위의 처리된 세포를 얼음처럼 차가운 PBS로 세척하여 잔류 배지를 제거하고 PMSF가 포함된 RIPA 용해 완충액 50마이크로리터를 추가하여 세포를 용해합니다. 튜브에 세포를 수집합니다. 완전한 용해를 지키기 위하여 몇 분 동안 얼음에 세포를 잠복하고, 그 후에 12에 4 섭씨 온도에 분리기, 15 분 동안 000 g.
그런 다음 세포 용해물을 로딩 버퍼와 혼합하고 혼합물을 섭씨 95도에서 100도에서 수조에서 5-10분 동안 가열하여 단백질을 변성시킵니다. 각 샘플에서 10마이크로리터의 총 단백질을 SDS0-PAGE 겔에 로드합니다. 일정한 볼륨에서 젤을 실행tag80볼트의 e.
브로모페놀 블루가 분리 겔의 바닥에 도달하면 전기영동을 중지합니다. 그런 다음 얼음 수조에서 습식 전달 시스템을 사용하여 겔에서 분리된 단백질을 폴리비닐리덴 디플루오라이드 멤브레인으로 옮깁니다. 전사 완료 후, 멤브레인을 제거하고 차단 완충액에서 실온에서 약 1시간 동안 배양한다.
HRP에 접합된 2차 항체로 멤브레인을 배양합니다. 화학발광 기질을 사용하여 멤브레인의 단백질 밴드를 시각화하고 화학발광 이미징 시스템을 사용하여 신호를 캡처합니다. 웨스턴 블롯 분석은 FAM83A의 억제된 발현이 Bax 및 cleaved-caspase-3 단백질을 증가시키고, BCL-2의 발현을 감소시키며, 시토크롬 c 방출을 증가시킨다는 것을 보여주었다.