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Neste Artigo

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Resumo

Este protocolo descreve o procedimento para induzir a inflamação da acne na pele de ratos com ácido oleico e Cutibacterium acnes.

Resumo

A acne vulgar é uma condição crônica prevalente da pele caracterizada pela presença de comedões, pápulas e pústulas no rosto, pescoço e tórax. Para simular a inflamação da acne vulgar, este protocolo detalha uma abordagem para estabelecer um modelo composto de roedor de acne induzindo inflamação da acne em orelhas de ratos usando ácido oleico e Cutibacterium acnes (C. acnes). Os ratos foram divididos aleatoriamente em quatro grupos: grupo controle normal (CN), orelhas tratadas com ácido oleico (OA), orelhas tratadas com C . acnes (C. acnes), orelhas tratadas com ácido oleico e C. acnes (OA + C. acnes). Para mimetizar a produção excessiva de sebo, o ácido oleico foi espalhado nas orelhas de ratos dos grupos OA e OA + C. acnes por 25 dias.

Dos dias 21 a 25, a suspensão de C. acnes foi injetada por via intradérmica nas orelhas de ratos dos grupos C. acnes e OA + C. acnes para agravar a inflamação da acne. A espessura da orelha foi medida semanalmente como um indicador da gravidade da inflamação. Foram realizadas observação macroscópica, coloração de hematoxilina e eosina e imuno-histoquímica (IHQ) e os resultados mostraram que as orelhas do grupo OA e do grupo OA + C. acnes estavam espessadas e endurecidas, acompanhadas de eritema e presença de comedões. Além disso, pápulas foram observadas nos grupos C. acnes e OA + C. acnes . A histopatologia exibiu hiperqueratinização e infundíbulo expandido dos folículos pilosos nos grupos OA e OA + C. acnes . Infiltração de células inflamatórias e abscessos foram encontrados na derme dos grupos C. acnes e OA + C. acnes . Os resultados da IHQ confirmaram níveis aumentados de fator de necrose tumoral (TNF)-α na derme dos grupos C. acnes e OA + C. acnes . Todos os resultados acima indicaram coletivamente o estabelecimento bem-sucedido do modelo composto de roedores de acne.

Introdução

A acne vulgar é uma doença cutânea crônica comum caracterizada pela presença de comedões, pápulas e pústulas na face, pescoço e tórax, que, em casos graves, podem evoluir para nódulos, cistos e cicatrizes permanentes1. Estudos epidemiológicos relatam que a acne afeta 9,4% da população global, enquanto seus sintomas resultantes representam graves desafios físicos e psicossociais 2,3.

A patogênese da acne é multifatorial, incluindo quatro processos críticos: excesso de produção de sebo, formação de comedões, colonização folicular pela microbiota da pele e liberação de mediadores inflamatórios ao redor da unidade pilossebácea 4,5. O aumento da secreção de sebo, resultando no acúmulo de excesso de ácidos graxos livres insaturados (AGNIs), contribui para a reprodução anormal da microbiota da pele, uma das quais é o Cutibacterium acnes, como mostrado em estudos genômicos6. Enquanto isso, a microbiota da pele decompõe o sebo e aumenta a concentração de UFFAs, levando a um círculo vicioso7. Além disso, o excesso de UFFAs causa hiperqueratinização nos folículos pilosos, o que, por sua vez, desencadeia a acne8. A microbiota da pele e o aumento do sebo ativam os receptores do tipo Toll (TLRs) para produzir múltiplas citocinas pró-inflamatórias, como a interleucina (IL)-1 e o TNF-α 9,10. Essa cascata de inflamação, juntamente com o aumento do sebo e o crescimento excessivo de micróbios, culmina em hiperqueratose pronunciada do folículo piloso e no aparecimento de acne11.

O rápido desenvolvimento no campo da pesquisa da acne e os requisitos clínicos relacionados levaram à criação de uma série de modelos animais de inflamação da acne na orelha de rato, nas costas de ratos ou camundongos e na orelha de coelho 12,13,14,15. Os métodos incluem injeção intradérmica de C. acnes, a aplicação de óleos na pele para simular a secreção anormal das glândulas sebáceas e hiperqueratinização, ou uma combinação de ambos para acelerar a inflamação da pele para formar acne 16,17,18,19. No entanto, o uso e a dosagem de agentes químicos e agentes biológicos variam entre estudos anteriores, o que pode confundir os pesquisadores que pretendem estabelecer um modelo adequado de acne. Este estudo teve como objetivo estabelecer um método fácil de operar e eficaz para formar um modelo composto de roedor de acne e fornecer uma referência de modelo para pesquisadores que estudam acne vulgar.

Protocolo

Este protocolo recebeu aprovação ética da Universidade de Medicina Chinesa de Pequim (No.2023033103-1183). Doze ratos Sprague-Dawley machos (peso, 208 g ± 5 g) foram utilizados neste protocolo e divididos em quatro grupos: grupo NC (n = 3), grupo OA (n = 3), grupo C. acnes (n = 3) e grupo OA + C. acnes (n = 3).

1. Desenvolvendo o modelo de acne

  1. Meça e registre a espessura das orelhas de rato usando um paquímetro eletrônico (consulte a Tabela de Materiais) antes da modelagem.
    1. Coloque a mandíbula externa do paquímetro eletrônico no ponto médio da borda externa da orelha e estenda-a até o canal auditivo. Registre a espessura de 2/3 pontos e a espessura de 1/2 pontos ao longo da linha. Meça cada ponto 3x e calcule os valores médios da espessura de dois pontos para ser considerada a espessura da orelha.
  2. Incline a cabeça do rato para um lado, faça a orelha voltada para cima e aplique 50 μL de ácido oleico (ver Tabela de Materiais) nos lados ventral e dorsal da orelha uniformemente, uma vez ao dia, por 25 dias.
  3. Do dia 21 ao dia 25, diariamente antes da aplicação do ácido oleico, anestesiar os ratos com isoflurano a 4% e, em seguida, injetar 50 μL de suspensão de C. acnes 1 ×10 7 UFC (ver Tabela de Materiais) por via intradérmica na superfície ventral da orelha usando uma seringa de 1 mL equipada com uma agulha de 34 G ou 36 G (ver Tabela de Materiais).
    NOTA: Tome cuidado para evitar vasos sanguíneos no ouvido ao injetar por via intradérmica. É necessária uma microseringa com agulha de 34 G ou 36 G (ver Tabela de Materiais). Para garantir a injeção intradérmica adequada, a agulha deve ser perfurada em um ângulo de 10 a 15 graus, com uma profundidade de aproximadamente 1 mm.
  4. No dia 25, meça e registre a espessura das orelhas, conforme descrito na etapa 1.1.
    NOTA: O grupo OA foi esfregado apenas com ácido oleico, conforme descrito na etapa 1.2, e injetado com soro fisiológico do 21º ao 25º dia. O grupo C. acnes foi injetado apenas por via intradérmica por suspensão de C. acnes , conforme descrito na etapa 1.3. O grupo OA + C. acnes foi tratado com ácido oleico e suspensão de C. acnes , conforme descrito nas etapas 1.2 e 1.3.

2. Coleta e análise de tecidos

  1. No dia 26, depois que os ratos são sacrificados humanamente usando um método aprovado institucionalmente, perfure o tamanho fixo nas orelhas bilaterais com uma broca de anel de 8 mm.
  2. Mergulhe os tecidos da orelha em paraformaldeído a 4% por 24 h, seguido de inclusão em parafina e corte em fatias de 5 μm de espessura para coloração de hematoxilina e eosina (HE)20. Observe os cortes em um microscópio óptico e registre as alterações patológicas para avaliação de acompanhamento por um patologista. Atribua pontuações às alterações patológicas de acordo com a Tabela 1 (ver também Figura 1).
  3. Desparafinize, reidratie e aqueça as seções para recuperação de antígenos. Inativar peroxidases endógenas incubando com 0,3% de H2O2 em metanol por 15 min à temperatura ambiente.
  4. Lave as seções com solução salina tamponada com fosfato (PBS) e incube-as com BSA a 3% por 30 min em temperatura ambiente.
  5. Incubar as secções com anticorpo monoclonal TNF-α (diluição 1:800) (ver Tabela de Materiais) a 4 °C durante a noite.
  6. Lave as seções com PBS novamente e incube com anticorpo secundário conjugado com peroxidase de rábano (consulte a Tabela de Materiais) por 50 min.
  7. Após outra lavagem com PBS, aplique a mistura de 3,3'-diaminobenzidina (DAB) nas lâminas e monitore o processo de coloração ao microscópio, interrompendo a reação com PBS quando a intensidade desejada for atingida.
  8. Contra-core as seções com hematoxilina de Meyer por 1 min, enxágue-as com água corrente, desidrate e monte as seções. Observe os cortes ao microscópio e registre as alterações patológicas para avaliação de acompanhamento por um patologista.

3. Análise estatística

  1. Realize análises estatísticas.
  2. Apresente os dados como média ± desvio padrão. Acesse a normalidade de todos os dados usando o teste de Shapro-Wilke. Se seguir uma distribuição normal, use ANOVA unidirecional para avaliar diferenças significativas. Para dados não normalmente distribuídos, aplique o teste de Kruskal-Wallis seguido pelas comparações múltiplas de Dunn. Um valor de p menor que 0,05 é considerado estatisticamente significativo.

Resultados

Espessura e aparência da pele
Do dia 7 ao dia 21, as orelhas do grupo OA e do grupo OA + C. acnes foram significativamente mais espessas do que as dos grupos NC e C. acnes . No dia 25, as orelhas do grupo OA, grupo C. acnes e grupo OA + C. acnes eram significativamente mais espessas do que as do grupo NC (p < 0,05). A espessura média das orelhas durante o experimento é mostrada na Figura 2 e...

Discussão

Como a metodologia e os critérios de avaliação de um modelo de acne não eram claros, este protocolo teve como objetivo fornecer uma referência para os pesquisadores que estudam a acne. Devido ao pequeno tamanho da orelha do rato e à interferência causada pelo crescimento de pelos nas costas, o uso de creme depilatório e barbeador, a orelha do rato pode ser uma alternativa melhor para estabelecer um modelo de acne em roedores. Tentamos criar o modelo de acne na pele posterior de r...

Divulgações

Todos os autores declaram não ter conflitos de interesse.

Agradecimentos

Este estudo foi apoiado pela Fundação Nacional de Ciências da Natureza da China (nº 81974572 e nº 82274523) e pela Universidade de Medicina Chinesa de Pequim (nº 202310026002).

Materiais

NameCompanyCatalog NumberComments
Anaero-indicator Mitsubishi, JapanC-22
AnaeroPackMitsubishi, JapanC-11, C-41
Columbia blood agar plateBeNa Cuture Collection, ChinaBNCC330605
Constant temperature incubatorSHANGCHENG, China303-0
Cotton swabHYNAUT, China_
Cutibacterium acnesBeNa Cuture Collection, ChinaBNCC330605
Dako REAL EnVision Detection System, Peroxidase/DAB+, Rabbit/MouseDAKO, DenmarkK5007
disposable sterile injection needleZhejiang Oujian Medical Apparatus, China_
Electronic scaleJINXUAN, ChinaA017
Electronic vernier caliperDeli, ChinaDL90150
Oleic acid (Analytical reagent, AR)Fangzheng, China_
Sodium chloride injectionCR Double CRANE, ChinaY2212241
SPSS StatisticsIBM, USA26.0
sterile hypodermic syringesShandong weigao group medical polymer, China_
TNF Alpha Monoclonal antibodyProteintech Group,int, USA60291-1-lg

Referências

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