É necessária uma assinatura da JoVE para visualizar este conteúdo. Faça login ou comece sua avaliação gratuita.
Este protocolo descreve o projeto, a criação e a aplicação de fosfatases reguladas por rapamicina. Este método fornece alta especificidade e controle temporal rígido da ativação da fosfatase em células vivas.
As tirosina fosfatases são uma importante família de enzimas que regulam funções fisiológicas críticas. Eles são frequentemente desregulados em doenças humanas, tornando-os alvos importantes de estudos biológicos. Ferramentas que permitem a regulação da atividade da fosfatase são fundamentais na dissecação de sua função. As abordagens tradicionais, como a superexpressão de mutantes negativos constitutivamente ativos ou dominantes, ou a regulação negativa usando siRNA, carecem de controle temporal. Os inibidores da fosfatase geralmente têm baixa especificidade e só permitem que os pesquisadores determinem quais processos são afetados pela inibição da fosfatase.
Desenvolvemos uma abordagem quimiogenética, o sistema regulado por rapamicina (RapR), que permite a regulação alostérica de um domínio catalítico da fosfatase que permite um controle temporal rígido da ativação da fosfatase. O sistema RapR consiste em um domínio iFKBP inserido em um sítio alostérico na fosfatase. A dinâmica estrutural intrínseca do domínio RapR interrompe o domínio catalítico, levando à inativação da enzima. A adição de rapamicina medeia a formação de um complexo entre iFKBP e uma proteína FRB co-expressa, que estabiliza iFKBP e restaura a atividade do domínio catalítico da fosfatase.
Este sistema fornece alta especificidade e controle temporal rígido da ativação da fosfatase em células vivas. Os recursos exclusivos deste sistema permitem a identificação de eventos transitórios e a interrogação de vias de sinalização individuais a jusante de uma fosfatase. Este protocolo descreve diretrizes para o desenvolvimento de uma RapR-fosfatase, sua caracterização bioquímica e a análise de seus efeitos na sinalização a jusante e na regulação da morfodinâmica celular. Ele também fornece uma descrição detalhada de uma estratégia de engenharia de proteínas, ensaios in vitro que analisam a atividade da fosfatase e experimentos de imagem de células vivas que identificam alterações na morfologia celular.
As proteínas tirosina fosfatases são uma família crítica de proteínas envolvidas em uma infinidade de eventos de sinalização celular. Eles demonstraram desempenhar um papel fundamental na regulação da proliferação, migração e apoptose celular 1,2,3. Consequentemente, a desregulação das proteínas tirosina fosfatases leva a uma variedade de doenças e distúrbios debilitantes 4,5,6,7. O estudo da função fisiológica das ....
1. Desenho de RapR-fosfatases
A Figura 4 demonstra os resultados que podem ser esperados do ensaio de atividade da fosfatase à base de paxilina. Neste experimento, a atividade da fosfatase Shp2 negativa constitutivamente ativa e dominante foi comparada com a do RapR-Shp2 ativo e inativo usando fosfo-paxilina como leitura. As construções Shp2 foram imunoprecipitadas e submetidas ao ensaio de atividade conforme descrito no protocolo. As leituras de fosfo-paxilina para Shp2 constitutivam.......
Este protocolo fornece etapas detalhadas para o desenvolvimento, caracterização e aplicação de fosfatases quimiogeneticamente controladas. A ferramenta RapR-Shp2 depende de um interruptor regulado por rapamicina inserido no domínio catalítico Shp2. A força desta ferramenta é a especificidade e o controle temporal rígido da atividade da fosfatase. A ferramenta é aplicável a outras fosfatases e, em combinação com a tecnologia RapR-TAP descrita anteriormente, permite a reconstr.......
Os autores não têm conflitos de interesse a divulgar.
Os autores agradecem à Dra. Jordan Fauser por sua contribuição para o desenvolvimento do RapR-Shp2 e protocolos associados. O trabalho foi apoiado por um prêmio 5R35GM145318 do NIGMS, um prêmio R33CA258012 do NCI e um prêmio P01HL151327 do NHLBI.
....Name | Company | Catalog Number | Comments |
#1.5 Glass Coverslips 25 mm Round | Warner Instruments | 64-0715 | |
1.5 mL Tubes | USA Scientific | cc7682-3394 | |
2x Laemmli Buffer | For 500 mL: 5.18 g Tris-HCL, 131.5 mL glycerol, 52.5 mL 20% SDS, 0.5 g bromophenol blue, final pH 6.8 | ||
4-20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel | Biorad | 4561096 | |
5x Phusion Plus Buffer | Thermo Scientific | F538L | |
A431 Cells | ATCC | CRL-1555 | |
Agarsose | GoldBiotech | A-201 | |
Attofluor Cell Chamber | invitrogen | A7816 | |
Benchmark Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio-products | 100-106 | Heat Inactivated Triple 0.1 µm sterile-filtered |
Brig 35,30 w/v % | Acros | 329581000 | |
BSA | GoldBiotech | A-420 | |
CellGeo | N/A | N/A | Published in 10.1083/jcb.201306067 |
CellMask Deep Red plasma membrane dye | invitrogen | c10046 | |
Colony Screen MasterMix | Genesee | 42-138 | |
DH5a competent cells | NEB | C2987H | |
DMEM | Corning | 15-013-CV | |
DMSO | Thermo Scientific | F-515 | |
DNA Ladder | GoldBio | D010-500 | |
dNTPs | NEB | N04475 | |
DpnI Enzyme | NEB | R01765 | |
DTT | GoldBio | DTT10 | DL-Dithiothreitol, Cleland's Reagents |
EGTA | Acros | 409910250 | |
Fibronectin from bovine plasma | Sigma | F1141 | |
FuGENE(R) 6 Transfection Reagent | Promega | E2692 | transfection reagent |
Gel extraction Kit | Thermo Scientific | K0692 | GeneJET Gel Extraction Kit |
Gel Green Nucleic Acid Stain | GoldBio | G-740-500 | |
Gel Loading Dye Purple 6x | NEB | B7024A | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | GlutaMAX-l (100x) 100 mL |
HEK 293T Cells | ATCC | CRL-11268 | |
HeLa Cells | ATCC | CRM-CCL-2 | |
HEPES | Fischer | BP310-500 | |
ImageJ Processing Software | N/A | N/A | |
Igepal CA-630 (NP40) | Sigma | I3021 | |
Imidazole Buffer | 25 mM Imidazole pH 7.2, 2.5 mM EDTA, 50 mM NaCl, 5 mM DTT | ||
KCl | Sigma | P-4504 | |
L-15 1x | Corning | 10-045-CV | |
LB Agar | Fisher | BP1425-2 | |
Lysis Buffer | 20 mM Hepes-KOH, pH 7.8, 50 mM KCl, 1 mM EGTA, 1% NP40 | ||
MATLAB | MathWorks | N/A | R 2022b update was used to run CellGeo functions |
Metamorph Microscopy Automation and Image Analysis Software | N/A | N/A | |
MgCl2 | Fisher Chemical | M33-500 | |
Mineral Oil | Sigma | M5310 | |
MiniPrep Kit | Gene Choice | 96-308 | |
Mini-PROTEAN TGX Precast Gels 12 well | Bio-Rad | 4561085 | |
Molecular Biology Grade Water | Corning | 46-000-CV | |
Multiband Polychroic Mirror | Chroma Technology | 89903BS | |
NaCl | Fisher Chemical | S271-3 | |
Olympus UPlanSAPO 40x objective | Olympus | N/A | |
PBS w/o Ca and Mg | Corning | 21-031-CV | |
PCR Tubes | labForce | 1149Z65 | 0.2 mL 8-Strip Tubes and Caps, Rigid Strip Individually Attached Dome Caps |
Phusion Plus DNA Polymerase | Thermo Scientific | F630S | |
Primers | IDT | ||
Protein-G Sepharose | Millipore | 16-266 | |
PVDF Membranes | BioRad | 1620219 | Immun-Blot PVDF/Filter Paper Sandwiches |
Rapamycin | Fisher | AAJ62473MF | |
0.25% Trypsin, 2.21 mM EDTA, 1x [-] sodium | Corning | 25-053-CI | |
Tris-Acetate-EDTA (TAE) 50x | Fischer | BP1332-1 | for electrophoresis |
Wash Buffer | 20 mM Hepes-KOH, pH 7.8, 50 mM KCl, 100 mM NaCl, 1 mM EGTA, 1% NP40 | ||
β-Mercaptoethanol | Fisher Chemical | O3446I-100 | |
Antibodies | |||
Anti-EGFR Antibody | Cell Signaling | 2232 | |
Anti-Erk 1/2 Antibody | Cell Signaling | 9102 | |
Anti-Flag Antibody | Millipore-Sigma | F3165 | |
Anti-GAPDH Antibody | invitrogen | AM4300 | |
Anti-GFP Antibody | Clontech | 632380 | |
Anti-mCherry Antibody | invitrogen | M11217 | |
Anti-paxillin Antibody | Thermo Fischer | BDB612405 | |
Anti-phospho-EGFR Y992 Antibody | Cell Signaling | 2235 | |
Anti-phospho-Erk 1/2 T202/Y204 Antibody | Cell Signaling | 9101 | |
Anti-phospho-paxillin Y31 Antibody | Millipore-Sigma | 05-1143 | |
Anti-phospho-PLCγ Y783 Antibody | Cell Signaling | 14008 | |
Anti-PLCγ Antibody | Cell Signaling | 5690 |
Solicitar permissão para reutilizar o texto ou figuras deste artigo JoVE
Solicitar PermissãoThis article has been published
Video Coming Soon
SOBRE A JoVE
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. Todos os direitos reservados