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Neste Artigo

  • Resumo
  • Resumo
  • Introdução
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discussão
  • Divulgações
  • Agradecimentos
  • Materiais
  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

Descrevemos um método para coletar hemolinfa quantificável eficientemente de pequenos artrópodes para posterior análise.

Resumo

Os artrópodes são conhecidos por transmitir uma variedade de vírus de importância médica e agrícola através de sua hemolinfa, que é essencial para a transmissão do vírus. A coleta de hemolinfa é a tecnologia básica para o estudo das interações vírus-vetor. Aqui, descrevemos um método novo e simples para a coleta quantitativa de hemolinfa de pequenos artrópodes usando Laodelphax striatellus (a cigarrinha marrom pequena, SBPH) como modelo de pesquisa, já que este artrópode é o principal vetor do vírus da listra de arroz (VSR). Neste protocolo, o processo começa beliscando suavemente uma perna do artrópode congelado com pinças de ponta fina e pressionando a hemolinfa para fora da ferida. Em seguida, uma micropipeta simples composta por um capilar e um bulbo de pipeta é usada para coletar a hemolinfa transudativa da ferida de acordo com o princípio das forças capilares. Finalmente, a hemolinfa coletada pode ser dissolvida em um tampão específico para estudo posterior. Este novo método de coleta de hemolinfa de pequenos artrópodes é uma ferramenta útil e eficiente para futuras pesquisas sobre arbovírus e interações vetor-vírus.

Introdução

Tanto os vírus animais quanto os vegetais podem ser transmitidos por artrópodes, e esses vírus representam uma grave ameaça à saúde humana e causam enormes perdas econômicas na agricultura 1,2,3. É importante ressaltar que a hemolinfa dos artrópodes, que serve como sistema circulatório e um elemento vital do sistema imunológico nos artrópodes, desempenha um papel importante na regulação da transmissão das arbovirais. Os vírus adquiridos através do intestino dos artrópodes são transportados para outros tecidos somente após escaparem com sucesso do ambiente adverso da hemolinfa....

Protocolo

1. Criação de insetos

  1. Elevar os PBPs utilizados neste experimento em mudas de arroz (Oryza sativa cv. Nipponbare). Plantar 20 mudas de arroz em estufa (65 mm x 200 mm) e crescer a 25 °C sob fotoperíodo de 16 h claro/8 h escuro.

2. Dissecção das SBPHs para coleta de hemolinfa

  1. Coloque os SBPHs em um tubo de centrífuga e coloque-os em um banho de gelo por 10-30 min.
    NOTA: Não coloque os SBPHs no banho de gelo por menos de 10 min, ou os insetos podem reviver.
  2. Coloque um SBPH congelado em uma lâmina de vidro (ver Tabela de Materiais) sob um estereomicroscópio (ver ....

Resultados Representativos

Modelo de micropipeta e coleta de hemolinfa
Desenvolvemos uma micropipeta simples cuja ação é baseada nas forças capilares do tubo capilar. A micropipeta é composta por um tubo capilar e um bulbo de pipeta (Figura 1A). Os tubos capilares estão disponíveis em diferentes tamanhos de volume, variando de 1 μL a 20 μL, e os volumes dos tubos capilares são selecionados de acordo com as necessidades. Tubos capilares com volumes menores não são sugeridos, pois as aber.......

Discussão

A hemolinfa é o meio do sistema circulatório nos artrópodes, e os arbovírus só podem invadir outros tecidos dos artrópodes se forem capazes de sobreviver ao ambiente hostil da hemolinfa. A coleta de uma amostra de hemolinfa de alta qualidade é o primeiro passo para estudar as interações vetor-vírus que ocorrem na hemolinfa. Tem sido relatado que a hemolinfa do inseto pode ser obtida de vários locais do corpo do inseto, incluindo uma ferida na perna dianteira, uma pequena incisão na área da cabeça ou uma fer.......

Divulgações

Os autores declaram não haver conflitos de interesse.

Agradecimentos

Este trabalho foi apoiado pelo Programa Nacional de Pesquisa e Desenvolvimento da China (No. 2022YFD1401700) e pela National Science Foundation of China (No. 32090013 e No. 32072385).

....

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
10% SDS-PAGE protein gelBio-rad4561035Protein separation and detection
4% paraformaldehydeSolarbioP1110For fixation of the cells or tissues 
Bradford dye reagentBio-rad5000205Protein concentration detection
CapillaryHirschmann9000101For collecting hemolymph
Cell counting chamberACMECAYA0810Hemocytes counting
Glass slideGitoglas10127105AFor holding insects
Glass slide coated with silaneSigmaS4651-72EAFor holding microscope samples
Gold antifade reagent with DAPIInvitrogenP36935Nucleus staining
Microscope cover glassGitoglas10212424CFor microscopic observation
Pipette bulbHirschmann9000101For collecting hemolymph
Prism 8.0 softwareGraphPad Software/Statistical analyses
Stereomicroscope MoticSMZ-168For insect dissection
TweezersTianldP5622For insect dissection
Zeiss inverted microscopeZeissObserver Z1Hemocytes observation

Referências

  1. Hogenhout, S. A., Ammar el, D., Whitfield, A. E., Redinbaugh, M. G. Insect vector interactions with persistently transmitted viruses. Annual Review of Phytopathology. 46, 327-359 (2008).
  2. Ray, S., Casteel, C. L. Effector-mediated plant-vir....

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