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Neste Artigo

  • Resumo
  • Resumo
  • Introdução
  • Protocolo
  • Resultados Representativos
  • Discussão
  • Divulgações
  • Agradecimentos
  • Materiais
  • Referências
  • Reimpressões e Permissões

Resumo

Este protocolo descreve métodos para preparar células de fibras periféricas, maduras e nucleares do cristalino ocular para coloração por imunofluorescência para estudar interdigitações complexas célula-célula e a arquitetura da membrana.

Resumo

O cristalino é um órgão transparente e elipsoide na câmara anterior do olho que muda de forma para focalizar finamente a luz na retina para formar uma imagem clara. A maior parte desse tecido é composta por células fibrosas especializadas e diferenciadas que possuem secção transversal hexagonal e se estendem dos polos anterior para posterior do cristalino. Essas células longas e magras são fortemente opostas às células vizinhas e têm interdigitações complexas ao longo do comprimento da célula. As estruturas intertravadas especializadas são necessárias para as propriedades biomecânicas normais do cristalino e têm sido extensivamente descritas usando técnicas de microscopia eletrônica. Este protocolo demonstra o primeiro método para preservar e imunomanchar singular, bem como feixes de células de fibra de lente de camundongo para permitir a localização detalhada de proteínas dentro dessas células de forma complexa. Os dados representativos mostram a coloração das células periféricas, diferenciadoras, maduras e de fibras nucleares em todas as regiões do cristalino. Este método pode ser potencialmente utilizado em células de fibras isoladas de lentes de outras espécies.

Introdução

O cristalino é um tecido límpido e ovoide, na câmara anterior do olho, composto por dois tipos celulares, células epiteliais efibras1 (Figura 1). Existe uma monocamada de células epiteliais que recobre o hemisfério anterior do cristalino. As células fibrosas são diferenciadas das células epiteliais e compõem a maior parte do cristalino. As células fibrosas altamente especializadas sofrem uma programação de alongamento, diferenciação e maturação, marcada por distintas mudanças na morfologia da membrana celular da periferia do cristalino para o centro do cristalino2,3,4,5,6,7,8,9,10,11,12

Protocolo

Os camundongos foram cuidados com base em um protocolo animal aprovado pelo Comitê Institucional de Cuidados e Uso de Animais da Indiana University Bloomington. Os camundongos utilizados para gerar dados representativos foram animais controle (selvagem) no fundo C57BL6/J, fêmeas e com 8-12 semanas de idade. Camundongos machos e fêmeas podem ser usados para este experimento, já que é muito improvável que o sexo dos camundongos afete o resultado do experimento.

1. Dissecção e descapsulação do cristalino

  1. Eutanasiar camundongos seguindo o "Guia para o Cuidado e Uso de Animais de Laboratório" do National Institutes of ....

Resultados Representativos

As células de fibras do cristalino são preparadas a partir do córtex do cristalino (fibras diferenciadoras e fibras maduras) e do núcleo, e as células são coradas com faloidina para F-actina e WGA para a membrana celular. Uma mistura de feixes de células ou fibras de lente única (Figura 3) são observadas e imageadas. A partir do córtex do cristalino, encontram-se dois tipos de células (Figura 3A). As células de fibra diferenciadoras na periferia do c.......

Discussão

Este protocolo demonstrou os métodos de fixação, preservação e imunomarcação que preservam fielmente a morfologia da membrana 3D de feixes ou células de fibras do cristalino singular de várias profundidades no cristalino. As fibras coradas do cristalino são comparadas com preparações de MEV que têm sido usadas há muito tempo para estudar a morfologia das células das fibras do cristalino. Os resultados mostram estruturas de membrana comparáveis entre as duas preparações. A ME continua sendo o padrão-our.......

Divulgações

Os autores não têm nada a revelar.

Agradecimentos

Este trabalho foi financiado pelo processo R01 EY032056 (para CC) do Instituto Nacional de Olhos. Os autores agradecem à Dra. Theresa Fassel e Kimberly Vanderpool do Scripps Research Core Microscopy Facility por sua assistência com as imagens do microscópio eletrônico.

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Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
100% Triton X-100FisherScientificBP151-500
60mm plateFisherScientificFB0875713A
16% paraformaldehydeElectron Microscopy Sciences15710
10X phosphate buffered salineThermoFisher70011-044
1X phosphate buffered salineThermoFisher14190136
48-well plateCytoOneCC7672-7548
Cover slips (22 x 40 mm)FisherScientific12-553-467
Curved tweezersWorld Precision Instruments501981
Dissection microscopeCarl ZeissStereo Discovery V8
Fine tip straight tweezersElectron Microscopy Sciences72707-01
Fisherbrand Superfrost Plus Microscope SlidesFisherScientific12-550-15
LSM 800 confocal microscope with Airyscan (63X) and Zen 3.5 SoftwareCarl Zeiss
Nail polish
Normal donkey serumJackson ImmunoResearch017-000-121
Phalloidin (rhodamine)ThermoFisherR415
Primary antibody
Scalpel Feather Disposable, steril, No. 11VWR76241-186
Secondary antibody
Straight forcepsWorld Precision Instruments11252-40
Thermo Scientific Nunc MicroWell MiniTrays (dissection tray)FisherScientific12-565-154
Ultra-fine scissorsWorld Precision Instruments501778
VECTASHIELD Antifade Mounting Medium with DAPIVector LaboratoriesH-1200
Wheat germ agglutinin (fluorescein)Vector LaboratoriesFL-1021-5

Referências

  1. Lovicu, F. J., McAvoy, J. W. Growth factor regulation of lens development. Developmental Biology. 280 (1), 1-14 (2005).
  2. Kuszak, J., Alcala, J., Maisel, H. The surface morphology of embryonic and adult chick lens-fiber cells.

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