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Este protocolo descreve a aplicação de um domínio de interruptor alostérico ativado por luz azul (LightR) projetado para controle espaço-temporal reversível da atividade da proteína. Utilizando Src tirosina quinase como modelo, este estudo oferece um protocolo elaborado para desenvolver e caracterizar Src regulado por luz (LightR-Src). Isso demonstra a versatilidade dessa abordagem em todas as classes de enzimas.
A optogenética oferece o potencial de imitar o controle espaço-temporal complexo da atividade enzimática até uma resolução subcelular. No entanto, a maioria das abordagens optogenéticas geralmente enfrenta desafios significativos na integração de vários recursos em uma única ferramenta aplicável a uma ampla gama de proteínas-alvo. Alcançar um controle preciso sobre a cinética ON/OFF, garantir o mínimo de vazamento no escuro e demonstrar desempenho eficiente em células de mamíferos com precisão subcelular são alguns dos desafios mais comuns enfrentados neste campo. Uma solução promissora está na aplicação de domínios sensíveis à luz racionalmente projetados para controlar alostericamente a atividade da proteína. Usando essa estratégia, geramos um método optogenético combinando todas as características desejadas. A abordagem envolve a incorporação do módulo de comutação alostérica regulado por luz (LightR) na proteína-alvo para regular a atividade enzimática usando luz azul (465 nm). O domínio LightR é gerado pela ligação de dois domínios fotorreceptores Vivid (VVD), criando um grampo sensível à luz que pode ser incorporado a um pequeno loop flexível dentro do domínio catalítico de uma enzima. Em seu estado escuro, o grampo LightR está aberto, distorcendo assim o domínio catalítico da enzima e inativando-o. Após a exposição à luz azul, o domínio LightR fecha e restaura a estrutura e a atividade enzimática do domínio catalítico. Neste manuscrito, discutimos estratégias de design para gerar uma proteína quinase regulada por luz e demonstrar seu controle por luz azul, reversibilidade, cinética e regulação precisa no nível subcelular, permitindo uma precisão espaço-temporal apertada. Utilizando a tirosina quinase Src como modelo, apresentamos um protocolo para regular efetivamente a atividade da quinase LightR-Src. Também demonstramos a aplicabilidade do LightR em diferentes classes de enzimas, expandindo a utilidade do sistema de ferramentas na abordagem de questões mecanicistas de vias de sinalização em diferentes doenças.
A capacidade da célula de interpretar sinais externos e convertê-los em respostas específicas em contextos fisiológicos ou patológicos é dirigida por grupos dedicados de proteínas. A contribuição de qualquer proteína para essas respostas complexas é frequentemente definida por sua localização subcelular, nível de expressão e tempo de ativação transitória, sustentada ou oscilatória. Dissecar o papel desses parâmetros individuais na regulação da sinalização exige métodos capazes de replicar o intrincado controle espaço-temporal da atividade proteica no nível subcelular. Técnicas tradicionais, como manipulação genética e inibidores de pe....
1. Projeto e desenvolvimento do LightR (Figura 1)
O LightR-Src é projetado e gerado seguindo a estratégia descrita na Figura 1A,B. A análise bioquímica de LightR-Src acessa a fosforilação de substratos Src endógenos conhecidos, p130Cas (Y249)22 e paxilina (Y118)23 em resposta à luz azul a 60 min de iluminação contínua (Figura 2B). Notavelmente, nenhuma ativação de fundo da Src quinase é observada qua.......
Nosso estudo apresenta uma abordagem optogenética para a investigação de diversas vias de sinalização e demonstra sua ampla aplicabilidade na abordagem de diferentes questões biológicas. O sistema de ferramentas LightR oferece várias vantagens essenciais: (1) Regulação alostérica da atividade da proteína, (2) Controle temporal rígido da atividade que pode ser ajustado para alcançar diferentes cinéticas de ativação e inativação, (3) Resolução espacial da atividade no .......
Os autores não têm nada a divulgar.
Os autores agradecem ao Dr. Mark Shaaya por sua contribuição para o desenvolvimento de enzimas LightR e protocolos associados. pCAG-iCre foi um presente de Wilson Wong (plasmídeo Addgene # 89573), pcDNA3.1 Floxed-STOP mCherry foi um presente de Mositoshi Sato (plasmídeo Addgene # 122963), a construção bRaf-Venus com mutação V600E foi um presente do Dr. John O'Bryan (MUSC); O gene ERK2 do pCEFL-ERK2 (um presente do laboratório do Dr. Channing Der, UNC) foi clonado no backbone mCherry-C1 para obter o plasmídeo mCherry-ERK2; e pmiRFP670-N1 foi um presente de Vladislav Verkhusha (plasmídeo Addgene # 79987). O trabalho foi....
Name | Company | Catalog Number | Comments |
#1.5 Glass Coverslips 25 mm Round | Warner Instruments | 64-0715 | |
1.5 mL Tubes | USA Scientific | cc7682-3394 | |
2x Laemmli Buffer | For 500 mL: 5.18 g of Tris-HCL, 131.5 mL of glycerol, 52.5 mL of 20% SDS, 0.5 g of bromophenol blue, final pH 6.8 | ||
4-20% Mini-PROTEAN TGX Precast Gel | Biorad | 4561096 | |
5x Phusion Plus Buffer | Thermo Scientific | F538L | |
60 LED Microscope Ring Light | Boli Optics | ML46241324 | Blue LED, 60 mm diameter, 5 W |
Agarose | GoldBiotech | A-201 | |
Anti-Erk 1/2 Antibody | Cell Signaling | 9102 | |
Anti-GAPDH Antibody | invitrogen | AM4300 | |
Anti-GFP | Clontech | 632380 | |
Anti-mCherry Antibody | invitrogen | M11217 | |
Anti-MEK | Cell Signaling | 9122 | |
Anti-p130Cas | BD Biosciences | 610271 | |
Anti-paxillin | Cell Signaling | 2542 | |
Anti-phospho-Erk 1/2 T202/Y204 Antibody | Cell Signaling | 9101 | |
Anti-phospho-pY249 p130Cas | Cell Signaling | 4014 | |
Anti-phospho-Y118 Paxillin | Cell Signaling | 2541 | |
Anto-phospho-S217/221 MEK | Cell Signaling | 9121 | |
Arduino Compatable Power Supply | Corporate Computer | LJH -186 | |
Arduino Uno Rev3 | Arduino | A000066 | |
Attofluor Cell Chamber | invitrogen | A7816 | |
Benchmark Fetal Bovine Serum (FBS) | Gemini Bio-products | 100-106 | Heat Inactivated Triple 0.1 µm sterile-filtered |
bRaf-V600E-Venus | Gift from Dr. John O'Bryan, MUSC | ||
BSA | GoldBiotech | A-420 | |
Carbenicillin (Disodium) | Gold Biotechnology | C-103-25 | |
CellMask Deep Red plasma membrane dye | invitrogen | c10046 | |
Colony Screen MasterMix | Genesee | 42-138 | |
DH5a competent cells | NEB | C2987H | |
DMEM | Corning | 15-013-CV | |
DNA Ladder | GoldBio | D010-500 | |
dNTPs | NEB | N04475 | |
Dpn1 Enzyme | NEB | R01765 | |
DTT | GoldBio | DTT10 | DL-Dithiothreitol, Cleland's Reagents |
EGTA | Acros | 409910250 | |
FastLightR-bRaf-mVenus | Addgene | #162155 | |
Fibronectin from bovine plasma | Sigma | F1141 | |
FuGENE(R) 6 Transfection Reagent | Promega | E2692 | Transfection reagent |
Gel Green Nucleic Acid Stain | GoldBio | G-740-500 | |
Gel Loading Dye Purple 6x | NEB | B7024A | |
GeneJET Gel extraction Kit | Thermo Scientific | K0692 | Gel Extraction Kit |
GeneJET Plasmid Miniprep Kit | Thermo Scientific | K0502 | |
Glutamax | Gibco | 35050-061 | GlutaMAX-l (100x) 100 mL |
HEK 293T Cells | ATCC | CRL-11268 | |
HeLa Cells | ATCC | CRM-CCL-2 | |
HEPES | Fischer | BP310-500 | |
Iot Relay | Digital Loggers | DLI 705020645490 | AC/DC control relay for illumination |
Kanamycin Monosulfate | Gold Biotechnology | K-120-25 | |
KCl | Sigma | P-4504 | |
L-15 1x | Corning | 10-045-CV | |
LB Agar | Fisher | BP1425-2 | |
LED Grow Light System | HQRP | 884667106091218 | LED panel lamp system |
LightR-bRaf-mVenus | Addgene | #162154 | |
LightR-iCre-miRFP670 | Addgene | #162158 | |
MATLAB | Mathworks | R2024a | Software for running CellGEO Scripts |
Metamorph | Molecular Devices | Imaging Analysis Software | |
MgCl2 | Fisher Chemical | M33-500 | |
Mineral Oil | Sigma | M5310 | |
MiniPrep Kit | Gene Choice | 96-308 | |
Mini-PROTEAN TGX Precast Gels 12 well | Bio-Rad | 4561085 | |
Molecular Biology Grade Water | Corning | 46-000-CV | |
Multiband Polychroic Mirror | 89903BS | Chroma | |
NaCl | Fisher Chemical | S271-3 | |
PBS w/o Ca and Mg | Corning | 21-031-CV | |
pCAG-iCre | Addgene | #89573 | |
pcDNA3.1_Floxed-STOP mCherry | Addgene | #122963 | |
pCEFL-ERK2 | Gift from Dr. Channing Der's Lab, UNC | ||
PCR Tubes | labForce | 1149Z65 | 0.2 mL 8-Strip Tubes and Caps, Rigid Strip Individually Attached Dome Caps |
Phusion Plus DNA Polymerase | Thermo Scientific | F630S | |
pmiRFP670-N1 | Addgene | #79987 | |
Polygon 400 Patterned Illuminator | Mightex | DSI-G-00C | |
Primers | IDT | ||
PVDF Membranes | BioRad | 1620219 | Immun-Blot PVDF/Filter Paper Sandwiches |
T0.25% Trypsin, 2.21 mM, eDTA, 1x [-] sodium | Corning | 25-053-CI | |
Tris-Acetate-EDTA (TAE) 50x | Fischer | BP1332-1 | For electrophoresis |
UPlanSApo 40x Microscope Objective | Olympus | 1-U2B828 | |
USB TTL Box | National Instruments | 6501 | For TTL interface |
β-Mercaptoethanol | Fisher Chemical | O3446I-100 |
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