Comece transferindo todos os insetos Noctuidae coletados do saco de rede para uma gaiola de rede. Em seguida, forneça uma placa de Petri contendo uma solução de água de mel esterilizada a 10%. Coloque a gaiola em um ambiente estável.
Escolha insetos fêmeas selvagens que se aventuraram dentro da gaiola no mesmo dia. Transfira cuidadosamente esses insetos para tubos de frascos individuais, garantindo que cada tubo seja selado com uma tampa de algodão. Para a dissecção do inseto, primeiro coloque uma fêmea recém-paralisada em uma placa de Petri dissecante contendo etanol absoluto.
Para garantir uma dissecação limpa, infiltre o inseto com álcool absoluto e enxágue-o em água limpa. Em seguida, com pinças, separe as asas dorsais na junção do tórax e abdômen. Transfira o abdômen para um novo prato descartável cheio de dois a cinco milímetros de água.
Usando pinça dissecante, descasque suavemente o exoesqueleto abdominal, começando da boca pontiaguda dorsoventralmente até a cauda. Replique essas etapas do outro lado e coloque-o em água limpa para dispersar os tecidos intactos. Agora descasque delicadamente os tecidos gordurosos da epiderme usando pinças e puxe e solte suavemente os ovários.
Com um par de pinças dissecantes, remova suavemente as partículas de gordura e quaisquer órgãos circundantes dos ovários. Descasque gradualmente o saco de acasalamento do meio e elimine as partículas de gordura ligadas às trompas ovarianas. Segure suavemente o ovário e o saco de acasalamento da extremidade posterior vertical e, em seguida, desdobre-o lentamente para baixo.
Para evitar danos, transfira o ovário para uma placa de Petri nova ou limpa cheia de água. Segure a ponta ovariana e desdobre o ovário para dentro. Avaliar a maturidade dos ovos do inseto por meio de indicadores de cor e tamanho.
Em seguida, julgue o grau ovariano de acordo com o desenvolvimento do óvulo. Após a dissecção, certifique-se de separar os tecidos do saco de acasalamento feminino dos ovários intactos. Examinar a morfologia como as características anatômicas do saco acasalamento diferem de espécie para espécie.
Em seguida, analise a anatomia ovariana dividindo os tecidos ovarianos em cinco graus distintos. Por fim, capture imagens do ovário usando uma câmera digital de acordo com os requisitos do experimento. Quatro diferentes estágios de desenvolvimento ovariano foram observados, incluindo o estágio branco leitoso transparente com ovários subdesenvolvidos, o estágio de deposição de gema com ovos grandes e levemente imaturos, o estágio de amadurecimento com ovos em forma de grânulos amarelos brilhantes e o estágio final de desova com poucos ou nenhum grão de ovo.
O saco reprodutivo de um inseto selvagem Helicoverpa armigera tinha uma hélice colunar direita com uma luz interna. Mythimna separata tinha um saco de acasalamento em forma de G com faixas marrons escuras. O saco reprodutivo de Agrotis ipsilon foi linear com grandes bobinas de cistos externos posteriores.
Spaelotis valida tinha um saco de acasalamento fino levemente acastanhado em forma de J, enquanto Spodoptera exigua mostrou um saco branco translúcido em forma de haltere com um cisto de bolha no meio. O saco reprodutivo de Spodoptera litura era vermelho, com uma boca branca e leitosa superior transparente e uma cavidade cística interna discretamente visível. O saco reprodutivo de Pseudoptera lepigone era pequeno e enrolado com cistos externos fechados.
Mamestra brassicae tinha sacos espirais duplos cor de oliva com cistos externos. A graduação ovariana de vermes antigos mostrou ductos ovarianos transparentes e elásticos com ovócitos visíveis de grau um. No grau dois, o ducto ovariano tornou-se transparente com ovos amarelos tenros.
No grau três, grandes corpos gordurosos estavam ausentes, com o ducto mais espesso no ovipositor. Os graus quatro e cinco apresentaram cachos e menos ovos nos ovários com coloração amarelo-pálido e esverdeada. Todos os cinco graus ovarianos também foram observados na lagarta-do-cartucho, na lagarta do tarô e na lagarta-do-cartucho.
