계 얼룩 패턴의 장기 보존을 위해 결정적 이다.
  6. 실 온에서 10 분 동안 두 번 1 mL 1 x PBS에 배아를 씻어.
  7. 옵션 1: 일련의 글리세롤 (1 x PBS에 20%, 40%, 60% 및 80% 글리세롤) 각 솔루션에 실 온에서 1 h의 농도 증가 함께 해결책에 있는 침수에 의해 태아를 선택을 취소 합니다.
    참고: 긴 시간 동안 80% 글리세롤에 배아를 세척도 일 때까지 그들은, 삭제 하 고이 단계 (그림 2)에서 4 ° C에서 80% 글리세롤에 그들을 저장. 글리세롤 또는 1 x 4 ° C에서 저장 된 배아에 아메리카의 나트륨 아 지 드 오 라 크리스탈의 아주 작은 금액을 추가 PBS 형 성장을 방지 하기 위해 좋습니다. 개간, 후 전체 마운트 배아 (4 단계) 촬영을 위해 사용할 수 있습니다.
  8. 옵션 2: 파라핀 포함 하 고 톰 (그림 2)를 사용 하 여 단면에 대 한 배아를 처리 합니다. (4, 5 단계)를 구분 하기 전에 전체 스테인드 배아에 식 패턴을 문서화 합니다.

4입니다. 전체 산 태아의 사진

  1. 전체 산 단면 전에 태아를 얼룩이 사진, 페 트리 접시의 기초와 준비에 그들을 전송 1 x PBS에서 1-2 %agarose 경화.
  2. 완전히 탈수 및 액체를 통해 촬영 하는 동안 반사 방지 하기 위해 agarose 코팅 요리에 10 mL 1 x PBS 가진 배아를 커버.
  3. 집게를 사용 하 여 1 x PBS에 배아 찾으시는 오래 된 배아 (E10.5-E12.5), 배치 하 고 다른 각도에서 그것에서 견본을 위치 하 고 동안을 피하기 위해는 부동성 사진 집게와는 agarose 작은 구멍을 확인 합니다.
  4. 전송된 (아래 단계) 빛을 사용 하 여 stereomicroscope 단계에 접시를 놓습니다. ' 다크 필드 '와 ' 밝은 필드 ' 조정 사진 중 원하는 조명 설정 하 고 최적화 하는 샘플의 반투명을 변경 합니다.
    참고: 파이버 광섬유 조명 나중 단계 배아에 대 한를 사용 하 여 태아의 표면에서 반사를 피하기 위해. 지운된 태아 촬영 때 동일한 절차에 따라 하지만 100% 글리세롤을 포함 하는 배양 접시에 그들을 전송 하 고 완전히 그들을 담가.

5. 파라핀 포함 하 고 X-여자의 단면 스테인드 배아

  1. 파라핀 왁 스 포함
    1. 4 ° C (3.5 단계)에서 배아 스테인드 X gal을 제거 하 고 그들을 씻어 1 mL 1 x PBS와 세 번 정착 액의 과잉을 제거 하.
    2. 집게를 사용 하 여 조직학 카세트에 각 배아를 전송 합니다.
    3. 비 커에 배아를 포함 하는 카세트를 놓고 다음 실 온에서 등급된 에탄올 시리즈를 통해 전달 하 여 탈수: 70% 에탄올, 한 번 30 분; 96% 에탄올, 각; 30 분 동안 두 번 30 분 동안 두 번 100% 에탄올
      참고: 배아 저장할 수 있습니다 70% 에탄올에서 탈수 과정을 시작 때까지 4 ° C에서 알 수 없는 시간에 대 한.
    4. 실 온에서 30 분 동안 소 프로 파 놀에 전체 카세트를 품 어.
    5. 집게를 사용 하 여 미리 데워 진된 소 프로 파 놀을 포함 하 여 물 얼룩 유리를 카세트를 전송 하 고 오븐에서 30 분 동안 60 ° C에 두고.
    6. 새로운 유리 50% 소 프로 파 놀의 혼합물을 포함 하 여 물 얼룩에 카세트를 배치 / 50% 파라핀 왁 스를 녹아 하 고 60 ° C 오븐에서 4 h 떠나.
    7. 녹은 파라핀 왁 스, 60 ° C에서 30 분의 변화 2와 배아와 카세트를 품 어.
    8. 최종 파라핀 세척의 끝에, 카세트 열고 몰드는 stereomicroscope 아래 샘플을 볼 수를 포함 하는 별도 조직에 각 배아를 전송 합니다.
    9. 60 ° c.에 녹은 파라핀 왁 스로 잘 채우기 열띤된 집게를 사용 하 여 녹은 왁 스를 유지 하 고 신중 하 게 금형에 배아를 찾으시는.
      참고: 샘플의 적절 한 방향을 원하는 평면에서 배아를 단면에 대 한 중요 한 단계입니다.
    10. 금형에 파라핀 굳은, 전에 블록 위에 뚜껑 없이 카세트 놓고 녹은 파라핀 왁 스와 함께 작성 합니다. 하룻밤 실 온에서 경화 될 때까지 나머지 왁 스 식 지.
    11. 파라핀은 완전히 경화, 일단 금형에서 고체 블록을 제거 하 고 단면14까지 실내 온도에 또는 4 ° C에 파라핀 블록 저장.
  2. 파라핀 단면
    1. 동양에 톰 블레이드 하 고 5-7 µ m 두께의 설정. 5.2.2. 시원한 얼음에 파라핀 블록 하 고 큐브 또는 피라미드 트림.
    2. 녹은 왁 스의 작은 금액을 사용 하 여 블록 톰 홀더를 연결 합니다.
    3. 최적의 절단에 대 한 블록을 방향을 정하십시오. 표준 톰을 사용 하 여 실 온에서 5-7 µ m 두꺼운 조각으로 파라핀 블록 섹션.
    4. 좋은 붓을 사용 하 여, 조작 하 고 슬라이스 선택에 대 한 실 온에서 물 욕조에 섹션을 배치 합니다.
    5. 현미경 슬라이드와 물 탕에서 섹션을 선택 하 고 스트레칭을 위한 42 ° C에 물 목욕으로 그들을 전송.
    6. 물 목욕에서 섹션을 제거 하 고 부드럽게 접착 현미경 슬라이드에 그들을 배치.
    7. 건조 오븐에서 37 ° C 하룻밤 수 있도록 완전히 준수 섹션에서 슬라이드, 그렇지 않으면, 그들은 얻을 수 있습니다 손실 얼룩이 지는 동안.
      참고: 절차를 얼룩 시작까지 4 ° C에서 슬라이드를 저장 합니다.
  3. Deparaffinization 및 X Gal 스테인드 파라핀 섹션의 Counterstaining
    1. 현미경 슬라이드 트레이 더 액체 파라핀 왁 스를 만들기 위해 적어도 45 분 동안 60 ° C에서 오븐에서에 슬라이드를 넣어.
    2. 전송에 랙 슬라이드 및 유리 얼룩 요리를 사용 하 여 다음 단계를 수행: 감소 하는 완전 한 파라핀 제거 및 조직의 수 분 농도의 알콜을 포함 하는 얼룩 항아리에 랙 잠수함: 소 프로 파 놀에서 5 분 60 ° C; 소 프로 파 놀 3 분;에 대 한 2 분;에 대 한 100% 에탄올 96% 에탄올 1 분; 실 온에서 1 분의 70% 에탄올
    3. 없는 알코올 잔류물 있는지 확인을 두 번 증류수에 섹션 린스.
    4. (예를 들어 핵-빠른 레드 솔루션) 실내 온도 (그림 2)에 (3-8 분) 사이 보통 5 분에 대 한 얼룩으로 섹션 counterstain
      참고:이 얼룩 섹션에서 전체 조직 구조를 밝히는 데 도움이 됩니다.
    5. 얼룩, 후 1 분 증류수에 슬라이드를 세척 하 고 현미경에 얼룩 섹션을 확인 합니다.
      참고: 원하는 착 색 하는 것이 너무 약한 경우 counterstain 섹션 다시 긴 시간.
    6. 에탄올의 농도 증가 함께 다음 시리즈에서 섹션 탈수: 2 분에 대 한 95% 에탄올에 두 세척,이 분 각, 100% 에탄올에 씻어 하 고, 파란색을 해산 하지 않으려면 색 침전 물, 크 실 렌에서 한 빠른 세척.
    7. 랙 하나 하나에서에서 슬라이드를 제거 하 고 종이의 조각에 그들을 배치. 다음 산과 coverslip 각 합성, 영구 설치 매체를 사용 하 여 슬라이드.
      참고: 크 실 렌의 증기는 자극 하 고 인간의 건강 및 수생 생물에 유해 인화성 제품 이다. 그것은 후드 내에서 조작 하 고 적절 한 보호 장비를 사용 해야 합니다.

결과

여기 우리는 X-gal을 사용 하 여 전체 마우스 배아 (그림 1그림 2)에서 기판으로 β-galactosidase 조직화 학적인 반응에 대 한 표준 프로토콜을 적용 결과 보여줍니다. 이 프로토콜을 사용 하 여 우리는 서로 다른 배아 발달 단계 (E9.5, E11.5, 및 E12.5)에 막 유형 4 매트릭스 metalloproteinase (Mt4-mmp) 식 검사 LacZ 기자는 내 생의 통제를 표현 ...

토론

대장균 LacZ 유전자 널리 사용 되었습니다 유전자 표현 패턴의 연구에 기자로 서의 높은 감도 및 검출의 용이성. 현재 프로토콜은 간단 하 고 저렴 한 뿐만 아니라 수행 하는 효소 반응에 따라 β-gal 식 탐지 하기 위한 고전적인 방법을 설명 합니다. 이 메서드는 또한 전체 마운트 배아, 그대로 장기, cryostat 조직 섹션 또는 배양된 세포에서 중요 수정 없이 적용할 수 있습니다.

공개

저자 들은 경쟁 금융 관심 선언 합니다.

감사의 말

우리는 그들의 기술 지원에 대 한 Histopathological 서비스 센트 나시오날 드 Investigaciones Cardiovasculares (CNIC)에 감사 하 고 싶습니다. 지원 우리의 프로젝트 및 원고 그녀의 중요 한 독서에 대 한 우리는 또한 친절 하 게 제공 Mt4 mmpLacZ 마우스, 박사 전 部와 박사 엘리샤 G. 아로요를 감사. 피터 Bonney이이 문서를 교정 하는 것을 감사 하 길. 이 이는 그랜트 (# 2017UEM01) C.S.C.에 게 수 여에 의하여 대학 Europea 마드리드에 의해 지원 되었다

자료

NameCompanyCatalog NumberComments
REAGENTS
2-PropanolSIGMA-ALDRICH24137-1L-R
AgaroseSCHARLAU50004/ LE3Q2014
Aqueous mounting mediumVECTOR LABSH-5501
Synthetic mounting mediaMERCK100579
96% EthanolPROLABO20824365
99.9% Ethanol absoluteSCHARLAUET00021000
50% Glutaraldehyde solutionSIGMA-ALDRICHG6403-100ml
85% GlycerolMERCK104094
99.9% GlycerolSIGMA-ALDRICHG5516
Magnesium chloride hexahydrateSIGMA-ALDRICH63064
Nonionic surfactant (Nonidet P-40)SIGMA-ALDRICH542334
Nuclear Fast Red counterstainSIGMA-ALDRICHN3020
Paraffin pastillesMERCK111609
ParaformaldehydeSIGMA-ALDRICH158127-500g
Phosphate buffered saline (tablets)SIGMA-ALDRICHP4417-50TAB
Potassium ferrocyanateMERCK1049840500
Potassium ferrocyanideMERCK1049731000
Sodium azideSIGMA-ALDRICHS8032
Sodium deoxycholateSIGMA-ALDRICH30970
Sodium dihydrogen phosphate monohydrateSIGMA-ALDRICH106346
Sodium phosphate dibasic dihydrateSIGMA-ALDRICH71638
ThymolSIGMA-ALDRICHT0501
Tris hydrochloride (Tris HCl)SIGMA-ALDRICH10812846001 (Roche)
X-GALVENN NOVAR-0004-1000
XyleneVWR CHEMICALSVWRC28973.363
EQUIPMENT
Disposable plastic cryomolds 15x15x5 mmSAKURA4566
Rotatory MicrotomeLeicaRM2235
CassettesOxford TradeOT-10-9046
Microscope Cover Glasses 24x60 mmVWRECN631-1575
Microscope slidesThermo Scientific, MENZEL-GLÄSERAGAA000001#12E
Adhesion microscope slidesThermo Scientific, MENZEL-GLÄSERJ1820AMNZ
Flotation Water bathLeicaHI1210
Disposable Low Profile Microtome BladesFeatherUDM-R35
Paraffin ovenJ.R. SELECTA2000205
Wax Paraffin dispenserJ.R. SELECTA4000490
StereomicroscopeLeicaDM500
Polypropylene microcentrifuge tubes 2.0 mLSIGMA-ALDRICHT2795
Polypropylene microcentrifuge tubes 1.5 mLSIGMA-ALDRICHT9661
Orbital shakerIKA LabortechnikHS250 BASIC
Stirring Hot PlateBibbyHB502
Vortex ShakerIKA LabortechnikMS1
Laboratory scaleGRAMFH-2000
Precision scaleSartoriusISO9001
pHmeterCrisonBasic 20
Optic fiberOptechPL2000

참고문헌

  1. Shuman, H. A., Silhavy, T. J., Beckwith, J. R. Labeling of proteins with beta-galactosidase by gene fusion. Identification of a cytoplasmic membrane component of the Escherichia coli maltose transport system. The Journal of Biological Chemistry. 255, 168-174 (1980).
  2. Cui, C., Wani, M. A., Wight, D., Kopchick, J., Stambrook, P. J. Reporter genes in transgenic mice. Transgenic Research. 3, 182 (1994).
  3. Takahashi, E., et al. Expression analysis of Escherichia coli lacZ reporter gene in transgenic mice. Brain Research. Brain Research Protocols. 5 (2), 159-166 (2000).
  4. Burn, S. F. Detection of β-Galactosidase Activity: X-gal Staining. Methods Mol Biol. 886, 241-250 (2012).
  5. Jacob, F., Monod, J. Genetic regulatory mechanisms in the synthesis of proteins. J Mol Biol. 3, 318-356 (1961).
  6. Pearson, B., Wolf, P. L., Vazquez, J. A comparative study of a series of new indolyl compounds to localize beta-galactosidase in tissues. Laboratory Investigation; a Journal of Technical Methods and Pathology. 12, 1249-1259 (1963).
  7. Kothary, R., et al. A transgene containing lacZ inserted into the dystonia locus is expressed in neural tube. Nature. 335 (6189), 435-437 (1988).
  8. Kothary, R., et al. Inducible expression of an hsp68-lacZ hybrid gene in transgenic mice. Development. 105 (4), 707-714 (1989).
  9. Blanco, M. J., et al. Developmental expression of membrane type 4-matrix metalloproteinase (Mt4-mmp/Mmp17) in the mouse embryo. PLOS ONE. 12 (9), e0184767 (2017).
  10. Hartenstein, V., Jan, Y. N. Studying Drosophila embryogenesis with P-lacZ enhancer trap lines. Roux's Archives of Developmental Biology. 201 (4), 194-220 (1992).
  11. Gierut, J. J., Jacks, T. E., Haigis, K. M. Whole-mount X-Gal staining of mouse tissues. Cold Spring Harb Protoc. 1 (4), 417-419 (2014).
  12. Cooper, M. A., Zhou, R. β-Galactosidase Staining of LacZ Fusion Proteins in Whole Tissue Preparations. Methods Mol Biol. 1018, 189-197 (2013).
  13. Sundararajan, S., Wakamiya, M., Behringer, R. R., Rivera-Pérez, J. A. A fast and sensitive alternative for β-galactosidase detection in mouse embryos. Development. 139 (23), 4484-4490 (2012).
  14. Wei, Q., Manley, N. R., Condie, B. G. Whole mount in situ hybridization of E8.5 to E11.5 mouse embryos. Journal of Visualized Experiments. 56, 2797 (2011).
  15. Rikimaru, A., et al. Establishment of an MT4-MMP-deficient mouse strain representing an efficient tracking system for MT4-MMP/MMP-17 expression in vivo using beta-galactosidase. Genes Cells. 12 (9), 1091-1100 (2007).
  16. Leight, J. L., Alge, D. L., Maier, A. J., Anseth, K. S. Direct measurement of matrix metalloproteinase activity in 3D cellular microenvironments using a fluorogenic peptide substrate. Biomaterials. 34 (30), 7344-7352 (2013).
  17. Ma, W., Rogers, K., Zbar, B., Schmidt, L. Effects of different fixatives on β-galactosidase activity. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 50 (10), 1421-1424 (2002).
  18. Lojda, Z. Indigogenic methods for glycosidases. II. An improved method for beta-D-galactosidase and its application to localization studies of the enzymes in the intestine and in other tissues. Histochemie. 23 (3), 266-288 (1970).
  19. Trifonov, S., Yamashita, Y., Kase, M., Maruyama, M., Sugimoto, T. Overview and assessment of the histochemical methods and reagents for the detection of β-galactosidase activity in transgenic animals. Anat Sci Int. 91, 56-67 (2016).
  20. Sanchez-Ramos, J., et al. The X-gal Caution in Neural Transplantation Studies. Cell Transplantation. 9 (5), 657-667 (2000).
  21. Weiss, D. J., Liggitt, D., Clark, J. G. In situ histochemical detection of beta-galactosidase activity in lung: assessment of X-Gal reagent in distinguishing lacZ gene expression and endogenous beta-galactosidase activity. Hum Gene Ther. 8 (13), 1545-1554 (1997).
  22. Merkwitz, C., Blaschuk, O., Schulz, A., Ricken, A. M. Comments on Methods to Suppress Endogenous β-Galactosidase Activity in Mouse Tissues Expressing the LacZ Reporter Gene. The Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 64 (10), 579-586 (2016).
  23. Buesa, R. J., Peshkov, M. V. Histology without xylene. Annals of Diagnostic Pathology. 13, 246-256 (2009).
  24. Richardson, D. S., Lichtman, J. W. Clarifying Tissue Clearing. Cell. 162 (2), 246-257 (2015).
  25. Kandyala, R., Raghavendra, S. P. C., Rajasekharan, S. T. Xylene: An overview of its health hazards and preventive measures. Journal of Oral and Maxillofacial Pathology. 14 (1), 1-5 (2010).
  26. Hinds, H. L. A Comparison of Three Xylene Substitutes. Laboratory Medicine. 17 (12), 752-755 (1986).
  27. Merkwitz, C., Blaschuk, O., Winkler, J., Schulz, A., Prömel, S., Ricken, A. M. Advantages and Limitations of Salmon-Gal/Tetrazolium Salt Histochemistry for the Detection of LacZ Reporter Gene Activity in Murine Epithelial Tissue. Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 65 (4), 197-206 (2017).
  28. Levitsky, K. L., Toledo-Aral, J. J., López-Barneo, J., Villadiego, J. Direct confocal acquisition of fluorescence from X-gal staining on thick tissue sections. Scientific Reports. 3, 2937 (2013).
  29. Shen, X., Bao, W., Yu, W., Liang, R., Nguyen, B., Yu Liu, Y. An improved method with high sensitivity and low background in detecting low β-galactosidase expression in mouse embryos. PLoS One. 12 (5), (2017).
  30. Komatsu, Y., Kishigami, S., Mishina, Y. In situ Hybridization Methods for Mouse Whole Mounts and Tissue Sections with and Without Additional β-Galactosidase. Methods Mol Biol. 1092, 1-15 (2014).
  31. Jeong, Y., Epstein, D. J. Distinct regulators of Shh transcription in the floor plate and notochord indicate separate origins for these tissues in the mouse node. Development. 130 (16), 3891-3902 (2003).
  32. Eid, R., Koseki, H., Schughart, K. Analysis of LacZ reporter genes in transgenic embryos suggests the presence of several cis-acting regulatory elements in the murine Hoxb-6 gene. Developmental Dynamics. 196 (3), 205-216 (1993).
  33. Will, A. J., et al. Composition and dosage of a multipartite enhancer cluster control developmental expression of Ihh (Indian hedgehog). Nature Genetics. 49 (10), 1539-1545 (2017).
  34. Stanford, W. L., Cohn, J. B., Cordes, S. P. Gene-trap mutagenesis: past, present and beyond. Nature Reviews Genetics. 2 (10), 756-768 (2001).
  35. Ménoret, S., et al. lacZ transgenic rats tolerant for beta-galactosidase: recipients for gene transfer studies using lacZ as a reporter gene. Human Gene Therapy. 13 (11), 1383-1390 (2002).
  36. Takahashi, M., et al. Establishment of lacZ-transgenic rats: a tool for regenerative research in myocardium. Biochemical and Biophysical Research Communications. 305 (4), 904-908 (2003).
  37. Mozdziak, P. E., Borwornpinyo, S., McCoy, D. W., Petitte, J. N. Development of transgenic chickens expressing bacterial betagalactosidase. Developmental Dynamics. 226 (3), 439-445 (2003).
  38. Mozdziak, P. E., Wu, Q., Bradford, J. M., Pardue, S. L., Borwornpinyo, S., Giamario, C., Petitte, J. N. Identification of the lacZ insertion site and beta-galactosidase expression in transgenic chickens. Cell Tissue Research. 324 (1), 41-53 (2006).
  39. Hartley, K. O., Nutt, S. L., Amaya, E. Targeted gene expression in transgenic Xenopus using the binary Gal4-UAS system. Proceedings of the National Academy of Science U.S.A. 99, 1377-1382 (2002).
  40. Scheer, N., Campos-Ortega, J. A. Use of the Gal4-UAS technique for targeted gene expression in the zebrafish. Mechanisms of Development. 80 (2), 153-158 (1999).
  41. Brand, A. H., Perrimon, N. Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes. Development. 118 (2), 401-415 (1993).
  42. Lee, B. Y., et al. Senescence-associated beta-galactosidase is lysosomal beta-galactosidase. Aging Cell. 5 (2), 187-195 (2006).
  43. Morais, K. S., Guimarães, A. F. R., Ramos, D. A. R., Silva, F. P., de Oliveira, D. M. Long-term exposure to MST-312 leads to telomerase reverse transcriptase overexpression in MCF-7 breast cancer cells. Anti-Cancer Drugs. 28 (7), 750-756 (2017).
  44. Dimri, G. P., et al. A biomarker that identifies senescent human cells in culture and in aging skin in vivo. Proceedings of the National Academy of Science U.S.A. 92 (20), 9363-9367 (1995).

재인쇄 및 허가

JoVE'article의 텍스트 или 그림을 다시 사용하시려면 허가 살펴보기

허가 살펴보기

더 많은 기사 탐색

136LacZgalactosidase

This article has been published

Video Coming Soon

JoVE Logo

개인 정보 보호

이용 약관

정책

연구

교육

JoVE 소개

Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. 판권 소유