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Este protocolo descreve e compara dois métodos representativos para diferenciar hiPSCs em células estromais mesenquimais (CTMs). O método da monocamada é caracterizado por menor custo, operação mais simples e diferenciação osteogênica mais fácil. O método dos corpos embrionários (BEs) é caracterizado por menor consumo de tempo.
As células estromais mesenquimais (CTMs) são células-tronco pluripotentes adultas que têm sido amplamente utilizadas na medicina regenerativa. Como as CTMs derivadas de tecidos somáticos são restritas por doação limitada, variações de qualidade e biossegurança, nos últimos 10 anos houve um grande aumento nos esforços para gerar CTMs a partir de células-tronco pluripotentes induzidas por humanos (hiPSCs). Esforços passados e recentes na diferenciação de hiPSCs em CTMs têm se centrado em torno de duas metodologias de cultura: (1) a formação de corpos embrionários (BEs) e (2) o uso de cultura de monocamadas. Este protocolo descreve esses dois métodos representativos na derivação de CTM de hiPSCs. Cada método apresenta suas vantagens e desvantagens, incluindo tempo, custo, capacidade de proliferação celular, expressão de marcadores de CTM e sua capacidade de diferenciação in vitro. Esse protocolo demonstra que ambos os métodos podem derivar CTMs maduras e funcionais de hiPSCs. O método monocamada é caracterizado por menor custo, operação mais simples e diferenciação osteogênica mais fácil, enquanto o método EB é caracterizado por menor consumo de tempo.
As células estromais mesenquimais (CTMs) são células-tronco pluripotentes adultas derivadas do mesoderma1. As CTMs estão presentes em quase todos os tecidos conjuntivos2. Desde que as CTMs foram descobertas na década de 1970 e isoladas com sucesso da medula óssea em 1987 por Friedenstein et al.3,4,5, uma variedade de tecidos somáticos humanos (incluindo fetais e adultos) tem sido usada para isolar CTMs, como osso, cartilagem, tendão, músculo, tecido adiposo e estroma de suporte hematopoético 1,....
1. Manutenção de hiPSCs
Seguindo o protocolo (Figura 1A), as hiPSCs foram diferenciadas em CTMs pelos métodos de formação de EB e cultura de monocamada. Durante a diferenciação, as células apresentaram diferentes morfologias representativas (Figura 1B,C).
Como mostrado na Figura 1B, as colônias de hiPSCs exibem morfologia compacta típica antes da diferenciação, com uma borda clara composta por células.......
Nesse protocolo, foram examinados dois métodos representativos de diferenciação das hiPSCs em CTMs20,21,22,23,24,25,26,27,28,30. Ambos os métodos foram capazes de derivar CTMs a parti.......
Os autores não têm nada a revelar.
Somos extremamente gratos a todos os membros do Mao e Hu Lab, do passado e do presente, pelas interessantes discussões e grandes contribuições para o projeto. Somos gratos ao Centro Nacional de Pesquisa Clínica em Saúde Infantil pelo grande apoio. Este estudo foi financiado pela Fundação Nacional de Ciências Naturais da China (U20A20351 para Jianhua Mao, 82200784 para Lidan Hu), a Fundação de Ciências Naturais da Província de Zhejiang da China (No. LQ22C070004 a Lidan Hu).
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Alizarin red staining kit | Beyotime Biotechnology | C0148S | |
Anti-human-CD105 (PE) | Biolegend | 323206 | |
Anti-human-CD34 (FITC) | Biolegend | 343503 | |
Anti-human-CD45 (APC) | Biolegend | 304011 | |
Anti-human-CD73( APC) | Biolegend | 344006 | |
Anti-human-CD90 (FITC) | Biolegend | 328108 | |
Ascorbic acid | Solarbio | A8100 | |
BMP-6 | Novoprotein | C012 | |
Carbon dioxide level shaker | Crystal | CO-06UC6 | |
Compensation Beads | BioLegend | 424601 | |
CryoStor CS10 | STEMCELL Technology | 07959 | |
Dexamethasone | Beyotime Biotechnology | ST1254 | |
DMEM/F12 medium | Servicebio | G4610 | |
Fetal bovine serum | HAKATA | HS-FBS-500 | |
FGF2 | Stemcell | 78003.1 | |
Gelatin | Sigma-Aldrich | G2500-100G | |
GlutaMAX | Gibco | 35050061 | |
human IgG1 isotype control APC | BioLegend | 403505 | |
human IgG1 isotype control FITC | BioLegend | 403507 | |
human IgG1 isotype control PE | BioLegend | 403503 | |
Human TGF-β1 | Stemcell | 78067 | |
Human TruStain FcX | BioLegend | 422301 | |
IBMX | Beyotime Biotechnology | ST1398 | |
Indomethacin | Solarbio | SI9020 | |
Insulin | Beyotime Biotechnology | P3376 | |
iPSC maintenance medium | STEMCELL Technology | 85850 | |
ITS Media Supplement | Beyotime Biotechnology | C0341-10mL | |
Matrigel, growth factor reduced | BD Corning | 354230 | |
Oli Red O staining kit | Beyotime Biotechnology | C0158S | |
Proline | Solarbio | P0011 | |
Sodium pyruvate | ThermoFisher | 11360-070 | |
TGFβ3 | Novoprotein | CJ44 | |
Toluidine blue staining kit | Solarbio | G2543 | |
TrypLE Express Enzyme(1x) | Gibco | 12604013 | |
Ultra-Low Attachment 6 Well Plate | Costar | 3471 | |
Versene | Gibco | 15040-66 | |
Y-27632 | Stemcell | 72304 | |
α-MEM | Hyclone | SH30265 | |
β-glycerophosphate | Solarbio | G8100 |
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