É necessária uma assinatura da JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou comece sua avaliação gratuita.
Este protocolo descreve um ensaio baseado em BRAKET para medir as interações da quinase CRAF com proteínas 14-3-3 em células vivas. O protocolo descreve as etapas para preparar as células, ler as emissões de BRET e analisar dados. Um exemplo de resultado com identificação de controles apropriados e solução de problemas para otimização de ensaio também é apresentado.
O CRAF é um efetor primário das GTPases RAS e desempenha um papel crítico na tumorigênese de vários cânceres causados por KRAS. Além disso, o CRAF é um hotspot para mutações germinativas, que causam a RASopatia do desenvolvimento, síndrome de Noonan. Todas as quinases RAF contêm vários locais de ligação dependentes de fosforilação para proteínas reguladoras 14-3-3. A ligação diferencial de 14-3-3 a esses locais desempenha papéis essenciais na formação de dímeros RAF ativos na membrana plasmática sob condições de sinalização e na manutenção da autoinibição do RAF em condições quiescentes. Compreender como essas interações são reguladas e como elas podem ser moduladas é fundamental para identificar novas abordagens terapêuticas que visam a função da RAF. Aqui, descrevo um ensaio baseado em transferência de energia de ressonância de bioluminescência (BRET) para medir as interações de CRAF com proteínas 14-3-3 em células vivas. Especificamente, este ensaio mede as interações de CRAF fundido a um doador de Nano luciferase e 14-3-3 fundido a um aceitador de tag Halo, onde a interação de RAF e 14-3-3 resulta na transferência de energia doador para aceitador e na geração do sinal BRET. O protocolo mostra ainda que esse sinal pode ser interrompido por mutações que impedem a ligação do 14-3-3 a cada um de seus locais de ancoragem de alta afinidade da RAF. Este protocolo descreve os procedimentos para semear, transfectar e replaquear as células, juntamente com instruções detalhadas para ler as emissões de CHUT, realizar análises de dados e confirmar os níveis de expressão de proteínas. Além disso, são fornecidos exemplos de resultados de ensaios, juntamente com etapas de otimização e solução de problemas.
As quinases RAF (ARAF, BRAF e CRAF) são os efetores diretos das GTPases RAS e os membros iniciadores da cascata de quinase RAF-MEK-ERK pró-proliferativa/pró-sobrevivência. Estudos recentes mostraram que a expressão de CRAF desempenha um papel fundamental na tumorigênese de vários cânceres causados por KRAS, incluindo câncer de pulmão de células não pequenas e adenocarcinoma ductal pancreático 1,2,3,4,5. Além disso, as mutações germinativas do CRAF causam uma forma particularmente grave da RASopatia, a síndr....
NOTA: Este ensaio é realizado em células de 293 pés. Uma linha epitelial bem caracterizada e facilmente transfectável derivada de células renais embrionárias humanas. Uma única placa de cultura confluente de 10 cm dessas células normalmente fornece células suficientes para semear 20 poços de placas de cultura de tecidos de 6 poços. As etapas 1 a 3 devem ser executadas usando técnica estéril em uma cabine de segurança biológica.
1. Semeadura celular (dia 1)
NOTA: Nesta etapa, as células são destacadas da(s) placa(s) de cultura de tecidos, contadas e semeadas em placas de cultura de tecidos de 6 poço....
Quando realizada conforme descrito neste protocolo (Figura 2), a interação de Nano-CRAFWT e 14-3-3ζ-Halo deve produzir razões BRET corrigidas de 50-60 mBU (Figura 3A; Tabela Suplementar 1). O CRAF contém dois locais de ancoragem 14-3-3 dependentes de fosforilação, o local N 'e o local C' (Figura 1) 8. Portanto, os controles apropriados para reduzir a ligação de CRAF: 14-3-.......
Estudos anteriores mostraram que as proteínas 14-3-3 desempenham papéis críticos na ativação e inibição das quinases RAF. Compreender como esses eventos de ligação são regulados e os efeitos da modulação dessas interações na sinalização RAF e na oncogênese orientada por RAF pode revelar novas vulnerabilidades terapêuticas que visam a função CRAF. No entanto, o ciclo de ativação de Raf é suportado por uma infinidade de proteínas associadas, modificações pós-traducionais e mudanças na localizaç.......
Nada a divulgar.
Este projeto foi financiado em parte com fundos federais do Instituto Nacional do Câncer, Institutos Nacionais de Saúde, sob o número de projeto ZIA BC 010329.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
Antibodies | |||
HaloTag® mouse monoclonal antibody | Promega | G9211 | Antibody for detecting HaloTag tagged proteins by immunoblot |
NanoLuc® mouse monoclonal antibody | R&D Systems | MAB10026 | Antibody for detecting Nano-tagged proteins by immunoblot |
CRAF mouse monoclonal antibody (E10) | Santa Crus Biotechnology | sc-7267 | Antibody directly detecting CRAF proteins by immunoblot |
ECL anti-mouse HRP secondary antibody | Amersham | NA931-1ML | Secondary HRP conjugated mouse antibody (from sheep) |
Reagents | |||
X-tremeGENE™ 9 | Roche/Sigma | 6365809001 | |
NanoBRET™ kit | Promega | N1661 | NanoBRET kit containing Halo 618 ligand and NanoGlo (nanoluciferase) substrate |
DPBS, without Ca++ and Mg++ | Quality Biologicals | 114-057-101 | |
Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red | Life Technologies | 25300120 | |
DMEM cell culture media | Life Technologies | 11995073 | High glucose, L-glutamine, phenol red, sodium pyruvate; without HEPES, suppliment media with 10% FBS, 2 mM L-glutamine and 100U penicillin-streptomycin |
L-Glutamine (200 mM) | Life Technologies | 25030164 | |
Penicillin-Streptomycin (10,000 U/mL) | Life Technologies | 15140163 | |
Opti-MEM™ I reduced serum media | Gibco | 31985062 | For cell transfection |
Opti-MEM reduced serum media, no phenol red | Gibco | 11058021 | For replating cells on Day 3. Supplement with 2 mM L-glutamine and 100U penicillin-streptomycin, along with 10% FBS (where indicated). |
Invitrogen Trypan Blue Stain | Thermo Scientific | T10282 | |
NP40 lysis buffer | N/A | N/A | 20 mM Tris (pH 8.0), 137mM NaCl, 10% glycerol, NP40 alternative (Milipore, Cat# 492016). Store at 4 degrees C.. Add the following protease and phosphatase immediately prior to use: 20 µM leupeptin, 0.5 mM sodium orthovanidate, 0.15 U/mL, 1mM PMSF. |
5x gel sample buffer | N/A | N/A | 240 mM Tris (pH 8.0), 9.5% SDS, 30% glycerol, 500mM DTT, 3mM bromophenol blue. Store at -20 degrees C. |
Cell lines | |||
293FT cells (human) | Thermo Scientific | R70007 | |
DNA vectors | |||
pCMV5-Nano-CRAF WT and mutant | N/A | N/A | |
pCMV5-14-3-3ζ-Halo | N/A | N/A | |
Equipment | |||
EnVision 2104 Multimode Plate Reader | PerkinElmer 2104 | 2104-0010 | 600LP NanoBRET & M460/50 nm NanoBRET emmisions filters, Luminescence 404 mirror, 6.5 mm measurement height and 0.1 s measurement time |
Invitrogen Countess™ II Automated Cell Counter | Thermo Scientific | AMQAX1000 | |
ThermoFisher E1-ClipTip™ Multichannel Pipettor | Thermo Scientific | 4672070 | |
Software | |||
GraphPad Prism (version 10.0.3) | GraphPad | www.graphpad.com | |
Other | |||
ThermoFisher ClipTip Multichannel pipette tips | Thermo Scientific | 94410153 | |
Reagent Reservoir, 25 mL Divided, Sterile | Thomas Scientific | 1228K16 | |
Perkin Elmer 384-well CulturPlate™ | PerkinElmer | 6007680 | White, polystyrene, tissue culture treated |
Countess Cell Counting Chamber Slides | Thermo Scientific | C10228 |
Solicitar permissão para reutilizar o texto ou figuras deste artigo JoVE
Solicitar PermissãoThis article has been published
Video Coming Soon
SOBRE A JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos os direitos reservados